1、单核细胞增生性李斯特氏菌tatD基因缺失对小鼠毒力和肠道菌群的影响牛俊辉1,2,3,李琦1,3,毛福超1,3,钱满1,2,3,贾艳艳1,2,3,丁轲1,2,3,张春杰1,2,3,程相朝1,2,3,廖成水1,2,3(1.河南科技大学动物科技学院功能微生物与畜禽健康实验室,河南洛阳471023;2.河南科技大学洛阳市活载体生物材料与动物疫病防控重点实验室,河南洛阳471023;3.河南科技大学动物疫病与公共卫生重点实验室,河南洛阳471023)摘要:【目的目的】探究单核细胞增生性李斯特氏菌 Listeria monocytogenes tatD 基因缺失对小鼠 Mus musculus 毒力和肠道
2、菌群的影响,为 tatD 在单核细胞增生性李斯特氏菌与宿主互作中的作用及减毒疫苗研究提供参考。【方法方法】采用 Bliss 法将亲本菌株(LM10403s)、缺失菌株(LM10403statD)和互补菌株(LM10403sCtatD)口服感染小鼠,确定菌株对小鼠的半数致死量(LD50)。LM10403statD 以 1.00105CFU 口服免疫小鼠观察其免疫保护效果。将 40 只 6 周龄雌鼠随机平均分为对照即磷酸缓冲盐溶液组(PBS)、LM10403s 组、LM10403statD 组和 LM10403sCtatD 组,PBS 组小鼠灌胃 200L 无菌 PBS,实验组分别灌胃 200L
3、含 1.00106CFU 的菌液。灌胃 24h 后剖杀各组小鼠,收集肠道内容物,采用IlluminaHiseq 测序技术测定各处理小鼠盲肠样品微生物 16SrRNAV3V4 区序列,并比较分析其微生物群落结构、多样性和信号通路富集。【结果结果】LM10403statD 的 LD50为 8.11107CFU,毒力低于 LM10403s。同时 LM10403statD 口服免疫小鼠后对单核细胞增生性李斯特氏菌亲本菌株的攻毒能提供 80%保护率。Chao1 和 Observedspecies 指数显示:PBS 与 LM10403statD 处理组差异不显著,但 LM10403s 组和 LM10403
4、sCtatD 处理组相比于 PBS 处理组显著下降(P0.05)。在门水平上,LM10403statD 处理组的厚壁菌门 Firmicutes 相对丰度高于 LM10403s 和 LM10403sCtatD 处理组,而在属水平上,乳杆菌属 Lactobacillus 相对丰度高于 LM10403s 和 LM10403sCtatD 处理组。功能预测分析显示:LM10403s 处理组在细胞过程、环境信息处理和新陈代谢等信号通路的富集程度高于 LM10403statD 处理组。【结论结论】tatD 基因缺失后单核细胞增生性李斯特氏菌的毒力降低,并具有一定的免疫保护效果。tatD 基因缺失菌株感染小鼠
5、对肠道菌群失调影响减小,且有益菌增多。图 6 表 1 参 21关键词:tatD 基因;单核细胞增生性李斯特氏菌;毒力;16SrRNA;肠道菌群中图分类号:S811.6文献标志码:A文章编号:2095-0756(2024)01-0161-08EffectoftatDgenedeletionofListeria monocytogenesonvirulenceandgutmicroflorainmiceNIUJunhui1,2,3,LIQi1,3,MAOFuchao1,3,QIANMan1,2,3,JIAYanyan1,2,3,DINGKe1,2,3,ZHANGChunjie1,2,3,CHENG
6、Xiangzhao1,2,3,LIAOChengshui1,2,3(1.LaboratoryofFunctionalMicrobiologyandAnimalHealth,CollegeofAnimalScienceandTechnology,HenanUniversityofScienceandTechnology,Luoyang471023,Henan,China;2.LuoyangKeyLaboratoryofLiveCarrierBiomaterial and Animal Disease Prevention and Control,Henan University of Scien
7、ce and Technology,Luoyang收稿日期:2022-12-10;修回日期:2023-09-30基金项目:河南省科技攻关项目(182102110061);河南科技大学研究生创新基金项目(CXJJ-2021-KJ07);河南科技大学青年骨干教师培养计划(13450009)作者简介:牛 俊 辉(ORCID:0009-0009-3901-2387),从 事 微 生 物 感 染 与 固 有 免 疫 细 胞 作 用 研 究。E-mail:。通信作者:廖成水(ORCID:0000-0002-8130-2056),副教授,博士,从事微生物感染与固有免疫细胞作用研究。E-mail:浙江农林大学
8、学报,2024,41(1):161168Journal of Zhejiang A&F Universitydoi:10.11833/j.issn.2095-0756.20220758471023,Henan,China;3.The Key Lab of Animal Disease and Public Health,Henan University of Science andTechnology,Luoyang471023,Henan,China)Abstract:Objective This study,with an investigation of the effects of t
9、atD gene deletion in Listeriamonocytogenesonvirulenceandgutmicrobiotainmice(Mus musculus),isaimedtoprovidereferencefortheroleoftatDintheinteractionbetweenL.monocytogenesandthehost,aswellasforthestudyofattenuatedvaccines.MethodFirst,micewereorallyinfectedwithLM10403s,LM10403statDandLM10403sCtatDstrai
10、ns using the Bliss method to determine the strain s median lethal dose(LD50)for mice beforeimmunoprotective effect of LM10403statD was observed in mice immunized with 1.00105 CFU orally.Then,forty 6-week-old female mice were randomly and equally divided into PBS(ck),LM10403s,LM10403statD,andLM10403s
11、CtatDgroups,withthoseintheckgroupgavagedwith200LofsterilePBSandtheonesintheexperimentalgroupgavagedwith200Lofbacterialsolutioncontaining1.00106CFU,respectively.Next,after24hofgavage,themiceineachgroupweredissectedandkilled,withintestinalcontentscollectedbeforeIlluminaHiseqsequencingtechnologywasused
12、todeterminethesequencesofthemicrobial16SrRNAV3V4regionsofthececumsamplesfromeachgroupsothatacomparativeanalysiswasconductedofthestructureofmicrobialcommunities,diversity,andsignalingpathwayenrichment.ResultTheLD50ofLM10403statDwas8.11107CFU,whichwaslessvirulentthanthatoftheparentalstrain.Oralimmuniz
13、ationofmicewithLM10403statDprovided80%protectionagainstL.monocytogenesparentalstraininfection.Chao1andObservedspeciesindicesshowedthatthedifferencebetweenckandLM10403statDgroupwasnotsignificant,butLM10403sandLM10403sCtatDgroupweresignificantlylowercomparedtockgroup(P0.05).Atthephylumlevel,therelativ
14、eabundanceoftheFirmicutesinLM10403statDgroupwashigherthanthatinLM10403sandLM10403sCtatDgroup,andatthegenuslevel,therelativeabundanceofthegenus,LactobacillusinLM10403statDgroupwashigherthanthatinLM10403sandLM10403sCtatDgroupfunctionalpredictionanalysisshowedthatLM10403sgroupinsignalingpathwaysincludi
15、ngcellularprocesses,environmentalinformationprocessing,andmetabolismwasmoreenrichedthantheLM10403statDgroup.ConclusionThedeletionoftatDgenereducedthevirulenceofL.monocytogenesandhadanimmunoprotectiveeffectswhileinfectionofthetatDgenedeletionmutantstraininmicereducedtheeffectonintestinalfloradysbiosi
16、sandincreasedthebeneficialbacteria.Ch,6fig.1tab.21ref.Key words:tatDgene;Listeria monocytogenes;virulence;16SrRNA;gutmicrobiota单核细胞增生性李斯特氏菌 Listeria monocytogenes 是一种重要食源性人畜共患致病菌1,侵入机体后可穿过肠道屏障,经淋巴和血液循环进入肝脏和脾脏,随后到达大脑和胎盘2,引起败血症、脑膜炎以及早产或流产等症状3。单核细胞增生性李斯特氏菌广泛存在于牛奶、蔬菜和动物性食品等供应链中,由其引发的食物中毒病例逐年增多,虽然人类感染单核细
17、胞增生李斯特氏菌发病率相对较低,但一旦感染死亡率可达 30%70%,占食源性病原菌感染死亡的半数以上4。单核细胞增生性李斯特氏菌分泌的胞外蛋白在细菌感染宿主中发挥着重要作用。细菌存在多种分泌系统将效应蛋白转运至胞外,其中双精氨酸转运系统(twinagininetranslocation,Tat)是运输完全折叠蛋白质的一种分泌系统5。双精氨酸转运系统 D(twinagininetranslocationD,TatD)是一种高度保守蛋白,广泛存在于微生物中,可作为一种重要的毒力因子参与修复 DNA、降解胞外诱捕网和诱发细胞程序性凋亡6。伊氏锥虫Trypanosoma evansi 和路氏锥虫 Tr
18、ypanosoma lewisi 可分泌 TatD 蛋白,降解巨噬细胞胞外诱捕网以对抗宿主的固有免疫反应7。毛福超8研究发现:单核细胞增生性李斯特氏菌 TatD 重组蛋白具有核酸酶活性,同时通过重组自杀性质粒介导的等位基因交换技术获得了 tatD 基因缺失菌株(LM10403statD),但关于单核细胞增生性李斯特氏菌 tatD 基因对动物的毒力和肠道菌群影响仍不清楚。因此,本研究以小162浙江农林大学学报2024 年 2 月 20 日鼠 Mus musculus 为试验动物,将 LM10403statD 口服感染小鼠,观察 tatD 基因缺失后的单核细胞增生性李斯特氏菌对小鼠毒力和肠道菌群多
19、样性的影响,为进一步探究 tatD 基因在单核细胞增生性李斯特氏菌与宿主互作中的具体作用以及减毒疫苗研究提供科学依据。1材料与方法1.1材料单核细胞增生性李斯特氏菌亲本菌株(LM10403s)、缺失菌株(LM10403statD)和互补菌株(LM10403sCtatD)存于洛阳市活载体生物材料与动物疫病防控重点实验室,6 周龄雌鼠购自郑州中原动物实验中心。琼脂购自生工生物工程(上海)股份有限公司。卡那霉素购自金克隆(北京)生物技术有限公司。脑心膜浸出液(BHI)肉汤购自青岛海博生物技术有限公司。粪便基因组 DNA 提取试剂盒购自天根生化科技(北京)有限公司;TksGflexDNAPolymer
20、ase 购自宝日医生物技术(北京)有限公司;DNA 凝胶快速纯化试剂盒购自北京全式金生物技术有限公司。1.2菌株的复苏与培养将单核细胞增生性李斯特氏菌 LM10403s 和 LM10403statD 接种于 BHI 固体培养基上复苏,将LM10403sCtatD 接种于含卡那霉素的 BHI 固体培养基上复苏,37 恒温培养箱中培养 1216h。挑取LM10403s 和 LM10403statD 单个菌落接种于 BHI 肉汤中,挑取 LM10403sCtatD 单个菌落接种于含卡那霉素的 BHI 肉汤中,37 过夜振荡培养备用。1.3菌株对小鼠的毒力测定用无菌生理盐水将新鲜培养的 LM10403
21、s、LM10403statD 和 LM10403sCtatD 洗涤后进行连续10 倍稀释,选取 5 个稀释度的细菌分别给予小鼠口服灌胃,每个稀释度 10 只小鼠,每只 100L,灌胃前 12h 禁食禁水,接种 2h 后正常饲喂。以给予生理盐水的小鼠作为对照,持续观察各处理组小鼠症状直至无小鼠死亡。将死亡小鼠的肝脏无菌接种到 BHI 固体培养基上,用单核细胞增生性李斯特氏菌引物进行 PCR 扩增鉴定。采用 Bliss 法得到菌株对小鼠的半数致死量(LD50)。1.4缺失菌株的免疫保护率测定用无菌生理盐水将新鲜培养的 LM10403statD 洗涤后调整细菌浓度,以 1.00105CFU 的剂量给
22、予小鼠口服灌胃,灌胃前 12h 禁食禁水,接种 2h 后正常饲喂。于首次免疫 7d 后按相同剂量进行第 2 次免疫,第 2 次免疫 7d 后以给予 1.001010CFU 的剂量对小鼠进行亲本菌株的攻毒。随后持续观察直至连续 7d 无小鼠死亡,记录各处理组小鼠症状及死亡情况。以未免疫强毒攻毒组和健康组为对照评价tatD 基因缺失菌株的免疫保护效果。1.5菌株对小鼠肠道菌群的影响1.5.1动物分组与处理将 40 只 6 周龄昆明雌鼠适应性饲养 7d,随机平分为磷酸缓冲盐溶液(PBS)、LM10403s、LM10403statD 和 LM10403sCtatD 处理组。分别灌胃 200L 含 1.
23、00106CFU 的菌液,对照组小鼠灌胃 200L 无菌 PBS,灌胃前 12h 断食,并口服体积分数为 10%的 Na2HCO3中和胃酸。灌胃 24h 后采用颈椎脱臼剖杀小鼠,立即收集肠道内容物。1.5.2小鼠肠道微生物基因组 DNA 提取与高通量测序利用粪便基因组试剂盒提取基因组 DNA,采用质量浓度为 1%的琼脂糖凝胶电泳和 Nanodrop2000 测定 DNA 浓度。以基因组 DNA 为模板,针对细菌V3V4 作为目标区域进行扩增。引物:343F(5-TACGGRAGGCAGCAG-3)和 798R(5-AGGGTATCTAATCCT-3)。琼脂糖凝胶电泳检测 PCR 扩增产物,磁珠
24、法纯化 PCR 产物。送往上海欧易生物医学科技有限公司利用 IlluminaHiseq2500(PE250)系统进行高通量测序。1.5.3生物信息学分析高通量测序得到的 4 组小鼠原始图像数据文件经碱基识别,分析转化为原始双端序列。利用 Trimmomatic(v0.35)、FLASH(v1.2.11)、split_libraries(v1.8.0)和 UCHIME(v2.4.2)等软件对原始序列进行质控,得到优质序列。使用 Vsearch(v2.4.2)软件按照 97%的相似度进行操作分类单元(OTU)分类9,并进行 Alpha 和 Beta 多样性分析以及菌群构成分析。比较 4 个处理组小
25、鼠肠道菌群在门和属水平的分布差异。采用 PICRUSt 软件结合京都基因及基因组百科全书(KEGG)分析各组小鼠肠道菌群信号通路富集情况。第 41 卷第 1 期牛俊辉等:单核细胞增生性李斯特氏菌 tatD 基因缺失对小鼠毒力和肠道菌群的影响1631.6统计分析采用 GraphPadPrism(v8.0.1)软件对数据进行差异性检验,显著性水平为 0.05。2结果与分析2.1缺失菌株对小鼠毒力的影响从表 1 可见:小鼠经口服接种不同稀释含量的LM10403s、LM10403statD 和 LM10403sCtatD 后,各组均有小鼠死亡,而无菌生理盐水对照组的小鼠均未发生死亡。PCR 扩增鉴定死
26、亡小鼠肝脏分离的细菌为单核细胞增生性李斯特氏菌。通过 Bliss 法计算 得 到 LM10403statD 口 服 感 染 小 鼠 的 LD50为8.11107CFU,LM10403s 的 LD50为 1.23107CFU,LM10403sCtatD 的 LD50为 1.94107CFU。表明单核细胞增生李斯特氏菌敲除 tatD 基因后毒力下降。2.2LM10403statD的免疫保护率LM10403statD 经灌胃第 2 次免疫 7d 后,将LM10403s 调整为 1.001010CFU 对小鼠进行攻毒。结果显示:未免疫的 LM10403s 攻毒组小鼠于攻毒后全部死亡,无菌生理盐水对照组
27、小鼠未发生死亡。而免疫 LM10403statD 的接种组共 2 只小鼠死亡,死亡时间分别为攻毒感染后的第 6 天和第 9 天,其余存活小鼠的精神状态良好,免疫保护率为80%。表明单核细胞增生性李斯特氏菌 tatD 基因缺失菌株能够对亲本菌株感染小鼠产生较好的免疫效果。2.3tatD基因缺失对单核细胞增生性李斯特氏菌感染小鼠肠道微生物 OTU 分布的影响对质控得到的优质序列,按照 97%的相似度进行 OTU 分类,采用维恩图对 4 个处理组 OTU 分布情况进行分析。PBS、LM10403s、LM10403statD和 LM10403sCtatD4 个处理独有的 OTU 分别为1703、755
28、、1057 和597 个,4 组共有1781 个OTU。肠道菌群多样性由高到低依次为 PBS、LM10403-statD、LM10403s、LM10403sCtatD 处理组(图 1)。表明 tatD 基因缺失后使得单核细胞增生性李斯特氏菌感染小鼠后肠道菌群多样性增加。2.4tatD基因缺失对单核细胞增生李斯特氏菌感染小鼠肠道微生物 Alpha 多样性的影响从图 2 可见:4 个处理样品的 Shannon 指数和 Simpson 指数差异不显著。Chao1 和 Observedspecies指数显示:PBS 与 LM10403statD 处理组差异不显著,但 LM10403s 和 LM1040
29、3sCtatD 处理组相比于PBS 处理组显著下降(P0.05)。表明各处理小鼠肠道菌群物种均匀度相差不大,但亲本菌株感染小鼠时肠道菌群丰富度显著降低。2.5tatD基因缺失对单核细胞增生性李斯特氏菌感染小鼠肠道微生物 Beta 多样性的影响Beta 多样性包括多种分析方法,其中非度量多维尺度分析(NMDS)能更好地反映生态学数据的非线性结构,相同颜色为相同分组,同一组的样本距离越近,并与其他组有明显距离,说明分组效果好。图 3显示:PBS 与各处理组样本距离较远,LM10403statD 与 LM10403s、LM10403sCtatD 处理组距离相对表1不同菌株的毒力测定Table1Str
30、ainvirulencedeterminationofbacterialstrain处理接种剂量/CFU死亡数/只半数致死量/CFU4.6110984.611087LM10403statD4.6110758.111074.6110624.6110512.8010992.801086LM10403sCtatD2.8010751.941072.8010632.8010534.451098LM10403s4.4510864.4510761.231074.4510654.451053PBS0说明:每个稀释度10只小鼠。7553692941 7033773233451 0571 578305241356
31、395225597PBSLM10403sLM10403statDLM10403sCtatD图1tatD 基因缺失对单核细胞增生性李斯特氏菌感染小鼠肠道微生物的 OTUs 维恩图Figure1OTUs venn diagram of tatD gene deletion on intestinalmicroorganismsofL.monocytogenesinfectedmice164浙江农林大学学报2024 年 2 月 20 日远,LM10403s 和 LM10403sCtatD 处理组样本的聚集相近。表明 LM10403statD 与 LM10403s、LM-10403sCtatD 处理组
32、群落存在差异,但差异不大。2.6单核细胞增生性李斯特氏菌tatD缺失对小鼠肠道门水平微生物种群分布的影响在门水平上,使用平均丰度前 50 位的门丰度数据绘制热图。结果显示:优势菌门为厚壁菌门Firmicutes、变 形 菌 门 Proteobacteria、放 线 菌 门Actinobacteria、梭杆菌门 Fusobacteria 和拟杆菌门Bacteroidetes。LM10403statD 处理组的厚壁菌门丰度 明 显 高 于 LM10403s 和 LM10403sCtatD 处 理组,拟 杆 菌 门 明 显 低 于 LM10403s 和 LM10403-sCtatD 处理组(图 4)
33、。表明单核细胞增生性李斯特氏菌 tatD 基因缺失后,厚壁菌门明显增加,且与PBS 处理组结果相似。不同字母表示不同处理间差异显著(P0.05)。1、2、3、4 分别表示处理 PBS、LM10403s、LM10403statD、LM10403sCtatD。Chaol 指数处理3 000aaaaaaaaaabbaa2 5002 0001 5001 0005000bb2 000Shannon 指数8642010Simpson 指数Observed species 指数1.51.00.501 00001234处理1234处理1234处理1234图2tatD 基因缺失对单核细胞增生性李斯特氏菌感染小鼠
34、的 Alpha 多样性分析Figure2AlphadiversityindexanalysisofL.monocytogenesinfectedmicebydeletionofthetatDgene K01K02K03K04K05L01L02L03L04 L05LC01LC02LC03LC04LC05T01T02T03T04T05压力为0.0672110123012非度量多维度尺度分析 1非度量多维度尺度分析 2 a a a aPBSLM10403sLM10403statDLM10403sCtatD小圆点序号分别表示不同处理相应的 5 个重复样本。图3tatD 基因缺失对单核细胞增生性李斯特氏
35、菌感染小鼠的 Beta 多样性分析Figure3Beta diversity index analysis of L.monocytogenes infectedmicebydeletionofthetatDgeneOTU_519OTU_22OTU_62OTU_12OTU_282OTU_9007OTU_32OTU_356OTU_73OTU_1625OTU_286OTU_60OTU_3OTU_176OTU_159OTU_126OTU_395OTU_1667OTU_36OTU_193OTU_253OTU_50OTU_143OTU_801OTU_86OTU_108OTU_267OTU_74OTU_2
36、5OTU_59OTU_162OTU_144OTU_63OTU_1175OTU_19OTU_78OTU_8934OTU_133OTU_1165OTU_100OTU_30OTU_140OTU_16OTU_163OTU_2178OTU_324OTU_153OTU_166OTU_463OTU_183放线菌门拟杆菌门厚壁菌门梭杆菌门变形菌门1.00.500.51.01234热值1、2、3、4 分别表示处理 PBS、LM10403s、LM10403statD、LM10403sCtatD。图4单核细胞增生性李斯特氏菌 tatD 缺失株感染小鼠肠道门水平微生物种群的热图分析Figure4Heatmapgrap
37、hofgutmicrobiotainmiceaftertatDmutantofL.monocytogenesinfectionatthephylumlevel第 41 卷第 1 期牛俊辉等:单核细胞增生性李斯特氏菌 tatD 基因缺失对小鼠毒力和肠道菌群的影响1652.7单核细胞增生性李斯特氏菌tatD缺失对小鼠肠道属水平微生物种群分布的影响在属水平上,LM10403s、LM10403statD 和 LM10403sCtatD 处理组要由乳杆菌属 Lactobacillus、拟杆菌属 Bacteroides 和肠杆菌属 Enterorhabdus 组成。LM10403statD 处理组的乳杆菌
38、属相对丰度明显高于 LM10403s 和 LM10403sCtatD 处理组(图 5)。表明 tatD 基因缺失使单核细胞增生性李斯特氏菌感染的小鼠肠道菌群中乳杆菌属增加。0255075100相对丰度/%处理乳酸杆菌属 Lactobacillus拟杆菌属 Bacteroides肠杆菌属 Enterorhabdus毛螺菌属 Lachnospira_NK4A136_group黄单胞菌属 Stenotrophomonas大肠埃希菌志贺菌属 Escherichia-Shigella毛螺旋菌属 Parasutterella拟普雷沃菌属 Alloprevotella另枝菌属 Alistipes理研菌属 R
39、ikenella_RC9_gut_group双歧杆菌属 Bifidobacterium蓝绿藻菌属 Lachnoclostridium普雷沃氏菌属 Prevotella普拉梭菌属 Faecalibacterium链球菌属 Streptococcus葡萄球菌属 Staphylococcus经黏液真杆菌属 Blautia鞘氨醇单胞菌属 Sphingomonas红蝽菌属 Coriobacterium_UCG-002副杆菌属 Parabacteroides优杆菌属 Eubacterium_coprostanoligenes_group螺杆菌属 Helicobacter瘤胃球菌属 Ruminococcus
40、_UCG-014罗斯氏菌属 Roseburia马赛菌属 Massilia克雷伯菌属 Klebsiella假单胞菌属 Pseudomonas瘤胃球菌属 Ruminococcus_UCG-010肠鼠杆菌属 Muribaculum其他菌属 othersPBSLM10403sLM10403statDLM10403sCtatD图5单核细胞增生性李斯特氏菌 tatD 缺失株感染小鼠肠道属水平微生物种群的分析Figure5AnalysisofgutmicrobiotainmiceaftertatDmutantofL.monocytogenesinfectionatthegenuslevel2.8单核细胞增生
41、性李斯特氏菌tatD对小鼠肠道微生物 KEGG 的功能预测为进一步分析 tatD 基因缺失后小鼠肠道菌群改变引起的信号通路富集的差异,采用 PICRUSt 软件结合 KEGG,分析 4 组小鼠在遗传信息处理、生物体系统、新陈代谢、疾病、细胞过程和环境信息处理信号通路富集的差异。结果显示:LM10403statD和 PBS 处理组 6 类生物代谢通路相关性较低,而LM10403s 处理组具有较高的相关性(图 6)。表明 tatD基因缺失可能在单核细胞增生性李斯特氏菌感染小鼠肠道时,影响其细胞过程、新陈代谢等方面。3讨论与结论李斯特菌是一种强侵袭性胞内菌,可穿透肠道、血脑和胎盘屏障。自单核细胞增生
42、性李斯特氏菌基因组公布后,大量毒力相关基因已被发掘,并已深入探讨其在单核细胞增生性李斯特氏菌致病性方面的作用10。作为重要的效应蛋白转运系统,Tat 系统在单核细胞增生性李斯特氏菌穿越宿主肠道屏障过程发挥何种作用仍不清楚。因此,在本研究前期获得单核细胞增生性李斯特氏菌缺失菌株LM10403statD 的基础上进一步探究其口服感染小鼠的毒力,同时采用高通量测序的方法观察其对小鼠肠道菌群的影响。毒力是微生物对宿主造成损害的相对能力,更是微生物得以在宿主体内传播的主要因素之一11。单核细胞增生李斯特氏菌感染过程中,包括 Tat 分泌系统在内的转运系统调控释放大量效应蛋白12。ZHANG 等13将化脓
43、隐秘杆菌 Trueperella pyogenes菌株 tatD 基因敲除后,缺失菌株在小鼠脾脏的细菌载量以及毒力明显较低。本研究也观察到了单核细胞增生性李斯特氏菌 tatD 基因缺失后,口服感染小鼠的 LD50由 1.23107CFU 降为 8.11107CFU。JHELUM 等14也发现:tatD 基因缺失的肺炎链球菌Streptococcus pneumoniae 在肺、血液和脾脏中负荷的细菌较少,并且对肺脏的病理损伤也较小,证实了tatD 基因缺失后肺炎球菌毒性降低。NrfC 和 NapG 蛋白属于铁硫蛋白,铁硫蛋白家族中的其他成员在促进细菌代谢中发挥了重要的作用,并能促进细菌在更严酷
44、的环境中得以生存1516,这 2 个蛋白在野生型菌株中迅速降解,但 MATOS 等16将大肠埃希菌 Escherichia coliMC4100 菌株的 tatD 基因敲除后,发1.00.500.51.0遗传信息处理相关值其他生物体系统新陈代谢未分类人类疾病细胞过程环境信息处理PBSLM10403sLM10403statDLM10403sCtatD图6单核细胞增生性李斯特氏菌 tatD 缺失株感染小鼠肠道微生物 KEGG 通路差异Figure6DifferencesofKEGGpathwayingutmicrobialinmiceaftertatDmutantofL.monocytogenes
45、infection166浙江农林大学学报2024 年 2 月 20 日现 NrfC 和 NapG 蛋白在 tatD 基因缺失菌株中高度稳定。因此,这也有助于理解 tatD 基因缺失后,单核细胞增生性李斯特氏菌的毒力下降不大,但这种现象还需进一步研究证实。尹诗恒等17为探究松材线虫 Bursaphelenchus xylophilus 侵染下,松干、松针与根系部位内生细菌菌群的影响,选用高通量测序方法来进行研究。本研究同样采用高通量测序的方法探究单核细胞增生性李斯特氏菌 tatD 基因缺失对小鼠肠道菌群的影响。肠道菌群测序显示:各处理组小鼠肠道菌群的物种均匀度相差不大,但亲本菌株感染小鼠时肠道菌
46、群的丰富度显著降低。动物肠道中的细菌门主要有厚壁菌门、拟杆菌门、放线菌门和变形菌门18。厚壁菌门是肠道菌群中的一个优势菌门,且其中包含许多有益菌,例如:芽孢杆菌属 Bacillus、肠球菌属 Enterococcus、乳杆菌属和乳球菌属 Lactococcus 等19。在门水平上,LM10403statD 处理组的厚壁菌门丰度明显高于 LM10403s 和 LM10403sCtatD 处理组。乳酸菌是公认的安全食品级微生物,在食物发酵和益生菌的应用中发挥着重要作用20。服用乳酸菌制剂的人群与其他人群相比,具有肠道屏障功能增强、肠道菌群平衡、炎症消散加快和免疫力增强等特征21,表明乳酸菌具有治疗
47、肠道功能紊乱、维持肠道菌群平衡和抵御肠道致病菌等多种作用。在门水平上,LM10403statD 组与 PBS 处理组的厚壁菌门差异不大。但厚壁菌门包含许多菌属,进一步属水平分析单核细胞增生性李斯特氏菌 tatD 基因缺失感染对小鼠肠道菌群的影响。LM10403statD 处理乳杆菌属相对丰度为 20%,显著高于 LM10403s 和 LM10403sCtatD 处理组。因此,tatD 基因缺失使单核细胞增生性李斯特氏菌感染的小鼠肠道菌群中有益菌增加。KEGG 功能预测发现:LM10403statD 和 PBS 处理组与 6 类生物代谢通路相关性较低,而 LM10403s 处理组与 6 类生物代
48、谢通路相关性较高。因此,tatD 基因可能直接或间接参与细胞过程和环境信息处理等信号通路。综上所述,本研究发现单核细胞增生性李斯特氏菌 tatD 缺失菌株感染小鼠毒力较亲本菌株明显下降,并且有较好的免疫保护效力。单核细胞增生性李斯特氏菌 tatD 基因缺失感染小鼠后,肠道菌群多样性高于亲本菌株,且有益菌增加。同时,发现 tatD 基因可能直接或间接参与细胞过程和环境信息处理等信号通路。4参考文献FARBERJM,PETERKINPI.Listeria monocytogenes,afood-bornepathogenJ.Microbiological Reviews,1991,55(3):47
49、6511.1COSSARTP.MolecularandcellularbasisoftheinfectionbyListeria monocytogenes:anoverviewJ.InternationalJournal of Medical Microbiology,2002,291(6/7):401409.2DISSONO,MOURAA,LECUITM.MakingsenseofthebiodiversityandvirulenceofListeria monocytogenesJ.Trendsin Microbiology,2021,29(9):811822.3MAURYMM,TSAI
50、YH,CHARLIERC,et al.UncoveringListeria monocytogeneshypervirulencebyharnessingitsbiodiversityJ.Nature Genetics,2016,48(3):308313.4YANXin,HUSen,YANGYan,et al.Thetwin-argininetranslocationsystemisimportantforstressresistanceandvirulenceofBrucella melitensisJ/OL.Infection and Immunity,2020,88(11):e00389