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Testin基因对鼻咽癌5-8F细胞裸鼠移植瘤放疗敏感性的影响.pdf

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资源描述

1、肿瘤防治研究2023年第50卷第8期 CancerResPrevTreat,2023,Vol.50,No.8767doi:10.3971/j.issn.1000-8578.2023.22.1341Testin基因对鼻咽癌5-8F细胞裸鼠移植瘤放疗敏感性的影响钟准1,费永光2Effect of Testin Gene on Radiosensitivity of Nasopharyngeal Cancer 5-8F CellsZHONGZhun1,FEIYongguang21.Department of Otolaryngology,Hubei NO.3 Peoples Hospital of

2、Jianghan University,Wuhan 430033,China;2.Department of Otolaryngology,Xinzhou District Peoples Hospital,Wuhan 431400,ChinaCorresponding Author:FEI Yongguang,E-mail:Abstract:Objective ToinvestigatetheeffectofTESgeneontheradiosensitivityofnasopharyngealcarcinoma5-8Fcells.Methods Specimensof5-8Fcells(u

3、nprocessedgroup)and5-8FcellswithhighTESexpression(TESgroup)wereirradiatedat0,2,4,6,and8Gyradiationdosepoints.Cellcloneformationexperimentwasconductedtodrawthesurvivalcurve.Twenty-fourBALB/cnudemicewererandomlydividedintofourgroups:nontransfectiongroup,TESgroup,irradiationgroup,andTESirradiationgroup

4、.Anudemousemodelofnasopharyngealcarcinoma5-8Fcellswasestablished.Thelengthanddiameterofthetransplantedtumorweremeasuredeverythreedays,thetumorvolumewascalculated,andthegrowthcurveofthetransplantedtumorwasdrawn.Afterthemicewerekilledonemonthlater,thetumorblockwastakenand weighed.The apoptosis of the

5、transplanted tumor cells in each group was detected by flow cytometry.Results Comparedwiththatintheunprocessedgroup,thesurvivalrateofcellsintheTESgroupwassignificantlylower(P0.01).Thetumorgrowthrateandtumormassofallfourgroupsdecreasedinturn,whiletheapoptosisrateincreasedinturn.TheTESirradiationgroup

6、hadtheslowesttumorgrowthrate,greatestdecreaseintumorweight,andhighestapoptosisrateamongthefourgroups.Multiplecomparisonrevealed statistically significant differences between the groups(P0.05).Conclusion Thetestingenecaneffectivelyimprovetheradiosensitivityofnasopharyngealcarcinoma5-8Fcellsculturedin

7、 vitro.Key words:Testingene;Nasopharyngealcarcinoma;RadiosensitivityFunding:WuhanHealthResearchFundSupportedProject(No.WX19Y02)Competing interests:Theauthorsdeclarethattheyhavenocompetinginterests.摘 要:目的 探讨Testin基因(TES)对鼻咽癌5-8F细胞裸鼠移植瘤放疗敏感性的影响。方法 将鼻咽癌5-8F细胞分为两组:未转染组(正常的5-8F细胞)和TES组(高表达TES的5-8F细胞),经过0

8、、2、4、6、8Gy放射剂量点照射后,进行细胞克隆形成实验,绘制生存曲线。为建立鼻咽癌5-8F细胞裸鼠移植瘤模型,将24只BALB/cNude裸鼠随机均分为四组:未转染组(注射5-8F细胞液)、TES组(注射高表达TES的5-8F细胞液)、照射组(注射5-8F细胞液+局部照射)、TES照射组(注射高表达TES的5-8F细胞液+局部照射),每隔3天测量移植瘤长短直径,计算肿瘤体积并绘制移植瘤生长曲线,1月后处死小鼠,取肿瘤块称质量,流式细胞仪检测各组移植瘤中细胞凋亡情况。结果 与未转染组比较,TES组细胞的存活率明显降低(P0.01)。未转染组、TES组、照射组、TES照射组瘤体生长速度依次减慢

9、、瘤体质量依收稿日期:2022-11-14;修回日期:2023-05-30基金项目:武汉市卫生健康委科研基金资助项目(WX19Y02)作者单位:1.430033武汉,江汉大学附属湖北省第三人民医院耳鼻咽喉科;2.431400武汉,武汉市新洲区人民医院耳鼻咽喉科通信作者:费永光(1974-),男,本科,副主任医师,主要从事耳鼻喉科相关专业临床研究,E-mail:,ORCID:0009-0007-8769-9465作者简介:钟准(1984-),男,硕士,副主任医师,主要从事头颈部肿瘤的诊断和治疗工作,ORCID:0009-0004-2612-0382基础研究次降低、细胞凋亡率依次增加。以TES照射

10、组瘤体生长速度最慢、质量下降最大、细胞凋亡率最高,组间多重比较差异均有统计学意义(P0.05)。结论 Testin基因能有效提高体外培养的鼻咽癌5-8F细胞的放疗敏感性。关键词:Testin基因;鼻咽癌;放疗敏感性中图分类号:R739.63开放科学(资源服务)标识码(OSID):肿瘤防治研究2023年第50卷第8期 CancerResPrevTreat,2023,Vol.50,No.87680 引言鼻咽癌(nasopharyngealcarcinoma,NPC)细胞放疗敏感性差是影响患者复发和生存率下降的重要因素1。大量文献报道NPC的放疗敏感性与肿瘤细胞内的基因表达有关,研究显示,MIIP、

11、SALL4、B7-H3、miRNA-381等基因可用于增加肿瘤的放疗效果2-5。Testin基因(TES)为目前研究发现的一重要抑癌基因,TES基因在鼻咽癌的发生和发展中产生何种作用、是否能调控鼻咽癌细胞的放疗敏感性等问题,一直备受关注。本课题组前期研究发现,过表达TES基因可明显抑制鼻咽癌5-8F细胞的增殖和迁移能力,并增加肿瘤细胞的放射敏感性6-7。因此,本次研究主要利用转染了TES的细胞,建立裸鼠移植瘤模型,从体外动物水平观察TES对鼻咽癌5-8F细胞移植瘤放疗敏感性的影响,探索TES在鼻咽癌治疗中的作用机制。1 材料与方法1.1 主要材料鼻咽癌5-8F细胞系、TES重组表达质粒均由武汉

12、大学中南医院实验室提供;胎牛血清购自美国Gibco公司;直线加速器购自德国SIEMENS股份公司;BALB/c裸小鼠,SPF级,鼠龄58周,体质量(1820)g,在武汉大学实验动物中心无特殊病原菌条件下分笼饲养。1.2 方法1.2.1 细胞培养与转染 选择生长状态良好的鼻咽癌5-8F细胞用于实验,将实验细胞分为两组:未转染组:未转染的5-8F细胞组;TES组:转染了高表达TES的5-8F细胞组。按照常规程序进行转染,构建高表达TES的5-8F细胞系(5-8F-pEG-FP-N1-TES),并应用Westernblot实验进行评估和鉴定。1.2.2 细胞进行射线照射 将未转染组和TES组进行射线

13、照射,照射设备为Varian2100C直线加速器,吸收剂量率400cGy/min,放射野为10cm10cm,距离100cm,辐射剂量分别为2、4、6、8Gy。1.2.3 细胞克隆形成实验 常规培养下,分别将未转染组和TES组细胞暴露于不同剂量下(2、4、6、8Gy)进行照射,照射完成后进行细胞培养10d,去上清液、固定、洗涤晾干,计算克隆数。采用GraphPrism6.0软件,Linear-quadratic模型计算拟合剂量生存曲线。1.2.4 裸鼠移植瘤模型建立 取对数生长期的未转染组和TES组细胞,经胰蛋白酶消化后,制备单细胞悬液,用1PBS洗涤细胞3次,计数并用PBS重悬、调整细胞密度为

14、4107/ml。用1ml注射器抽取两组瘤细胞悬液分别接种于裸鼠一侧背部皮下,每个接种部位0.1ml,含活细胞数4106个。接种一周左右开始成瘤。1.2.5 放疗条件及实验分组 取注射瘤细胞悬液的裸鼠用直线加速器进行局部照射肿瘤,每次照射剂量为6Gy,每三天照射一次,总剂量为18Gy。根据是否经历局部照射,将成瘤裸鼠分为四组:未转染组:注射5-8F细胞液;TES组:注射高表达TES的5-8F细胞液;照射组:注射5-8F细胞液的成瘤小鼠经过局部照射;TES照射组:注射高表达TES的5-8F细胞的成瘤小鼠经过局部照射。1.2.6 移植瘤生长情况 接种一周左右开始成瘤实验,每隔3天测量移植瘤裸鼠体质量

15、,游标卡尺测量肿瘤最长直径(a)及最短直径(b),按照公式V=ab2/2计算移植瘤体积并绘制生长曲线。接种一月后,处死小鼠,获取肿瘤组织,称重后计算抑瘤率=(对照组瘤质量-处理组瘤质量)/对照组瘤质量。1.2.7 移植瘤中细胞凋亡情况 胰酶消化肿瘤组织制备成单细胞悬液,高速离心机2000r/min,离心5min;PBS缓冲液洗涤两遍,高速离心机2000r/min,离心5min。去上清液;加入100 l 1BindingBuffer缓冲液,混匀,再加入5 l An-nexinV-异硫氰酸荧光素(FITC)和5 l碘化丙啶(PI),室温条件下孵育15min,最后加入400 l 1BindingBu

16、ffer缓冲液,1h内行流式细胞仪检测细胞凋亡情况。1.3 统计学方法实验结果采用SPSS22.0统计软件分析和GpraphPadPrism5进行作图、分析。本研究采用完全随机设计,所有计量数据均以xs表示。两组间数据采取t检验,多组间数据比较采取单因素方差分析。P0.05),照射后,两组间克隆形成率差异具有统计学意义(均P0.01),见表1、图2。表明TES可增加鼻咽癌5-8F细胞的放疗敏感性。肿瘤防治研究2023年第50卷第8期 CancerResPrevTreat,2023,Vol.50,No.87692.3 TES对裸鼠移植瘤放疗后瘤体生长速度的影响未转染组小鼠瘤体生长速度最快;与未转

17、染组比较,TES组、照射组、TES照射组的小鼠瘤体生长速度减慢,其中TES照射组瘤体生长速度最慢;与TES组、照射组相比较,TES照射组小鼠瘤体生长速度显著降低,且差异具有统计学意义(P0.01),见图3。2.4 TES对裸鼠移植瘤放疗后瘤体质量的影响与未转染组比较,TES组、照射组、TES照射组的瘤体质量依次降低,抑瘤率依次升高,组间多重比较差异均有统计学意义(P0.01),见表2。图1 过表达TES蛋白的表达情况Figure 1 Overexpression of TES protein expression表1 未转染组和TES组照射前后细胞的克隆形成率比较Table 1 Compari

18、son of cell clone formation rates before and after irradiation between the nontransfected and TES groupsRadiotherapydose(Gy)UntransfectedgroupTESgroupFP00.9960.0040.9980.0030.6000.58420.6440.0120.5310.01324.1570.0140.3790.0040.1980.00647.4290.0160.1840.0110.0720.00478.6410.0180.0240.0010.0130.00145.

19、2150.01图2 未转染组和TES组照射前后细胞存活曲线Figure 2 Cell survival curves before and after irradiation in the nontransfected and TES groupsA:Untransfectedgroup;B:TESgroup;C:irradiationgroup;D:TESirradiationgroup.图4 流式细胞仪检测各组细胞凋亡情况 Figure 4 Flow cytometry detection of cell apoptosis in each groupComparingthegroupso

20、ndays7,11,14,17,20,23,26,and29,thecorrespondingF-valueswere0.204,2.037*,16.48*,26.74*,63.04*,309.7*,315.82*,and356.02*;*:P0.05.图3 未转染组、TES组、照射组及TES照射组照射后细胞增殖情况Figure 3 Cell proliferation after irradiation in the untransfected,TES,irradiation,and TES irradiation groups表2 裸鼠移植瘤照射后瘤体质量变化(n=6,xs)Table 2

21、 Changes in tumor weight after the irradiation of transplanted tumors in nude mice(n=6,xs)GroupTumormassTumorinhibitionrateUntransfected2.350.12TES1.910.10a24.65.7Irradiation1.140.09ab50.14.9bTESirradiation0.550.04abc76.62.3bcF39.641*107.628*Notes:a:P0.05,comparedwiththeuntransfectedgroup;b:P0.05,co

22、mparedwiththeTESgroup;c:P0.05,comparedwiththeirradiationgroup;*:P0.05.2.5 流式细胞仪检测各组移植瘤中细胞凋亡情况与未转染组比较,TES组、照射组和TES照射组的细胞凋亡率依次增加。TES照射组细胞凋亡率最高,组间多重比较差异均有统计学意义(P0.05),见图4。肿瘤防治研究2023年第50卷第8期 CancerResPrevTreat,2023,Vol.50,No.87703 讨论鼻咽癌复发是影响患者生存率的重要因素8。在这些复发的患者中,其主要原因是由于机体产生了放射抵抗,从而导致远处转移9。为解决这个问题,越来越多的

23、研究者通过植入基因来改变肿瘤细胞的内在活性,诱导细胞凋亡,从而达到增加放射敏感性的效果10。Testin基因(TES)为目前研究发现的一个重要的抑癌基因,它位于染色体易断裂区域7q31.1/2,在大部分恶性肿瘤中显示为杂合型缺失11。该基因的表达缺失与癌症密切相关,研究发现,Testin基因在多种恶性肿瘤如胃癌、肺癌、淋巴瘤、脑星形细胞瘤、结直肠癌等中表达降低,并且与肿瘤患者的不良预后密切相关,而高表达TES则明显抑制恶性肿瘤细胞的增殖、促进其凋亡12-17。这与本课题组前期研究结果一致,TES在鼻咽癌组织中表达下降18,并且可明显抑制鼻咽癌5-8F细胞的增殖、促进其凋亡5-6。有研究发现,高

24、表达TES可能通过作用于一种细胞骨架调节因子Mena,从而抑制胃癌细胞的增殖、迁移、侵袭和阻滞肿瘤的细胞周期,并且在体外裸鼠实验中抑制胃癌细胞的成瘤性19。Dong等20研究发现TES通过诱导肿瘤细胞凋亡,减少细胞增殖,将肿瘤细胞停滞在细胞G1期,从而增加子宫内膜癌细胞的凋亡、抑制肿瘤的转移及浸润。同样,Wang等21通过流式细胞术揭示了过表达TES可诱导小细胞肺癌细胞凋亡。此外,他们还发现过表达TES对裸鼠体内小细胞肺癌移植瘤形成和生长的抑制作用;相反,TES蛋白表达的减少会增加细胞运动性,减少细胞与细胞之间的接触,因此,TES被认为可能是恶性肿瘤转移的生物标志物22。迄今为止,TES在头颈

25、部肿瘤的研究报道较少,尤其在鼻咽癌细胞放疗敏感性方面的作用尚未报道。我们通过细胞克隆形成实验,分析过表达TES的鼻咽癌5-8F细胞株的放疗敏感性,研究结果显示,TES细胞经照射后,细胞的存活率明显降低(P0.01),说明TES可提高鼻咽癌5-8F细胞的放疗敏感性。为了深入研究TES影响鼻咽癌5-8F细胞放疗敏感性的发生机制,我们建立鼻咽癌5-8F细胞裸鼠移植瘤模型,结果显示,与未转染组比较,TES组、照射组和TES照射组瘤体生长速度依次减慢(P0.05),瘤体质量依次降低,细胞凋亡率依次增加。其中,TES照射组瘤体生长速度最慢、质量下降最大、细胞凋亡率最高。这些结果均提示,TES基因可有效提高

26、鼻咽癌5-8F细胞的放疗敏感性,也提示TES可能是调控鼻咽癌放疗敏感性相关的重要因子。综上所述,高表达Testin基因(TES)可提高鼻咽癌的放疗敏感性,下一步我们将对TES的作用分子机制进行深入研究,希望能为临床应用及鼻咽癌的靶向治疗带来新的思路。利益冲突声明:所有作者均声明不存在利益冲突。参考文献:1KamranSC,RiazN,LeeN.NasopharyngealCarcinomaJ.SurgOncolClinNAm,2015,24(3):547-561.2ZhouHP,QianLX,ZhangN,et al.MIIPgeneexpressionisassociatedwithradi

27、osensitivityinhumannasopharyngealcarcinomacellsJ.OncolLett,2018,15(6):9471-9479.3NieX,GuoE,WuC,et al.SALL4inducesradioresistanceinnasopharyngealcarcinomaviatheATM/Chk2/p53pathwayJ.CancerMed,2019,8(4):1779-1792.4ChenH,DuanX,DengX,et al.EBV-upregulatedB7-H3inhibitsNKcell-mediatedantitumorfunctionandco

28、ntributestonasopharyngealcarcinomaprogressionJ.CancerImmunolRes,2023,11(6):830-846.5周苏娜,张明鑫,张琰君,等.miRNA-381表达及其与鼻咽癌放疗敏感性的关系J.现代肿瘤医学,2017,25(19):3042-3046.ZhouSN,ZhangMX,ZhangYJ,et al.ExpressionofmiRNA-381anditscorrelationwithradiosensitivityinnasopharyngealcarcinomaJ.XianDaiZhongLiuYiXue,2017,25(19)

29、:3042-3046.6ZhongZ,ZhangF,YinSC.EffectsofTestingeneexpressiononproliferationandmigrationofthe5-8FnasopharyngealcarcinomacelllineJ.AsianPacJCancerPrev,2015,16(6):2555-2559.7钟准,尹述成.Testin基因对高转移鼻咽鳞癌细胞的影响J.临床耳鼻咽喉头颈外科杂志,2017,31(21):1676-1680.ZhongZ,YinSC.RoleofTestininnasopharyngealsquamouscancerwithhigh

30、abilityofmetastasisJ.LinChuangErBiYanHouTouJingWaiKeZaZhi,2017,31(21):1676-1680.8 吴巧媛.复发型鼻咽癌的治疗进展J.重庆医学,2022,51(9):1585-1589.WuQY.ProgressintreatmentofrecurrentnasopharyngealcarcinomaJ.ChongqingYiXue,2022,51(9):1585-1589.9中国医师协会放射肿瘤治疗医师分会,中华医学会放射肿瘤治疗学分会.中国鼻咽癌放射治疗指南(2022版)J.中华肿瘤防治杂志,2022,29(9):611-62

31、2.Radiationoncologytherapyphysiciansbranch,Chinesemedicalassociation,Branchofradiationoncology,Chinesemedicalassociation.ChineseGuidelinesforRadiotherapyofNasopharyngealCancer(2022Edition)J.ZhonghuaZhongLiuFangZhiZaZhi,2022,29(9):611-622.10王铭浩,肖大江.放射增敏在局部晚期鼻咽癌综合治疗中的研究现状J.江苏医药,2022,48(5):527-531.Wang

32、MH,Xiao肿瘤防治研究2023年第50卷第8期 CancerResPrevTreat,2023,Vol.50,No.8771DJ.ThecurrentresearchstatusofradiationsensitizationinthecomprehensivetreatmentoflocallyadvancednasopharyngealcarcinomaJ.JiangsuYiYao,2022,48(5):527-531.11 Popiel A,Kobierzycki C,Dzigiel P.The Role of Testin in Human CancersJ.PatholOncol

33、Res,2019,25(4):1279-1284.12KokateSB,DixitP,PoirahI,et al.Testinandfilamin-CdownregulationbyacetylatedSiah2increasesinvasivenessofHelicobacterpylori-infectedgastriccancercellsJ.IntJBiochemCellBiol,2018,103:14-24.13WeeksRJ,LudgateJL,LeMeG,et al.SilencingofTestinexpressionisafrequenteventinspontaneousl

34、ymphomasfromTrp53-mutantmiceJ.SciRep,2020,10(1):16255.14WangDD,ChenYB,ZhaoJJ,et al.TESfunctionsasaMena-dependenttumorsuppressoringastriccancercarcinogenesisandmetastasisJ.CancerCommun(Lond),2019,39(1):3.15WangM,WangQ,PengWJ,et al.Testinisatumorsuppressorinnon-smallcelllungcancerJ.OncolRep,2017,37(2)

35、:1027-1035.16SteponaitisG,KazlauskasA,SkiriuteD,et al.Testin(TES)asacandidatetumoursuppressorandprognosticmarkerinhumanastrocytomaJ.OncolLett,2016,12(5):3305-3311.17ZhuY,QiaoQ.TherelationshipbetweenTESTINexpressionandtheprognosisofcolorectalcancerJ.PatholResPract,2022,232:153744.18张飞,尹述成.Testin基因在鼻咽

36、癌组织中的表达及其临床意义J.临床耳鼻咽喉头颈外科杂志,2016,30(12):982-985.Zhang F,Yin SC.Expression and clinical significance of Testin innasopharyngealcarcinomaJ.LinChuangErBiYanHouTouJingWaiKeZaZhi,2016,30(12):982-985.19王丹丹,陈义兵,赵靖靖,等.TES通过Mena依赖的方式抑制胃癌生长和转移J.癌症,2020,39(7):321-334.WangDD,ChenYB,ZhaoJJ,et al.TESinhibitsthegr

37、owthandmetastasisofgastriccancerthroughaMenadependentmannerJ.AiZheng,2020,39(7):321-33420DongR,PuH,WangY,et al.TESTINwascommonlyhypermethylatedandinvolvedintheepithelial-mesenchymaltransitionofendometrialcancerJ.APMIS,2015,123(5):394-400.21WangM,WangQ,PengWJ,et al.Testinisatumorsuppressorinnon-smallcelllungcancerJ.OncolRep,2017,37(2):1027-1035.22 Popiel A,Kobierzycki C,Dzigiel P.The Role of Testin in Human CancersJ.PatholOncolRes,2019,25(4):1279-1284.编辑:刘红武;校对:黄园玲作者贡献:钟 准:设计研究方案,实验操作,收集与统计数据,撰写论文费永光:收集并整理数据,协助实验操作及数据分析,文稿修改

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