鸡毒支原体和滑液支原体病的临床症状、诊断和防控研究进展.pdf

2023 年第 22 期 总第 110 期疾病防控77鸡毒支原体和滑液支原体病的临床症状、诊断和防控研究进展赵兴元（山东省青州市动物疫病预防控制中心,山东省青州 262500）摘 要：鸡毒支原体（Mycoplasma gallisepticum）和滑液支原体（Mycoplasma synoviae）对全球家禽业产生严重的临床和经济危害。本文对这 2 种支原体病的临床症状、流行病学、诊断和防控方面的进展进行综述。关键词：鸡毒支原体；滑液支原体；临床症状；流行病学；疫苗 作者简介：赵兴元（1972），男，汉族，山东青州人，本科，高级兽医师，研究方向：畜牧兽医。支原体病是一种在临床和经济上危害严重的家禽传染病，最早于 1926 年在火鸡中被发现，1936 年首次在鸡中被发现，现已在全世界广泛流行。禽支原体病给家禽业造成巨大损失，主要表现在产蛋量减少，生长速度和饲料转化率降低，胴体质量变差，以及死亡率、疫苗接种和防治费用的增加。这些生产损失和动物死亡已使养禽业承受严重的经济损失，而继发性细菌和病毒感染则会进一步造成经济损失。家禽中已发现25种支原体，其中13种与家禽疫病的发生有关，禽支原体病主要由其中 4 种致病性支原体引起，包括鸡毒支原体（Mycoplasma gallisepticum）、滑液支原体（Mycoplasma synoviae）、火鸡支原体（Mycoplasma meleagradis）和衣阿华支原体（Mycoplasma iowae）1。鸡毒支原体和滑液支原体是世界动物卫生组织提醒需密切监测的呼吸道病原体，可引起鸡和火鸡疾病，鸡毒支原体主要引起鸡的慢性呼吸道疾病和火鸡的传染性鼻窦炎，滑液支原体被认为是家禽传染性滑膜炎和呼吸系统疾病的病原。鸡毒支原体和滑液支原体除了在鸡和火鸡中广泛流行外，在野鸡、鹧鸪、鹌鹑、麻雀、鸽子、火烈鸟、鸭子和鹅等鸟类和水禽中也广泛存在。1 临床症状 鸡毒支原体感染与禽类呼吸道疾病、产蛋量损失、孵化率降低以及胴体品质因全身性影响而显著降低有关。鸡毒支原体感染可引起火鸡传染性鼻窦炎和鸡慢性呼吸道疾病，导致蛋鸡在 7 14 d 内产蛋量损失高达 50%且无法恢复到预期的产量水平，蛋壳质量下降，以及因鸡胚后期死亡而导致孵化率降低。由支原体引起的鸡慢性呼吸道疾病的症状主要包括喷嚏、咳嗽、鼻涕、呼吸道啰音和空气性毛囊炎；引起火鸡传染性鼻窦炎的症状主要是眼眶下窦肿胀2。鸡毒支原体不同分离株感染引起的临床症状差异很大，如 MG R 分离株、MG S6 分离株和 WVU 907 分离株主要感染部位和毒力均不同，MG R 分离株是从患有传染性鼻窦炎的火鸡的鼻中分离出来的，而 MG S6 分离株是从患有传染性鼻窦炎和神经症状的火鸡的大脑中分离出来的，WVU 907 分离株被确定为低毒力，临床症状不明显3。家禽和其他野生鸟类（如鸽子、乌鸦和麻雀）中常被检测出滑液支原体的亚临床感染。滑液支原体感染鸡和火鸡可能会导致关节滑膜炎和肌腱鞘炎，从而导致跛行，常伴有败血症和轻度呼吸道症状4。滑液支原体感染与蛋鸡产蛋损失、蛋壳强度降低、蛋壳顶端异常、肉鸡生产性能降低和气囊炎的发生有关。滑液支原体不同分离株引起的临床症状区别很大，一些滑液支原体分离株感染与鸡的关节病变密切相关，而其他分离株与呼吸道病变的存在密切相关。与商品蛋鸡相比，肉鸡感染滑液支原体对蛋壳顶端异常的影响似乎更小5。其他呼吸道病原体，包括病毒和相应疫苗，往往在鸡毒支原体和滑液支原体感染中起到加重疾病或发展为慢性呼吸道疾病的作用。其他病原体在毒支原体感染引起的疾病中起到加重病症的作用已得到证实，这些病原体包括火鸡支原体（Mycoplasma meleagradis）、鸡嗜血杆菌（Haemophilus gallinarum）、鸡巴氏杆78菌（Pasteurella gallinarum）和 大 肠 埃 希 氏 杆 菌（Escherichia coli）等，以及新城疫病毒（Newcastle disease virus）、传染性支气管炎病毒（Infectious bronchitis virus）、致病性禽流感病毒（Pathogenic avian influenza virus）和 禽 偏 肺 病 毒（avian metapneumovirus）等病毒。火鸡支原体、鸡巴氏杆菌和其他呼吸系统病原体，使滑液支原体感染引起的疾病表现复杂化。而且滑液支原体感染和传染性支气管炎病毒之间的协同作用受到病毒分离株毒力的影响。2 流行病学 鸡毒支原体和滑液支原体感染的流行病学知识对于设计这 2 个病原体的监测和防控计划至关重要。在早期的研究中，已经确定鸡毒支原体和滑液支原体感染会导致鸡处于携带病原体状态，并且这 2 种支原体都可以水平和垂直传播（卵），慢性呼吸道疾病的控制应该基于繁殖群中鸡毒支原体和滑液支原体的控制。水平传播可通过直接接触发生，也可通过气溶胶传播或与受污染材料、人员的间接接触发生。垂直传播是两种支原体传播的主要途径，与国际经济贸易具有相关性。两种支原体经鸡蛋的传播率是不可预测的，可能因分离株和感染阶段的不同而异。当鸡处于慢性感染期，2 种支原体经垂直传播感染后代的可能性较低，但向未感染鸡的水平传播可能发生。2 种支原体在鸡群之间的传播机制尚不完全清楚，因为不明原因的疫情不断在发生，可能涉及通过接触、气溶胶和飞沫的直接或间接传播，人工授精也被认为是鸡毒支原体的一种传播途径。因为动物福利的保障，越来越多的商业饲养鸡群在室外饲养，这可能增加了与野生鸟类和水禽接触而感染鸡毒支原体和滑液支原体的风险。鸡毒支原体和滑液支原体可以在稻草、橡胶、绒毛、灰尘、饲料、水和鸡蛋壳碎片等不同材料上存活一段时间，因此可被视为这两种病原体的间接传播源。2种支原体在鸡蛋壳碎片上可以存活几个月，但在大多数材料的存活时间都很短（1 4 d）。因此，鸡蛋壳碎片污染是这两种支原体水平传播的主要风险因素。鸡毒支原体生物膜形成的鉴定也证明了其在宿主外的生存潜力，生物膜的形成表明鸡毒支原体具有生存优势和对消毒剂的抵抗力，随后成为传播的风险因素。生物膜的形成也可能增加鸡毒支原体在宿主体内的生存能力，从而也可能增加垂直传播的可能。3 诊断 禽支原体病的诊断通常基于不同的血清学、支原体培养和分子检测。血清平板凝集试验或 ELISA 用于禽群支原体病的初步筛选，然后用血凝抑制试验确认。该方法在检测免疫球蛋白M抗体方面具有快速、廉价、高灵敏度和高效率的特点。然而，由于与其他支原体和最近接种的灭活疫苗或减毒活疫苗发生交叉反应，该方法的特异性较低。已开发出在支原体感染鸡群2 3 周后检测免疫球蛋白 G 或免疫球蛋白 Y 抗体6的血清学方法。支原体培养是检测鸡毒支原体和滑液支原体的标准方法，但该方法费力、耗时、昂贵，且存在支原体生长过快的问题，限制了该方法的应用。在活禽中，使用从泄殖腔和阴茎采集的拭子样本中分离鸡毒支原体。在死禽身上，组织样本取自气管、气囊和肺部。滑液支原体可以从病禽的眶下鼻窦和关节中吸出分泌物。鸡毒支原体和滑液支原体在肉汤培养基中的生长表现为膜的形成和颜色从粉红色到黄色的变化。在固体培养基上，通常观察到微小的、乳头状的支原体菌落。支原体染色液（Diene 染色）时，支原体菌落呈蓝色，中心较暗，外围较亮。对于鸡毒支原体和滑液支原体 DNA 的分子检测，常用的有 PCR、双重/多重 PCR、实时 PCR、限制性片段长度多态性 PCR、环介导等温扩增（LAMP）和全基因组测序等。PCR 技术可以快速、灵敏、特异地检测临床样品中的支原体 DNA。多重 PCR 较单一 PCR 具有经济、快速的优势，可在短时间内对大样本进行筛查。与传统 PCR 相比，实时 PCR 具有更高的可靠性，并在防止扩增后分析对环境污染方面具有明显优势。测序方法的优点是不需要在纯培养中分离病原体，即其他支原体的混合感染不会干扰目标支原体的测序。4 防控 对鸡群中支原体感染的防控措施主要包括生物安2023 年第 22 期 总第 110 期疾病防控79全和管理措施、治疗和疫苗接种。防止鸡毒支原体和滑液支原体进入鸡群的第一步包括从无支原体来源获取蛋和雏鸡，应对受精蛋进行抗生素处理或在 46下加热 12 14 h，然后采取适当的卫生和生物安全措施饲养家禽。根据监测方案进行频繁的血清学检测有助于发现早期感染，并防止鸡毒支原体和滑液支原体的水平和垂直传播。但频繁血清检测在经济上不可行，可考虑将适当的抗支原体治疗作为短期措施，并将疫苗接种作为长期预防措施，以减少发病率、死亡率、生产损失和支原体传播。由于缺乏细胞壁，支原体对-内酰胺类抗生素如青霉素类和头孢菌素具有耐药性。对四环素、大环内酯类、硫霉素、替米考星、林可霉素和大观霉素敏感，硫霉素和泰乐菌素是治疗和控制支原体感染最有效的药物7。氟喹诺酮类非常有效，但其在支原体中的耐药性值得高度关注，许多国家已禁止在生产食品的动物中使用氟喹诺酮类抗生素。目前，灭活疫苗、减毒活疫苗和重组活疫苗可用于鸡毒支原体感染的免疫接种。氢氧化铝佐剂或水性油乳剂中的灭活疫苗通过肌肉或皮下途径对家禽进行免疫，在减少感染、生产损失和卵巢退化方面表现出显著的疗效。但高昂的成本、个体的疫苗反应限制了其更广泛的应用。鸡毒支原体活疫苗包括F株、减毒株 ts-11 和 6/85。F 株疫苗最早可在感染前 2周通过鼻内、眼内和喷淋接种，对控制鸡毒支原体感染是有效的，可以降低抗生素需求和死亡率8。ts-11 株疫苗通过滴眼液给药，毒力和传染性都低于 F 株，并提供了一种较弱但长期有效的保护性免疫力9。6/85 株疫苗通过气溶胶给药，相比 F 株疫苗刺激较弱的保护性免疫反应，并且毒力和传染性较低，但在接种疫苗的家禽体内中不会持续存在，可能无法刺激可检测的抗体反应9。目前需要进一步研究其他类型的疫苗，以防止感染或至少防止支原体的脱落和垂直传播。参考文献1 Ferguson-Noel N,Armour NK,Noormohammadi AH,et al.MycoplasmosisJ.Poultry Diseases,2020(13):907-965.2 Umar S,Munir MT,Ur-Rehman Z,et al.Mycoplasmosis in poultry:update on diagnosis and preventive measuresJ.Worlds Poultry Science Journal,2017,73(1):1217.3 Sahu SP&Olson NO Characterization of an isolate of mycoplasma WVU 907 which possesses common antigens to Mycoplasma gallisepticumJ.Avian Diseases,1981(25):943-953.4 Kleven SH.Control of avian mycoplasma infections in commercial poultryJ.Avian Diseases,2008,52(3):367-374.5 Catania S,Gobbo F,Ramirez AS,et al.Laboratory investigations into the origin of Mycoplasma synoviae isolated from a lesser flamingo(Phoeniconaias minor)J.BMC Veterinary Research,2016(12):52.6 Ali MZ,Rahman MM,Sultana S.Seroprevalence of Mycoplasma gallisepticum antibody by ELISA and serum plate agglutination test of laying chickenJ.Veterinary world,2015(8):9-14.7 Morrow CJ,Kreizinger Z,Achari RR,et al.Antimicrobial susceptibility of pathogenic mycoplasmas in chickens in AsiaJ.Vet Microbiology,2020(250):108840.8 Liu JJ,Ding L,Wei JZ,et al.Influences of F-strain Mycoplasma gallisepticum vaccine on productive and reproductive performance of commercial parent broiler chicken breeders on a multi-age farmJ.Poultry Science,2013(92):1535-1542.9 Leigh SA,Evans JD,Collier SD,et al.The impact of vaccination route on Mycoplasma gallisepticum vaccine efficacyJ.Poultry Science,2018(97):3072-3075.