实验动物的生理病理检测专家讲座.pptx

,单击此处编辑母版标题样式,单击此处编辑母版文本样式,第二级,第三级,第四级,第五级,*,试验动物生理病理检测,实验动物的生理病理检测,第1页,第一节,普通体征检验与测量方法,实验动物的生理病理检测,第2页,一、,体重测量方法,动物体重借助称量仪器测量,小鼠、大鼠：,称重可用带游码普通天平或电,子秤称重。,兔、豚鼠：,可直接放在婴儿秤上称重，从婴儿,秤圆形刻度盘上读取动物体重。,犬：,经训练后可直接放在磅秤上称重。未经驯,服犬，先将犬嘴绑好，由试验员把犬抱,起站在磅秤上称重，记下读数，减去试验,员体重，即为动物体重。,实验动物的生理病理检测,第3页,二、体温测定方法,动物体温测定是动物试验中最惯用检测指标之一。,在测定前应先固定好动物。普通测大鼠或小鼠体温时，左手带上布手套，将鼠抓起，并将鼠固定于试验者手心，同时用环指和小指把鼠尾固定；兔则可用左臂夹住兔体，左手提起尾巴，犬可固定在台上，然后右手持头瑞涂上少许凡士林肛表，由肛门插入直肠一定深度。测量时间3,min。,测定体温除了用肛表外，还可用半导体点温度计,可马上从温度表上读取温度数。,实验动物的生理病理检测,第4页,各种成年动物正常体温,动物,种类,体温变动范围（）,平均体温（）,动物,种类,体温变动范围（）,平均体温（）,猿猴,38.3-38.9,38.6,大鼠,38.5-39.5,39.0,犬,38.5-39.5,39.0,小鼠,37.0-39.0,38.0,猫,38.0-39.5,38.7,鸡,41.6-41.8,41.7,兔,38.5-39.5,39.0,鸽,41.5-42.5,42.0,豚鼠,37.8-39.5,38.6,猪,38.0-40.0,39.0,实验动物的生理病理检测,第5页,三、脉搏检验方法,检验脉搏较为主要，能够依据脉搏频率和性质，判断动物心脏和血液循环状态以诊疗动物疾病及判定其预后。,检验犬、猫、兔等较大动物脉搏时，先将动物略加固定，待其平静后，用右手伸入动物股部内侧，食指和中指压于血管上左右滑动，可感觉到血管象富有弹性橡皮管在指下滑动。按脉大小、强弱和软硬，分别施以轻压、中压和重压，体会脉搏性质和节律。,小动物脉搏可直接在动物左侧胸部用手触及心跳最显著处，计数一定时间，算出每分钟心跳次数。,实验动物的生理病理检测,第6页,四、呼吸频率测定方法,动物呼吸频率和呼吸深度改变是试验时常见症状之一，对说明药品作用机制含有主要意义。,所以在试验前后必须注意检验动物呼吸节律、频率、深度改变。这些改变可标志出呼吸器官功效状态。频而表浅呼吸是肺通气量不足症状。,动物呼吸频率测定方法十分简单：首先使动物处于相对平静状态，以肉眼观察并统计呼吸次数，普通要求统计1,min,呼吸次数。,实验动物的生理病理检测,第7页,第二节 血液及造血功效惯用 指标检验方法,实验动物的生理病理检测,第8页,一、,血液惯用指标检验,（一）红细胞计数,动物红细胞计数可用普通血细胞计数器，也可用光电比浊法。,方法（试管法）：,用血红蛋白吸管吸收静脉血20,mm,3,，,挤入盛有4,mL,红细胞,稀释液华氏小试管中摇匀，滴入计数池，静置3,min，,在高,倍镜下数中央大方格中5个中方格中红细胞数量，相加，计算（5格总和,10000,即为每1/2,mm,3,内红细胞数）。,实验动物的生理病理检测,第9页,(二)白细胞计数,与红细胞计数一样，可用普通血细胞计数器，也可用电子血细胞计数机计数。,计数方法：,用血红蛋白吸管吸收动物静脉血至20,mm,3,处,，马上挤入盛有0.4,ml,白细胞稀释液小试管内，充分摇匀，将混悬液滴一小滴入计数池，静置3,min，,在低倍镜下数四角4个大方格白细胞数，计算（4格白细胞总数,50=1,mm,3,白细胞总数。,实验动物的生理病理检测,第10页,(三)白细胞分类计数,采血 推片 干燥 染色 计数,形态判别：,（1）嗜中性粒细胞：,10-12,um，,有嗜中性颗粒,。,（2）,嗜酸性粒细胞：,略大于嗜中性粒细胞，颗粒大，位于核外，粉红色，核显著，常分两叶。,（3）嗜碱性粒细胞：,略大于嗜中性粒细胞，颗粒粗大压在核上，呈紫色，核不显著。,实验动物的生理病理检测,第11页,（4）淋巴细胞：,8-15,um，,普通圆多，核偏一边，核染色质排列成斑块状，较致密。核与胞浆百分比为9：1或8：2。胞浆呈浅蓝色，有时有灰青颗粒。核形状以圆形最多。,（5）单核细胞：,15-20,um，,胞浆浅淡，核肾形多有压迹核染色质疏松，核两端常切断胞浆。,实验动物的生理病理检测,第12页,(四)血小板计数,计数方法：,(1)小试管内加血小板稀释液0.4,mL，,取动物静脉血20,mm,3,，,快速挤于稀释液内，马上充分摇匀。,(2)放置4,10,min，,待溶液呈透明红色，说明红细胞已经充分溶解，充分摇匀，取,l,小滴加入计数池,。,(3)放置10一15,min，,待血小板完全下沉后，先将中央大方格移至低倍镜视野内，再转以高倍镜，数5个中方格内血小板数。,(4)血小板大小形态不一致，但均呈折光发亮淡蓝色小点，大小约红细胞17,12，呈不规则圆形或长圆形。在计数时必须往返扭动显微镜微调，不要遗漏计数。,(5)计算：5个中方格总和,l 000,=1,mm,3,血液血小板数。,实验动物的生理病理检测,第13页,(五)血细胞比容容量及红细胞 降率(血沉)测定,1血细胞比容容量测定,惯用,Wintrobe,测定法：测定时，以,EDTA,二钠作为,抗凝剂，5,mL,静脉血加1滴,EDTA,二钠，以细而长吸管,吸收抗凝血，插入,Wintrobe,管底部，自上而下轻轻地把,血液注入至刻度10处，不能夹有气泡，在校准过离心,机内以3000,rmin,速度离心30,min，,压紧红细胞,高度(,mm),即为血细胞比容容量数值，常以百分率表示。,实验动物的生理病理检测,第14页,2红细胞沉降率测定,以干燥草酸钾和草酸铵或,EDTA,二钠作为,抗凝剂，将抗凝血加入,Wintrobe,管内到刻度10,处，垂直放置，统计1,h,红细胞沉降毫米数。,测定时应在22,27之间室温下进行。,实验动物的生理病理检测,第15页,二、造血功效惯用指标检验,1骨髓细胞计数,将小鼠颈椎脱位处死，取,l,根股骨，用10,mL 3,醋酸溶液冲出骨髓细胞，在血细胞计数器上计数4个大方格细胞数，所得细胞数乘以2.5,X100000，,即为,l,根股骨中骨髓有核细胞数。,2,骨髓细胞分类,将小鼠解剖后，取,l,或2节胸骨作骨髓涂片，经甲醇固定后，用瑞氏或姬姆染液染色：分类计数500个骨髓有核细胞。,实验动物的生理病理检测,第16页,3骨髓粒细胞分裂指数,小鼠腹腔注射,0.1,mL(50ug),秋水仙碱溶液，5,h,后，取作骨髓涂片，经甲醇固定，用瑞氏或姬姆染液染色，计数每,1000,个粒细胞中分裂粒细胞数。,4白细胞计数和分类,切开小鼠腹股沟，切断股动脉，取0.02,mL,全血加在15.9,mL,生理盐水中，加入0.1,mL,1%皂素溶解红细胞，利用电子血细胞计计数白细胞。同时取,1,滴全血作涂片，经甲醇固定后，用瑞氏或姬姆染液染色，分类计数100个白细胞。,实验动物的生理病理检测,第17页,5白体在脾脏和骨髓中掺人试验,每只小鼠腹腔注射含有,59,Fe,枸橼酸盐缓冲液0.2,mL(pH6.1)，6h,后取出脾脏和两根骰骨，分别置于玻璃胶布内，应用,Fricarb 1700,型定标器测定放射性强度。,6白体在周围血细胞中掺人试验,每只小鼠腹腔注入含有,59,Fe,枸橼酸盐缓冲液0.2,mL(pH6.1)，3d,后切开股动脉，取全血02,mL,滴人脱脂棉球内，用玻璃胶布包好后，测定放射性强度。,实验动物的生理病理检测,第18页,7,3,H,胸腺嘧啶核苷掺人试验,小鼠腹腔注入1,mL,3,H,TdR，2h,后取出脾脏，用生理盐水冲出股骨和胫骨中骨髓细胞，分别测定,DNA,含量和放射性强度。,8胸腺和脾脏重量测定,动物活杀后取出脾脏和胸腺，用扭力天平称重，分别计算出占动物体重百分比。脾脏占体重百分比反应动物骨髓外造血功效，正常小鼠脾脏占体重181左右。,实验动物的生理病理检测,第19页,第三节,血压测定与统计方法,实验动物的生理病理检测,第20页,一、直接描记法,动物血压直接描记法是动物试验中最惯用方法，将套管直接插入动物动脉或静脉内，套管另一端连接血压换能器，血压换能器并与生理统计仪相连。动物动脉血压测定常采取颈总动脉或股动脉。分离出一侧颈总动脉后，用缝线将动脉离心端扎紧，再用动脉夹在近心端夹住。在近扎线处下方，用眼科剪向心端将动脉剪一小口，将预先充满抗凝剂换能器插管从剪口向心方向插入颈总动脉，然后用预先备好缝线连同套管及动脉一起扎牢，并固定于动物体上。松开动脉夹，动脉压力信号由换能器转换变为电信号后输入生理统计仪，描记,出动脉血压曲线。,实验动物的生理病理检测,第21页,二、间接测压法,在慢性性试验进行长久重复血压观察时，,采取此种方法。,（一）犬,1股动脉测压法,测量方法基本同普通人体血压测量，,但血压计压力袋规格不一样。,2颈部皮桥测压法,狗间接测压法多按,Von Leesum,法将颈动脉引至皮瓣内，然后测量该动脉血压。皮桥手术后10一12,d，,皮桥变柔软，试诊时脉搏良好，即可进行测压。此时用普通听诊器可测知收缩压和舒张压。,实验动物的生理病理检测,第22页,(二)兔,1颈部皮桥测压法,基本和狗一样。但兔皮瓣必须保留保留较多皮下组织，以预防手术,后皮瓣干枯。,2腹主动脉测压法,将兔背卧固定在手术台上，把血压计和橡皮压力袋缠于兔下腹部，松紧适当，与测人血压相同。,（三）大鼠,多用鼠尾动脉测压，也可用下肢动脉测压。,实验动物的生理病理检测,第23页,第四节,尿液与粪便检验方法,实验动物的生理病理检测,第24页,一、尿液检验方法,尿液性状与组成，可反应机体代谢情况。尤其是泌尿系统本身疾病，对尿液成份影响更大。尿液检验是泌尿系统疾病诊疗和观察疗效主要方法。,尿液采集，参考试验动物各种体液搜集方法。普通用清洁容器搜集新鲜尿液，以晨尿为好，因晨尿浓度较高，易发觉病理成份。作细菌培养时，应消毒外阴后留中段尿，必要时进行导尿。化学定量检验时，应搜集24,h,全部尿液，并加入适当防腐剂(按尿量0.5一1加入甲苯)。,实验动物的生理病理检测,第25页,1、尿量检验,惯用试验动物尿量见下表,实验动物的生理病理检测,第26页,(1)尿量增多,一昼夜尿量超出正常值范围，称为多尿。生理性尿量增多见于大量饮水或食含水分过多蔬菜所致。病理性尿量增多，见于糖尿病、尿崩症等。,(2)尿量降低,一昼夜尿量少于正常值范围称少尿，见于急性肾炎、急性肾功效衰,竭等,。,实验动物的生理病理检测,第27页,2尿色检验,正常新鲜尿液多为黄色或淡黄色，,尿颜色多受食物或药品影响。,(1)血尿,呈洗肉水样或混有血凝块。,(2)血红蛋白尿,呈浓茶色或酱油色，镜检无红细胞，,隐血试验为阳性。,(3)胆红素尿,呈深黄色，振荡后泡沫亦呈黄色。,(4)乳糜尿,为乳白色尿液，有时混有少许血液。,实验动物的生理病理检测,第28页,3、尿酸碱试验,正常一昼夜混合尿液呈弱酸性，,pH,值为5.4,8.4。食肉类动物尿液多呈酸性，素食类动物尿液可呈中性或弱碱性，在酸中毒、发烧时，尿液可呈较强酸性，可用,pH,试纸测定。,4、尿比密,尿液比密与其中所含溶质浓度成正比，普通用尿比密计进行测定，比密计上刻度是以尿温在15时制订，当被检尿温每增加3加0.00,l，,每降低3减0.001。大量饮水时尿量增加，其比密降低；体内缺水时，尿量降低，比密增高。,实验动物的生理病理检测,第29页,5尿蛋白定性试验,加热醋酸法：取小试管一支，加尿液至2/3高度，手持试管下端。将上部尿液以火焰加热，煮沸后加5醋酸2,4滴，再加热至沸即可观察结果。如浑浊不,消失，为尿蛋白阳性；若混浊消失则是磷酸盐所致。结果判断应以试管下部尿液为对照,观察上部尿液改变。,6、尿糖定性试验,取试管一支，加入班氏尿糖定性试剂2,mL，,加热至沸，加尿液再煮沸2,min，,判定结果。,实验动物的生理病理检测,第30页,二、粪便检验方法,粪便检验是了解和诊疗消化系统疾病主要方法。粪便检验惯用于了解粪便中有没有炎性产物、血液、寄生虫卵或虫体等病理成份，并可判断胃肠、胰腺、肝、胆功效状态及粪便中,有没有致病菌。,1普通性状检验,(1)颜色：,黄褐、黑色、灰白、鲜红等。,(2)性状：,水样或粥样，粘液、脓样、血样。,(3)气味：,特殊臭味、酸臭、腐败臭。,实验动物的生理病理检测,第31页,2显微镜检验,在洁净载玻片上滴,1,滴生理盐水，用木签挑取少许粪便与生理盐水混合，涂匀，厚度适中。先用低倍镜将全片检视一遍，再用高倍镜仔细观察各种细胞、阿米巴包囊及滋养体等。注意下面各种物体种类和数量。,（1）细胞：,红细胞、白细胞，巨噬细胞等。,（2）原虫及滋养体：,阿米巴、鞭毛虫滋养体及包囊。,（3）寄生虫卵：,各种寄生虫卵量，普通以低镜视野,下数量表示。,实验动物的生理病理检测,第32页,3、隐血检验,当上消化道少许出血时，粪便外观无异常改变。凡疑有上消化道少许出应进行隐血检验。,方法：,隐血检验时，将少许粪便涂于洁净玻片或滤纸条上，加1联苯胺冰醋酸液及3过氧,化氢液各一滴。如无颜色改变为阴性反应；出现蓝颜色改变为阳性反应。,正常为阴性，上消化道出血为阳性。,实验动物的生理病理检测,第33页,第五节胸、,腹腔及脑脊液检验方法,实验动物的生理病理检测,第34页,一、胃液检验,胃液检验目标在于了解胃分泌、运动功效和胃液中有没有病理成份改变相关疾病。胃液搜集在清晨空腹插入胃管，抽出全部胃液。,1普通性状检验,(1)量：,当十二指肠溃疡或幽门梗阻时，空腹胃液量常,增多。,(2)色：,正常胃液无色，如胆汁反流时呈黄色或草绿,色，如有红色表示有新出血；咖啡色证实血液,在胃内存留时间较长，多为慢性溃疡病。,(3)味：,正常胃液有轻度酸味，无特殊臭味。腐败气味,或恶臭味均为病理改变。,实验动物的生理病理检测,第35页,2、化学检验,(1)游离盐酸和总酸度检验：,给试验餐后,lh，,游离盐酸和总酸度显著增多，如给组胺20,min,后增多可达最高峰。患溃疡性病变，其胃液酸度增多；萎缩性胃炎、肿瘤时，胃液酸度显著降低。,(2)乳酸定性检验：,正常胃液内仅有少许乳酸。普通定性检验为阴性；当胃酸缺乏时，胃内容物发酵，乳酸含量增多，乳酸试验呈阳性反应。,实验动物的生理病理检测,第36页,3显微镜检验,正常胃液内无红细胞，可有少数白细胞及扁平上皮细胞，当胃受损出血时，胃液内可见红细胞，胃炎时白细胞数增多。,实验动物的生理病理检测,第37页,二、十二指肠引流液检验,十二指肠引流液是指用导管引流十二指肠、胆总管、胆囊和肝胆管内液体。经过引流检验可了解试验动物胆汁分泌情况、胆管和胰腺功效状态，对肝脏和胆道疾病有主要诊疗意义。,1、普通性状检验,注意各部分胆汁分段是否显著；十二指肠液、胆总管胆汁(,A)、,胆囊胆汁(,B)、,肝胆汁（,C）,各部分胆汁量、色、性状等。将四种引流液分别搜集于无菌试管内及时送检。,实验动物的生理病理检测,第38页,病理情况下，无,B,胆汁排出时，灌胃33硫酸镁后，仍无,B,胆汁排出则应考虑为胆总管梗阻或胆囊收缩不良。在灌入33硫酸镁前已经有绿色或黑褐色,B,胆汁流出，则多见于胆管扩张，并伴有感染、胆汁淤积。,3显微镜检验,正常胆汁中可有少许白细胞，偶见上皮细胞、胆固醇结晶、胆红素结,晶、胆红素钙结晶。胆管炎症时可见大量脓细胞,。,4细菌学检验,十二指肠引流液细菌学检验，可发觉胆道炎症病原菌，作为治疗参考。,实验动物的生理病理检测,第39页,三、胸、腹腔积液检验,穿刺取出标本分为两份，一份抗凝；另一份不加抗凝剂，以观察能否自凝。标本采集后应马上送检。,1普通性状检验,(1)相对密度：,应在标本采取后马上测定，方法同尿,液相对密度测定。,(2)外观：,漏出液多为淡黄色，透明或微浊，不自,凝。渗出液可呈深浅不一样黄色，混浊,而凝结。,实验动物的生理病理检测,第40页,2化学检验,(1)粘蛋白定性(,Rivalta),试验,取100,mL,量筒一个，加100,mL,清水，然后滴入冰醋酸2滴，混匀：再加入标本,l,一2滴，马上观察结果。如有显著白云雾状混浊，下降很快，沉淀能拖长20,cm,左右，为阳性反应；如混浊不显著，下降迟缓，中途消失者，为阴性反应。漏出液为阴性反应，渗出液为阳性反应。,(2)蛋白定量测定,漏出液蛋白含量在25,g,/,L,以下，渗出液在25,g,/,L,以上,。,实验动物的生理病理检测,第41页,3显微镜检验,漏出液细胞计数常少于,l,l0,5,个/,mL，,分类以淋巴细胞和间皮细胞为,主。渗出液常多于,5,l0,5,个/,mL，,出现大量中性粒细胞。,4细菌学检验,标本采集后经离心沉淀，取沉渣涂片，作革兰染色及抗酸染色，油镜观察。结果漏出液无细菌，渗出液中常可找到致病菌。,实验动物的生理病理检测,第42页,四、脑脊液检验,1普通性状检验,(1)压力测定：,依据脑脊液自穿刺针流出滴速来推测压力高低。,如每分钟,60滴以下，表示颅内压大致正常；每分钟60滴以上即表示颅内压增高。,(2)颜色：,正常脑脊液为无色液体。如蛛网膜下腔出血、脑出血，则脑脊液呈均匀血性，离心后上清液呈淡红色或黄色；当蛛网膜下腔陈旧性出血或脊椎管阻塞时，脑脊液蛋,白质含量增高而呈黄色,。,(3)透明度：,正常清楚透明。,(4)凝结：,正常脑脊液静置12,h,亦不会凝结。,当脑膜炎症,时，脑脊液静置,12,h,后即可出现凝结。,实验动物的生理病理检测,第43页,2化学检验,(1)蛋白定性试验：,本试验为脑脊液中蛋白质与石炭酸结合，形成不溶性蛋白而析出沉淀。正常脑脊液为阴性。当脑膜或脑实质炎症时，脑脊液蛋白质含量增加，定性试验呈不一样程度阳性反应。,(2)蛋白定量试验：,在脑膜或脑实质炎症、脑出血时，脑脊液蛋白质含量增加。,(3)葡萄糖定量试验：,脑脊液葡萄糖含量与血糖浓度关系亲密，约为血糖60。细菌感染时，脑脊液中糖含量降低；病毒感染却增加。,实验动物的生理病理检测,第44页,3显微镜检验,(1)红细胞,正常脑脊液中无红细胞。如脑出血或穿刺损伤血管时，可有大量红细胞出若为陈旧性出血，可见多数皱缩红细胞。,(2)白细胞计数及分类,正常脑脊液中细胞数极少，平均为0,8个/,uL，,多为淋巴细偶见内皮细胞。病毒感染以淋巴细胞增多为主；化脓性炎症，以中性粒细胞增多为主。,实验动物的生理病理检测,第45页,第六节,肝、肾功效检验方法,一、肝功效检验,肝脏是主要贮存库之一，但又是主要解毒脏器。,(一)肝脏解毒功效测定：,马尿酸测定法。,(二)肝脏排泄功效测定：,酚四溴钠(,BSP),测定法。,(三)丙氨酸氨基转移酶(,ALT),测定,(四)肝脏糖原合成测定,1蒽酮法测定肝糖原含量,2.肝细胞糖原合成测定,实验动物的生理病理检测,第46页,二、肾功效检验,肾功效检验方法中，通常测定血液及尿中非蛋白氮(,NPN)。,测定血液中,NPN,含量，可反应肾小球滤过功效。,肾功效发生障碍时，血液中,NPN,排出受阻，则在血液中堆积。可依据此原理采取比色法测定血液中,NPN,含量。,实验动物的生理病理检测,第47页,第七节,病了解剖学检验,实验动物的生理病理检测,第48页,一、体表检验,在尸体解剖检验之前，首先应检验动物皮毛、皮肤、乳腺、四肢和尾巴是否有缺损、溃疤痕或其它异常现象。,检验眼、耳、鼻、口腔、肛门和外生殖器是否有异常分泌物、出血、损伤和其它改变。,实验动物的生理病理检测,第49页,二、腹腔检验,1、剖开腹腔时，首先应检验腹腔是否有积液，包含漏出液，渗出液、出血或积脓，必要时作涂片和细菌培养检验。,2、化学中毒性疾病应取胃内容物作毒物分析。,3、检验各脏器位置是否正常，有没有畸形。肠袢之间是否粘连。胃、大肠、小肠及盲肠是否有扭转、出血，穿孔或坏死，淋巴结是否肿大。,实验动物的生理病理检测,第50页,4、检验腹腔各脏器表面完成后，依次将各脏器取出，先摘出脾脏，其次取出小肠和大肠，再取出肝、胃、十二指肠和胰腺，最终取出肾上腺、肾和骨盆内器官。然后在十二指肠与空肠交界处切断，结扎两切口，提起空肠，以长刀剥离肠系膜，将小肠、大肠取出，沿着肠系膜附着线剪开肠腔。,5、检验粪便是否有粘液、出血或寄生虫。,6、检验肠粘膜是否有充血、出血、穿孔,、,肿块或炎,性渗出物。,7、注意检验回肠集合淋巴结是否有增生或溃疡等。,实验动物的生理病理检测,第51页,8、胃：,沿大弯剪开，检验同上。,9、肝：,在检验肝脏之前，首先检验胆囊是否有结石，并挤压胆囊，观察胆汁是否从十二指肠壶腹部溢出。肝脏主要检验有没有肿大、硬化、肿瘤、寄生虫，并注意检验门静脉有没有血栓，切开肝脏第一刀应自上向下切一最大切面，再连续切开检验。,10、肾脏：,应注意检验颜色，是否肿大或缩小，以及有没有炎症反应、硬化，肿块及结核等。并注意肾盂有没有结石。肾切开应从肾外缘向肾门方向剖开。,实验动物的生理病理检测,第52页,三、胸部检验,剪下胸骨，先取出胸腺，然后检验两侧胸腔是否有积液，胸膜是否有出血点、炎症或粘连。,剖开心包，观察心包液量、颜色、性质等。并观察心脏形状，各室是否扩大。心尖是否变圆，心外膜是否光滑或有出血点,实验动物的生理病理检测,第53页,心脏取出与剖验,取出心脏之前，先在体内剖开右心和肺动脉，检验肺动脉内是否有栓塞，然后以左手将心脏提起，剪断肺动脉和主动脉。,剖开心脏步骤：,（1）剪(切)开上、下腔静脉，自右心房向下至心尖部,作直线剖开。,（2）从心尖向肺动脉方向作一切口。,(3)剪开肺静脉，向心尖部作一切口，再向主动脉方,向作一切口。,统计各瓣膜周径，左、右心肌厚度，检验各瓣膜是否有赘生物或增厚，心内膜是否有附壁血栓，心肌是否有梗死灶。主动脉和冠状动脉内壁是否有粥样斑块。注意各部位是否有先天性异常现象。,实验动物的生理病理检测,第54页,四、脑与脊髓检验,脑：,剖开颅骨取脑时，首先检验蛛网膜下腔是否有炎性渗出物，脑表面是否有出血或肿块等。取出脑组织后应先固定，然后剖开检验：固定方法是在脑底较大动脉下方穿一根线，悬空吊在瓶中固定，以免沉底后变偏。切脑时，先将小脑取下(左右各一切，做,v,字型切口)。再将大脑放在一块木板上，自前额叶做冠状切面。依据脑大小做数切面，并逐层检验。,脊髓：,取脊髓方法是先切开背部皮肤，再剥离棘突上软组织，以骨钳将棘突和椎板一一,钳去，便可露出脊髓硬脊膜，剪开后即可取出固定。,实验动物的生理病理检测,第55页,五、取材注意事项,1、,切取组织块大小普通为1.0,cm-1.5cm，,厚为0.3,cm，,但也可依据需要确定切取大小及厚度。,2、固定液普通为10福尔马林，一些特殊染色应与病,理室联络。,3、取样要全方面且含有代表性，能显示病变发展过程。在一块组织中要包含病灶及其周围正常组织。器官应包含主要结构部分，如胃、肠应包含从浆膜到粘膜各层组织，并能看到淋巴滤泡。肾脏应包含皮质、髓质和肾盂。,实验动物的生理病理检测,第56页,