家兔失血性休克及抢救.pptx

家兔失血性休克及其抢救病理生理学实验教学中心病理生理学实验教学中心杜舒婷杜舒婷前言本实验为高年级各专业本科生病理生理学的实验教学内容，其目的是掌握失血性休克动物模型的复制方法。观察失血性休克时机体的一般状态及呼吸、血压、心率、中心静脉压、尿量的变化，了解失血性休克的病理生理过程。了解失血性休克的抢救原则和抢救方法。失血性休克是临床上常见的急症，通过该实验使学生对失血性休克的临床表现有初步的感性认识，使学生掌握复制家兔失血性休克动物模型的实验技能及相关知识。通过实验加强对本科学生动手能力的培养，为今后的临床实践打下坚实的基础。实验目的实验目的1.掌握失血性休克动物模型的复制方法。2.观察失血性休克时机体的一般状态及呼吸、血压、心率、中心静脉压、尿量的变化，了解失血性休克的病理生理过程。3.了解失血性休克的抢救原则和抢救方法。实验原理实验原理失血性休克是临床上常见的急症，由于血容量减少，机体有效循环血量降低，从而使机体重要脏器血液灌流减少，而微血管的持续收缩与痉挛又加重了器官的缺血，使器官功能进一步障碍。本实验采用颈总动脉放血方法，造成机体有效循环血量减少，复制失血性休克。通过实验进一步了解失血性休克时心、肺、肾等器官的功能障碍，加深对失血性休克的认识。由于微循环障碍是失血性休克的基础，治疗的主要措施就是改善微循环灌流，因此，实验中采用回输血液及输入生理盐水方法来改善微循环灌流状态，对失血性休克进行抢救。实验动物实验动物器械与药品器械与药品常规手术器械，气管插管，动脉套管，动脉夹，婴儿秤，兔固定台，5ml、20ml、50ml注射器，输液装置，水检压计，二道生理记录仪，导尿管，压力换能器，压力定标装置，滤纸，烧杯，丝线，粗棉线。20%乌拉坦，1%肝素，3.8%枸橼酸钠，生理盐水。方法与步骤方法与步骤1.家兔称重后，自耳缘静脉注射20%乌拉坦（5ml/kg.bw）进行全身麻醉，然后将家兔仰卧位固定于兔台上。2.剪去颈部兔毛，沿甲状软骨下缘正中做长6cm纵切口，用止血钳钝性分离气管、左侧颈总动脉及右侧颈浅静脉，在气管上做倒“T”字形切口，插入气管插管，用粗棉线结扎固定，然后与换能器和记录仪相连，描记呼吸曲线。3.自耳缘静脉输入1%肝素1ml/kg.bw抗凝后，用丝线结扎颈总动脉远心端，动脉夹夹闭近心端，插入充满枸橼酸钠的动脉套管结扎固定，将套管一端连于压力换能器，经记录仪记录血压，另一端备放血用。4.输液装置内加入生理盐水200ml，排净输液管道及水检压计内的气泡，结扎颈浅静脉远心端，插入与输液装置及水检压计相连的静脉插管，检查通畅后以1015滴/分速度缓慢输入生理盐水，以确保管道通畅。5.在耻骨联合上做腹部正中切口长约5cm，找出膀胱，排空尿液后，将膀胱从腹腔拉出，在背面膀胱三角区找出输尿管入口，分离双侧输尿管，插入细导尿管，记录每分钟尿液的滴数。6.打开二道生理记录仪，用压力定标装置对血压进行定标，稳定5分钟后，观察放血前动物的一般状态及血压、呼吸、中心静脉压、尿量的变化。7.打开颈总动脉套管的放血端，并与50ml注射器相连，使血液自颈总动脉流入注射器内，一直放血至血压40mmHg 时，调节注射器内放出的血量，使血压稳定在此水平（图7-4-1）图7-4-1 兔出血性休克示意图8.维持血压40mmHg 20分钟，观察注射器内血量的变化，记录失血期的各项生理指标（同步骤6）。9.停止放血，倒掉输液瓶中剩余的生理盐水，将注射器内的血液加入到输液瓶中，快速从静脉输回放出的血液和生理盐水，进行抢救，输血输液总量为3倍失血量，速度为80-100滴/min。10.输完血液及生理盐水后，观察动物一般状态及各项生理指标，评价抢救效果。11.若实验中实验小组较多，输液治疗组还可分为：与失血量等量的生理盐水失血全血去甲肾上腺素（0.75mg/kg.bw），2倍失血量生理盐水失血全血654-2（1mg/kg.bw）。注意事项注意事项1.本实验手术较多，要减少手术性出血。对部分项目（如输尿管插管），手术可少做或不做，以确保实验的成功。2.各导管和注射器要肝素化并注意导管畅通，随时缓慢推注，以防凝血。3.插动脉插管前必须先向动物体内注射肝素，否则会造成插管内凝血，影响实验。4.插静脉插管时要小心，防止插管穿破静脉壁进入胸腔或其他软组织。5.若做输尿管插管，输尿管插入后切忌扭曲和折叠，正常情况下，导管插入即有尿液滴出；如果导管通畅但无尿液滴出，可少量快速输液。复习讨论题复习讨论题1.为什么在抢救失血性休克时其输液总量要明显多于失血量？2.在放血后维持血压时，为什么血压会出现明显波动？3.在失血性休克抢救中有部分动物死亡或抢救效果较差，为什么？4.本实验中各管道内最易发生凝血，当出现以上情况后应如何处理？