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基因工程之核酸操作的基本技术培训课件.pptx

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或pH时,就会引发双链之间氢键解离而变性。是离子型表面活性剂,它能够溶解细胞膜上脂质与蛋白,因而溶解膜蛋白而破坏细胞膜、解聚,基因工程之核酸操作的基本技术培训课件,第4页,细胞中核蛋白,还能与蛋白质结合成为,R,+,蛋白质复合物,使蛋白质变性而沉淀下来。不过能抑制核糖核酸酶作用,所以在以后提取过程中,必须把它去除洁净,预防它影响Raase活性。,基因工程之核酸操作的基本技术培训课件,第5页,()ac水溶液呈碱性,为了调整pH至4.8,必须加入大量冰醋酸。目标是把pH12.6抽提液调整至中性,使变性质粒能够复性,并能稳定存在。而高盐mol/LNaAc有利于变性大分子染色体、以及蛋白复合物凝聚而沉淀之。,基因工程之核酸操作的基本技术培训课件,第6页,()乙醇:溶液是以水合状态稳定存在,当加入乙醇时,乙醇会夺去周围水分子,失水而易于聚合。普通试验中,是加倍体积无水乙醇与相聚合,其乙醇最终含量占左右。,基因工程之核酸操作的基本技术培训课件,第7页,()缓冲液:在基因操作试验中,选择缓冲液主要标准是考虑稳定性及缓冲液成份不产生干扰作用。采取Tris-HCL缓冲系统,因为缓冲液是Tris H,+,/Tris,不存在金属离子干扰作用,故在提取或保留时,大都采取Tris-HCL系统,而缓冲液中更能稳定活性。,基因工程之核酸操作的基本技术培训课件,第8页,()酚氯仿:酚与氯仿是非极性分子,水是极性分子,当蛋白水溶液与酚或氯仿混合时,蛋白质分子之间水分子就被酚或氯仿挤去,使蛋白质失去水合状态而变性。经过离心,变性蛋白质密度比水密度大,因而与水相分离,沉淀在水相下面,从而与溶解在水相中分开。而酚与氯仿有机溶剂比重更大,保留在最下层。,基因工程之核酸操作的基本技术培训课件,第9页,()异戊醇:在抽提时,为了混合均匀,必须猛烈振荡容器数次,这时在混合液内易产生气泡,气泡会阻止分子相互间充分作用。加入异戊醇能降低分子表面张力,所以能降低抽提过程中泡沫产生。普通采取氯仿与异戊醇之比为:。也可采取酚、氯仿与异戊醇之比为:。同时异戊醇有利于分相,使离心后上层水相、中层变性蛋白相以及下层有机溶剂相维持稳定。,基因工程之核酸操作的基本技术培训课件,第10页,()饱和酚:因为酚与水有一定互溶,苯酚用水饱和目标是使其抽提过程中,不致吸收样品中含有水分,降低损失。用ris调整pH为是因为在此条件下比较稳定。,基因工程之核酸操作的基本技术培训课件,第11页,质粒DNA小规模提取碱裂解法,1)接种一单菌落于3ml含70l/ml AmpLB液体培养基中。200转/分37振荡培养过夜(约810h)。1rpm离心1min搜集细菌。,2)用STE重悬细菌沉淀,1rpm离心5min,弃上清。,3)将细菌沉淀重悬于100l冰预冷溶液I中,加入200l新配制溶液II,温和转动使之混匀,冰浴2min。,4)加入150l溶液III,将管倒置摇荡1min,冰浴5min。,基因工程之核酸操作的基本技术培训课件,第12页,质粒DNA提取溶液,:50mM葡萄糖,25mM Tris.Cl(pH8.0),10mM EDTA(pH8.0),高压灭菌,4保留。,质粒DNA提取溶液,:0.2M NaOH,1%SDS,现配现用。,质粒DNA提取溶液,:5M 乙酸钾溶液60ml,冰乙酸11.5ml,灭菌水28.5ml。,基因工程之核酸操作的基本技术培训课件,第13页,5)1rpm离心8min,小心取上清于离心管中。加等体积酚:氯仿抽提一次。,6)取上清液加入1/5体积5M乙酸胺,再加入2倍体积无水乙醇,1rpm离,心5min,弃上清,加入70乙醇沉淀。,7)离心弃上清,真空抽干,去除痕量乙醇。,8)加入50l TE并加入1l RNase放入37水浴1h。,9)0.7%琼脂糖电泳检测其含量。,基因工程之核酸操作的基本技术培训课件,第14页,3.1.2 碱抽提法抽提DNA过程中应注意问题,(1)染色体DNA、蛋白质与RNA是否去除洁净,是否取得一定得率质粒DNA。,(2)所用器皿必须严格清洗,各种试剂配制是否准确,有需高压高温灭菌。,(3)加乙醇沉淀DNA时,要把离心管加盖摇动4-5次,注意观察水相与乙醇之间 没有分层现象之后,才能够放入冰箱中沉淀DNA。,基因工程之核酸操作的基本技术培训课件,第15页,3.2 DNA提取其它方法,2.2.1 质粒DNA分离纯化,2.2.1.1微量提取质粒,小规模制备质粒特点是能够一次制备各种质粒,速度快、省时间、步骤简化、纯度好,能够用于酶切、连接,甚至多纯化几次还可作双链序列分析模板等常规基因工程操作之用。主要有以下方法:,有煮沸法、孔微量滴定板法、碱变性和和法、单链质粒小量制备法、不需要苯酚抽提质粒小量制备和用商品化试剂盒制备质粒等。,基因工程之核酸操作的基本技术培训课件,第16页,3.2.1 质粒大量制备,在制作酶谱、测定序列、制备探针等试验中需要高纯度、高浓度质粒,为此需要大量提取质粒。大量提取质粒普通需深入纯化,惯用柱层析法和氯化铯梯度离心法。抽提方法主要有:煮沸裂解法、裂解法、Triton裂解法和Wizard大量纯化系统等。,基因工程之核酸操作的基本技术培训课件,第17页,质粒DNA大量制备,1)接种含有目标片段单菌落于100ml液体LB培养基中,37培养过夜。4000rpm,,4离心10min,搜集菌体。,2)将细菌沉淀用20ml冰预冷STE溶液重悬,按上述方法重新离心,去上清,倒置,,用吸水纸吸干残留液,加入冰预冷溶液 2ml,将细菌沉淀重悬。,3)加200l新配制溶菌酶溶液(10mg/ml溶于10mM TrisCl,pH8.0),混匀。,4)加入4ml新配制溶液,迟缓颠倒数次,充分混匀内容物,于室温放置5-10min。,5)加2ml用冰预冷溶液,将离心管颠倒数次,冰浴15min。1rpm,4离心,20min。,基因工程之核酸操作的基本技术培训课件,第18页,6)将上清转移至另一离心管中,加0.6倍体积异丙醇,充分混匀,于室温放置10min。,10000rpm,室温离心15min,回收质粒沉淀。7)去除上清,用70%乙醇洗沉淀一次,稍抽干,溶于1ml TE中。,8)加入5l RNase A(5mg/ml),37消化1hr。,9)转移至小离心管,用等体积苯酚,苯酚氯仿,氯仿,各抽提一次。,10)加入1/5体积10M NH,4,AC,再加入2倍体积无水乙醇,混匀,室温放置30min。1rpm,室温离心10min。,11)弃上清,70%乙醇洗沉淀两次,真空抽干,溶于适量TE中,储存于-20。,基因工程之核酸操作的基本技术培训课件,第19页,3.2.2 质粒纯化,、聚乙二醇沉淀法纯化质粒,、氯化铯溴化乙锭梯度平衡离心法纯化闭环,、从质粒制品中去除,()经过mol/L NaCl进行离心,()经过Bio-Gel A-150m或Sepharose CL-4B进行层析,基因工程之核酸操作的基本技术培训课件,第20页,3.2.3 基因组或其它抽提,2.2.2.1细菌基因组制备,以微量制备法为例:,、ml细菌培养液生长至对数生长久。取1.5ml转入小离心管中离心min.,2、用567ul缓冲液重新悬浮沉淀,加入30ul 和 3ul20mg/ml 蛋白酶,混合。在下保温h。,、加入100ulmol/L NaCl,完全混合,再加入80ulCTAB-NaCl溶液,混合。在65 下保温10min。(CTAB,十六烷基三甲基溴化铵,),基因工程之核酸操作的基本技术培训课件,第21页,、加入等体积酚氯仿异戊醇,混合。离心min,将上清液转移至一新离心管中。,、按上述步骤重复抽提。将上清液转移至一新离心管中。,、加入0.6倍体积异丙醇,轻轻混合直至沉淀。用70%乙醇洗一下沉淀。离心min,弃去上清液后真空干燥。用100ul缓冲液重新悬浮。,基因工程之核酸操作的基本技术培训课件,第22页,3.2.4 哺乳动物细胞基因组抽提,哺乳动物基因组DNA通常先用SDS等裂解,再用苯酚抽提进行分离。用这类方法产生DNA长度(100-150kb)适合用于Southern分析和用,噬菌体构建基因组文库。,基因工程之核酸操作的基本技术培训课件,第23页,1、哺乳动物组织细胞DNA提取,组织样保留在70%乙醇中,20冻存。提取时组织样需研碎,乙醇挥发掉,提取方法同质粒提取法。,2、哺乳动物血液基因组DNA提取,(1)取750ul冻存血加入等量PBS,混合均匀,(2)1rpm离心5分钟,弃上清,(3)加入450ul DNA提取buffer,重悬沉淀,(4)加入Rnase至终浓度20ug/ml,37温育1小时,基因工程之核酸操作的基本技术培训课件,第24页,(5)加入蛋白酶K至终浓度100ug/ml,混匀,55水浴消化过夜,(6)加入等体积ris饱合酚,温和摇动10分钟,1rpm离心分钟,(7)将上层水相转移至另一洁净离心管,(8)再加入等体积酚:氯仿和氯仿,各抽提一次,(9)上层水相用1/5体积乙酸钠和倍体积无水乙醇沉淀,(10)1rpm离心10分钟,搜集沉淀,70乙醇洗沉淀,(11)真空抽干,用适量TE(pH8.0)溶解,基因工程之核酸操作的基本技术培训课件,第25页,2.2.5 从植物中分离基因组DNA,从植物中分离高产量和高质量DNA不是一件轻易事。因为细胞壁及植物特有细胞内物质,需要用较特殊处理方法。,1、用CTAB抽提植物DNA,(1)将组织放入离心管中,加入5倍体积抽提缓冲液,再加入一些洗过灭菌海沙于-20冷冻。,基因工程之核酸操作的基本技术培训课件,第26页,(2)用杵将组织压软,置组织于液氮中磨碎。,(3)短暂振荡,于65温浴5min。,(4)加1倍体积氯仿-异戊醇混合物,轻轻颠倒几次使之混匀。离心5min,将上层水相转移到另一管中。,(5)加1倍体积溴化乙锭液,1倍体积苯酚和1倍体积氯仿,轻轻混匀。离心取上清。溴化乙锭可帮助除去多糖。大多数植物组织可省去这一步。,基因工程之核酸操作的基本技术培训课件,第27页,(6)加1/10体积3mol/L醋酸钠和1倍体积异丙醇,于-20放置30min或过夜,沉淀DNA。,(7)以1r/min离心10min,倒掉上清。,(8)加0.5ml冷70%乙醇,重悬沉淀,离心2min。,(9)真空或37放置10min,干燥DNA。,(10)适量TE溶解DNA。,基因工程之核酸操作的基本技术培训课件,第28页,3.3 DNA定量和纯度测定,对于基因操作中载体DNA和外源目标DNA片段,必须对其浓度、纯度、构型、相对分子量大小等基本情况进行了解。有时DNA中含有酚类和多糖类物质会影响酶切和PCR效果,尤其DNA浓度是一个非常关键原因。,3.3.1 紫外光谱分析法,紫外光谱分析法原理基于DNA(RNA)分子在260nm处有特异紫外吸收峰且吸收强度与系统中DNA或RNA浓度成正比。该法特点是准确、简便,但所需仪器较昂贵。,基因工程之核酸操作的基本技术培训课件,第29页,因为测定OD,260,时,难以排除RNA、染色体DNA、以及解链增色效应原因,所以测得数据往往比实际浓度偏高。,衡量所提取DNA纯度可用OD,260,与 OD,280,比值。OD,260/,O D,280,对DNA而言其值大约为1.8,高于1.8则可能有RNA污染,低于1.8则有蛋白质污染。,在260 nm读数用于计算样品中核酸浓度,OD值为1相当于大约50ug/ml双链DNA、40ug/ml单链DNA或RNA以及大约20ug/ml单链寡核苷酸。,基因工程之核酸操作的基本技术培训课件,第30页,EB荧光分析法,EB(溴化乙锭),一个荧光染料,它能插入DNA或RNA碱基对平面之间而结合于其上。一旦EB结合在DNA分子上,它能在紫外光激发下产生桔黄色荧光。这种方法优点是简便易行、经济,而且与凝胶电泳相结合能够分析DNA样品是否完整等,缺点是准确性较低。,基因工程之核酸操作的基本技术培训课件,第31页,
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