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九寨沟中华蟾蜍和中国林蛙肠道菌群差异分析.pdf

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资源描述

1、 四川动物 Sichuan Journal of Zoology 2023,42(4):439-445九寨沟中华蟾蜍和中国林蛙肠道菌群差异分析黄飞云,向朋,尚可,杨宇,赵春霖,岳碧松*(四川大学生命科学学院,生物资源与生态环境教育部重点实验室,成都610065)摘要:通过16S rRNA高通量测序方法分析采自四川九寨沟国家级自然保护区的中华蟾蜍Bufo gargarizans和中国林蛙Rana chensinensis的肠道菌群结构,结果表明:中华蟾蜍和中国林蛙共有的扩增序列变体(ASV)数目为440,其中特有的ASV分别为313和539。在门级水平上,中华蟾蜍和中国林蛙肠道中疣微菌门Verr

2、ucomicrobiota、厚壁菌门Firmicutes和拟杆菌门Bacteroidota的总丰度分别为96.18%和79.00%。在属级水平上,丰富度0.1%以上的有17个属级单元,总丰度分别占中华蟾蜍和中国林蛙肠道菌群的69.82%和41.37%,其中阿克曼菌属Akkermansia最丰富,分别占48.35%和10.75%。在中国林蛙肠道中,拟杆菌属Bacteroides、另枝菌属Alistipes、脱硫弧菌属Desulfovibrio、丹毒杆菌属Erysipelatoclostridium、瘤胃球菌属Ruminococcus UBA1819、理研菌属Rikenella表现出更高的均匀度。

3、研究结果为进一步深入研究中华蟾蜍和中国林蛙肠道微生物结构和功能提供了基础资料。关键词:中华蟾蜍;中国林蛙;肠道微生物;16S rRNA测序;阿克曼菌属中图分类号:Q959.5 文献标志码:A 文章编号:1000-7083(2023)04-0439-07Differential Analysis of Intestinal Flora Between Bufo gargarizansand Rana chensinensis from JiuzhaigouHUANG Feiyun,XIANG Peng,SHANG Ke,YANG Yu,ZHAO Chunlin,YUE Bisong*(Key L

4、aboratory of BioResource and EcoEnvironment of Ministry of Education,College of Life Sciences,Sichuan University,Chengdu 610065,China)Abstract:Intestinal flora structures of Bufo gargarizans and Rana chensinensis collected from the Jiuzhaigou National Nature Reserve,Sichuan Province were analyzed by

5、 16S rRNA high-throughput sequencing method.The results showed that the number of amplified sequence variants(ASV)shared by B.gargarizans and R.chensinensis was 440,with the specific ASV of 313 and 539,respectively.At phylum level,the total abundance of Verrucomicrobiota,Firmicutes and Bacteroidota

6、in the intestinal tract of B.gargarizans and R.chensinensis was 96.18%and 79.00%,respectively.There were 17 genus-level units with the richness of 0.1%,and the total abundance accounted for 69.82%and 41.37%of the intestinal flora of the two species,with Akkermansia was the most abundant genus(accoun

7、ting for 48.35%and 10.75%,respectively).Furthermore,the genera of Bacteroides,Alistipes,Desulfovibrio,Erysipelatoclostridium,UBA1819 and Rikenella showed higher uniformity in the intestine of R.chensinensis.This study provides basic information for further research on the structure and function of i

8、ntestinal microorganisms of B.gargarizans and R.chensinensis.Keywords:Bufo gargarizans;Rana chensinensis;gut microbes;16S rRNA sequencing;AkkermansiaDOI:10.11984/j.issn.1000-7083.20220356收稿日期:2022-10-08 接受日期:2023-04-06基金项目:第二次青藏高原综合科学考察研究项目(2019QZKK0501)作者简介:黄飞云(1998),硕士研究生,研究方向:野生动植物资源保护与利用,E-mail:

9、*通信作者Corresponding author,E-mail:439四川动物 2023 年 第 42 卷 第 4 期Sichuan Journal of Zoology Vol.42 No.4 2023中华蟾蜍Bufo gargarizans是东亚地区演化最成功的两栖类之一,分布范围广,从太平洋岛屿延伸至青藏高原,分布海拔7503 500 m,在我国除新疆、台湾、海南外均有分布(李苹等,2020;杨巧等,2022)。中华蟾蜍还是传统中药,蟾酥、蟾衣均可入药(梁智佳,2021)。中国林蛙 Rana chensinensis是我国北方地区广泛分布且具有较强陆地生活适应能力的无尾两栖类,分布区包

10、括黑龙江、吉林、辽宁、内蒙古、河北、山西、陕西、甘肃、青海、新疆、山东、江苏、四川、西藏等,哈蟆油为中国林蛙雌蛙输卵管的干制品,是重要的中药(杨红玉,2021;孙敬蒙等,2022)。肠道是动物机体最重要的消化器官,也是众多共生微生物的主要栖息场所。肠道微生物群落作为宿主生理活动的积极参与者,可调节宿主的代谢和生理功能,从而有助于其内稳态的平衡。同样,肠道微生物对于机体健康的维持等方面也发挥着至关重要的作用(申喻嘉等,2021)。肠道微生物菌群结构与多样性和免疫功能、营养代谢等息息相关(孙笑非等,2015;王文娟等,2017;赵零等,2022)。肠道微生物相关研究集中在人和大型脊椎动物,对两栖类

11、肠道微生物的研究较少。蛙类的肠道微生物以拟杆菌门 Bacteroidota、变形菌门Proteobacteria、梭杆菌门Fusobacteriota和厚壁菌门Firmicutes为主要优势菌群(马丽,2015;王建等,2018)。不同蛙类肠道微生物群落差异显示,中国林蛙、黑斑侧褶蛙Pelophylax nigromculatus和牛蛙Rana catesbeiana三者蝌蚪在疣微菌门Verrucomicrobiota、鲸杆菌属 Cetobacterium、邻单胞菌属Plesiomonas和气单胞菌属Aeromonas中具有显著差异(慕丹阳,2018)。而中华蟾蜍肠道微生物结构在个体自身发育过

12、程中具有显著变化,但相关研究还未引起广泛关注。白筱(2017)的研究显示,中华蟾蜍蝌蚪在发育过程中肠道变形菌门的丰度降低而拟杆菌门和梭杆菌门的丰度提高,厚壁菌门内的细菌种类发生变化,放线菌门Actinobacteriota基本消失且新出现了疣微菌门。两栖动物进化地位特殊,其肠道菌群结构对于解析脊椎动物与肠道菌群的共生机制意义重大。为了解成年中华蟾蜍和中国林蛙肠道微生物的组成,并探究两者肠道微生物的差异,本文以同时采自四川九寨沟国家级自然保护区的中华蟾蜍和中国林蛙为对象,采用16S rRNA测序方法,对它们肠道内主要细菌类群及差异进行初步分析,为进一步深入研究提供基础数据。1材料及方法1.1实验

13、材料2021年5月,从四川九寨沟国家级自然保护区(海拔2 930 m)采集成体中华蟾蜍和中国林蛙各3只,尽快送回实验室后,表面冲洗消毒后解剖取消化道,收集肠道内容物于无菌离心管中,液氮保存备用。1.2基因组DNA提取及16S rRNA测序基因组DNA提取按照试剂盒(Sigma-Aldrich,美国)要求进行,DNA样品检测合格后送北京诺禾致源科技股份有限公司进行高通量测序。使用PCR扩增通用引物343F和798R扩增16S rRNA基因的V3至V4可变区。1.3数据分析基于Deblur算法建立扩增序列变体(amplicon sequence variant,ASV)的特征表和特征序列,利用在线

14、平台(Majorbio Biotech Co.,Ltd)和QIIME 1.9.1进行肠道菌群的多样性分析:基于ASV表生成稀释梯度数据用于评估高通量测序中的测序深度和数量是否足以反映该群落样品所包含的微生物多样性;生成物种累积曲线用以分析样品量是否充分;通过t检验分析2个物种的多样性指数(Chaol指数、Shannon指数和Simpson指数)和Pielou指数;通过多样性研究2个物种在细菌水平组成结构的相似性,基于ASV丰度的Bray-curis距离绘制主成分分析图。基于silva138/16s数据库对ASV进行物种分类注释,对不同样本在门和属水平上的物440黄飞云等:九寨沟中华蟾蜍和中国林

15、蛙肠道菌群差异分析种 组 成 情 况 进 行 丰 度 统 计 分 析。最 后 使 用Kruskal-Wallis秩和检验进行线性判别分析,以获得2个物种之间的标志性微生物。2结果分析2.1测序质量评估3 只 中 华 蟾 蜍 和 3 只 中 国 林 蛙 肠 道 细 菌16S rRNA的有效序列数量为70 02786 992,ASV数量为282551,覆盖度均在96%以上(表1),中华蟾蜍和中国林蛙共有的ASV为440,而特有的ASV分别为313和539,表明中国林蛙肠道细菌具有更高的多样性。物种累积曲线趋于平缓(图1:A);稀释曲线也随着样本数的增加逐步趋于渐近线(图1:B),表明测序数据量已覆

16、盖样品中的绝大多数物种,测序数据合理可靠。2.2菌群结构的多样性分析中国林蛙肠道菌群的群落丰富度和群落多样性均比中华蟾蜍的高(表2)。表1样本ASVTable 1Sample ASVs样本Sample中华蟾蜍1中华蟾蜍2中华蟾蜍3中国林蛙1中国林蛙2中国林蛙3有效序列数Valid sequences70 02771 18077 18770 31086 99277 202ASV数量ASVs number491358282444531551覆盖度Coverage/%96.9099.5798.0498.0799.3197.11图1样本测序可靠性分析Fig.1Reliability analysis

17、of sample sequencingA.物种累积曲线,B.稀释曲线A.species accumulation curves,B.refraction curves表2中华蟾蜍和中国林蛙肠道菌群的多样性分析Table 2-diversity analysis of the intestinal flora of Bufo gargarizans and Rana chensinensis样本Sample中华蟾蜍1中华蟾蜍2中华蟾蜍3中国林蛙1中华林蛙2中华林蛙3Chao1指数Chao1 index491.462358.091283.500444.200531.545551.091Pielo

18、u均匀度指数Pielou s evenness index0.6030.5840.3490.7280.7210.655Shannon指数Shannon index5.3894.9542.8416.4066.5235.964Simpson指数Simpson index0.8470.8860.6310.9680.9600.947441四川动物 2023 年 第 42 卷 第 4 期Sichuan Journal of Zoology Vol.42 No.4 20232.3菌群结构的多样性分析中华蟾蜍和中国林蛙的肠道菌群结构表现出明显差异,且中国林蛙肠道菌群结构在个体间差异较大(图2)。2.4肠道菌

19、群在门级水平上的差异在门级水平上,中华蟾蜍和中国林蛙的肠道细菌主要属于厚壁菌门、疣微菌门、拟杆菌门、脱硫杆菌门Desulfobacterota和变形菌门,约占总数的99.00%。在中华蟾蜍肠道中,疣微菌门最丰富,占48.40%,其次是厚壁菌门和拟杆菌门,分别占30.89%和16.89%;而在中国林蛙肠道中,厚壁菌门和 拟 杆 菌 门 细 菌 较 丰 富,分 别 占 45.08%和22.90%,其次是疣微菌门和脱硫杆菌门(图3)。2.5肠道菌群在属级水平上的差异分析中华蟾蜍和中国林蛙肠道菌群中,丰富度在1%以上的有17个属级单元,分别占这2种动物肠道菌群的69.82%和41.37%,其中,阿克曼

20、菌属Akkermansia 最丰富,分别占 48.35%和 10.75%,其次是布雷兹纳基亚属Breznakia、脱硫弧菌属Desulfovibrio、拟杆菌属Bacteroides、另枝菌属Alistipes和理研菌属Rikenella,其他各属占比较小(表3)。2.6线性判别分析线性判别分析显示,中华蟾蜍和中国林蛙肠道菌群中,有 16 个类群的丰度存在显著差异(图 4)。其中,中华蟾蜍肠道菌群中的疣微菌门、阿克曼菌科Akkermansiaceae、疣微菌目Verrucomicrobiales和阿克曼菌属的丰富度均显著高于中国林蛙(P0.05),而振螺目Oscillospirales、疣微菌

21、科Ruminococcaceae、沙氏别样杆菌Alistipes shahii、产己酸菌属Caproiciproducens、颤螺旋菌科Oscillospiraceae、瘤胃球菌属Ruminococcus UBA1819、内脏臭气杆菌Odoribacter splanchnicus、酪酸梭菌属Anaerotruncus、肠杆菌属Intestinibacter、棍状厌氧菌属Anaerorhabdus furcosa_group、巴斯德氏菌目Pasteurellales的丰度均显著低于中国林蛙(P0.1%)of the intestinal flora of Bufo gargarizans an

22、d Rana chensinensis属Genus阿克曼菌属Akkermansia布雷兹纳基亚属Breznakia脱硫弧菌属Desulfovibrio丹毒杆菌属Erysipelatoclostridium拟杆菌属Bacteroides瘤胃球菌属Ruminococcus UBA1819理研菌属Rikenella梭菌属Clostridia_vadinBB60_group另枝菌属Alistipes棍状厌氧菌属Anaerorhabdus_furcosa_groupMucinivorans普氏栖粪杆菌属Faecalitalea疣微菌属UCG-014Clostridia_UCG-014理研菌属dgA-11

23、_gut_group沼生珊瑚菌属Paludicola气单胞菌属Aeromonas青春双歧杆菌属Parabacteroides其他丰度Abundance/%中华蟾蜍Bufo gargarizans48.354.680.300.594.320.330.741.902.850.131.311.251.111.090.270.100.4930.18中国林蛙Rana chensinensis10.750.383.953.385.013.183.510.454.252.000.280.240.320.191.141.061.2858.63443四川动物 2023 年 第 42 卷 第 4 期Sichuan

24、 Journal of Zoology Vol.42 No.4 2023imonas菌的丰度均随着蝌蚪体重减少而改变(白筱,2018)。此外,由于水陆两栖的独特生活史及皮肤的高渗透性,两栖动物比其他类群对环境变化更加敏感,因此推测环境对其具有重大影响。黄皓(2019)的研究显示,来自伊春的东北林蛙Rana dybowskii与哈尔滨的黑龙江林蛙 Rana amurensis肠道中的微生物群落格局存在显著差异。综上所述,两栖类肠道菌群结构的差异应为物种本身及环境因素共同作用的结果。在门级水平显示,中华蟾蜍肠道中疣微菌门丰度最高,中国林蛙肠道中厚壁菌门丰度最高。在属级水平中,仅中华蟾蜍肠道微生物中

25、的阿克曼菌属高于中国林蛙,其他水平均显著低于中国林蛙。推测中华蟾蜍较低的肠道多样性与其发育完全相关,而疣微菌门和阿克曼菌属的高丰度与其高海拔环境及体重降低相适应。此外,中国林蛙肠道中变形菌门水平显著高于中华蟾蜍,同时在属级水平分析中发现,Haemophilus、肠杆菌属、Ralstonia 和 Anaerostignum等的丰度也较高,表明中国林蛙比中华蟾蜍带有更多的条件致病菌。水生动物肠道中存在大量的条件致病菌,对宿主健康造成潜在威胁。宋萍(2011)的研究表明,弧菌属Vibrio、气单胞菌属是水生动物肠道中的常见病原菌属。当受到外界压力时,中国林蛙肠道中的条件致病菌会大量增殖,然而这些致病

26、菌的来源还需要进一步探究,但这些发现为中国林蛙细菌疾病的防治提供了参考。本研究中,相较中国林蛙,中华蟾蜍肠道中的阿克曼菌属这一类群显著升高,占48.35%的高丰度。阿克曼菌是一种革兰氏阴性厌氧菌,它可以利用肠道黏蛋白作为唯一的碳源和氮源进行生长(Macchione et al.,2019;Zhang et al.,2019),其主要代谢产物为丙酸,因此它与宿主的肠道屏障功能、免疫功能、营养吸收和疾病息息相关(赵凡,李春保,2017;Hagi&Belzer,2021)。韩伟等(2019)在人类蛋白组分析中得知,阿克曼菌可以降解胃肠道黏蛋白的酶,如糖苷酶、硫酸酯酶等,说明阿克曼菌在肠道菌群中扮演着

27、重要角色。之前的研究发现,阿克曼菌具有恢复肠道屏障功能、抑制肠道病菌、减少内毒素败血症的作用(冯泽猛等,2016;Derrien et al.,2017)。推测中华蟾蜍肠道中检测到的高丰度阿克曼菌对于其肠道内的条件致病菌有一定的抑制作用。同时,阿克曼菌也与肥胖密切相关,肥胖或者超重的孩子肠道中阿克曼菌含量显著降低,相比之下,正常孩子肠道中的含量则保持了一个较高的水平,在小鼠实验中也得到了相似的结果(Wang,2021;Wang et al.,2022)。益生菌在水生动物生产中的应用越来越广泛,可作为添加剂以提高动物生长、免疫和抗病性,作为调水剂改善水质,但是非宿主来源的益生菌在使用过程中存在潜

28、在风险,宿主来源的益生菌更值得关注和挖掘。鉴于阿克曼菌的丰富功能且较为稀缺,后续可基于培养组学的方法分离中华蟾蜍源阿克曼菌进行评估、基因组测序和动物实验,探究该种源在动物饲养保护上的应用,丰富我国益生菌资源。参考文献:白筱.2017.中华大蟾蜍早期骨化的发生机制研究及变态过程中肠道微生物菌群多样性的研究 D.陕西:陕西师范大学.冯泽猛,包显颖,印遇龙.2016.胃肠道黏液层中 Akkermansia muciniphila 的定殖及其与宿主的相互作用 J.中国农业科学,49(8):1577-1584.韩 伟,王 超,李 晓 敏,等.2019.肠 道 中 Akkermansia muciniph

29、ila数量影响因素的研究进展 J.中国微生态学杂志,31(3):356-359,364.黄皓.2019.东北林蛙和黑龙江林蛙肠道菌群比较及免疫功能初步分析 D.黑龙江:东北林业大学.李苹,谭松,姚忠祎,等.2020.同园环境中不同海拔中华蟾蜍的心脏相对大小:海塞规则是否适合外温动物?J.四川动物,39(4):394-400.梁智佳.2021.中华大蟾蜍(Bufo gargarizans)和中国林蛙(Rana chensinensis)尾吸收分子机制探究 D.陕西:444黄飞云等:九寨沟中华蟾蜍和中国林蛙肠道菌群差异分析陕西师范大学.林璋,祖先鹏,谢海胜,等.2016.肠道菌群与人体疾病发病机制

30、的研究进展 J.药学学报,51(6):843-852.刘文舒,陈彦良,郭小泽,等.2020.虎纹蛙肠道微生物结构与功能分析 J.野生动物学报,41(1):171-181.卢明,刘蔷,刘婧,等.2020.肠道微生物菌群分型的研究进展 J.中国微生态学杂志,32(3):345-351.马丽.2015.绿蛙蝌蚪消化道超微结构及其微生物群落多样性的研究 D.陕西:陕西师范大学.慕丹阳.2018.三种不同蛙的幼体肠道微生物种群对比和重金属对其菌群变化的影响研究 D.陕西:陕西师范大学.申喻嘉,任超璐,滕依然,等.2021.中国林蛙蝌蚪肠道及皮肤微生物多样性分析J.动物学杂志,56(3):417-431.

31、宋萍.2011.水生动物的病原菌(上)J.科学养鱼,(10):82.孙敬蒙,汪卓明,郭毅,等.2022.中国林蛙不同生长阶段哈蟆油中 PUFAs 与 FAD 关联性 J.野生动物学报,43(2):444-452.孙笑非,王文娟,孙冬岩.2015.肠道微生物对宿主的适应性研究进展 J.饲料研究,13:39-40,47.王健,王玲,鲁康乐,等.2018.摄食全豆粕蛋白饲料的牛蛙肠道微生物组成 J.集美大学学报(自然科学版),23(4):241-248.Wang L,朱姗姗(译).2021.从嗜黏蛋白艾克曼氏菌(Akkermansia muciniphila)提取的外膜蛋白或巴氏灭菌的嗜黏蛋白艾克曼

32、氏菌(Akkermansia muciniphila),可通过调节 CD8+T细胞抑制小鼠结肠炎相关肿瘤的发生 J.广东饲料,30(7):52.王文娟,孙冬岩,孙笑非.2017.肠道菌群的组成、调节及其对宿主健康的影响 J.饲料研究,(21):25-27.杨红玉.2021.中国林蛙和中华大蟾蜍跳跃能力的比较以及中国林蛙后肢的软骨内骨化发育机制 D.陕西:陕西师范大学.杨巧,谭松,张月婵,等.2022.中华蟾蜍静止代谢率与高耗能器官大小的关系 J.四川动物,41(2):133-142.赵凡,李春保.2017.肠道菌Akkermansia muciniphila的特性及其与机体健康的关系 J.微生

33、物学通报,44(6):1458-1463.赵零,武树奇,许宁宁,等.2022.肠道上皮与肠道微生物相互作用的研究现状 J.微生物学通报,49(8):3508-3519.Derrien M,Belzer C,de Vos WM,et al.2016.Akkermansia muciniphila and its role in regulating host functionsJ.Microbial Pathogenesis,106:171-181.Hagi T,Belzer C.2021.The interaction of Akkermansia muciniphila with host-

34、derived substances,bacteria and dietsJ.Applied Microbiology and Biotechnology,105(12):4833-4841.He JW,Zhou XJ,Lv JC,et al.2020.Perspectives on how mucosal immune responses,infections and gut microbiome shape IgA nephropathy and future therapies J.Theranostics,10(25):11462-11478.Macchione IG,Lopetuso

35、 LR,Ianiro G,et al.2019.Akkermansia muciniphila:key player in metabolic and gastrointestinal disordersJ.European Review for Medical and Pharmacological Sciences,23(18):8075-8083.Maki JJ,Cassidy LK,Matthew JS,et al.2019.The microbial pecking order:utilization of intestinal microbiota for poultry heal

36、th J/OL.Microorganisms,7(10):376 2022-07-10.https:/doi.org/10.3390/microorganisms7100376.Shi N,Li N,Duan XW,et al.2017.Interaction between the gut microbiome and mucosal immune systemJ.Military Medical Research,4(3):170-177.Song X,Zhang J,Song J,et al.2021.Decisive effects of life stage on the gut m

37、icrobiota discrepancy between two wild populations of hibernating Asiatic toads(Bufo gargarizans)J/OL.Frontiers in Microbiology,12:665849 2022-07-10.https:/doi.org/10.3389/fmicb.2021.665849.Wang Y,Van de Wouw M,Drogos L,et al.2022.Sleep and the gut microbiota in preschool-aged childrenJ/OL.Sleep,45(6):1 2022-07-10.https:/doi.org/10.1093/sleep/zsac020.Zhang T,Li Q,Cheng L,et al.2019.Akkermansia muciniphila is a promising probiotic J.Microbial Biotechnology,12(6):1109-1125.445

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