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流式细胞术步骤.doc

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利用流式细胞仪检测细胞周期和凋亡 1. 细胞按每孔4×105 个的密度接种于60 mm细胞培养皿内,培养过夜后,用相应药物处理细胞。 (设置实验组和对照组,实验组依辛伐他汀浓度分为3组,2μmol/L、5μmol/L、10μmol/L辛伐他汀组 正常对照组(NC组):胰岛素终浓度0.058mg/L A组:辛伐他汀终浓度2μmol/L+胰岛素终浓度 0.058mg/L; B组:辛伐他汀终浓度5μmol/L+胰岛素终浓度0.058mg/L; C组:辛伐他汀终浓度10μmol/L+胰岛素终浓度0.058mg/L; 于37℃,5%CO2培养箱中孵育48h) 2. 胰酶消化收集细胞,并用1 mL PBS缓冲液清洗剩余细胞一次,全部加入15ML管中。 3. 800 rpm离心5分钟,去除上清,加5 mL PBS缓冲液重悬细胞,再次离心弃上清,重复两次,最后重悬细胞于0.5mL PBS中。 4. 用低速振荡器边震动边加入5 mL预冷的70%乙醇,固定,4℃过夜。 5. 次日将固定好的细胞以1000 rpm的转速离心5分钟,弃上清,加入4 mL PBS清洗一次,用0.4 mL PBS重悬细胞。 6. 加入5 μL RNaseA(10 mg/ml)37℃消化1小时,加入终浓度50 mg/mL碘化丙啶(propidium iodide PI)4℃避光染色过夜(或者37℃避光染色1小时),在EPICS XL流式细胞仪上分析。 利用流式细胞抗体检测检测细胞膜表面蛋白的变化 1. 细胞按每孔4×105 个的密度接种于60 mm细胞培养皿内,培养过夜后,用相应药物处理细胞。 2.胰酶消化收集细胞,并用1 mL PBS缓冲液清洗剩余细胞一次,全部加入15ML管中。 3 . 800 rpm离心5分钟,去除上清,加5 mL PBS缓冲液重悬细胞,再次离心弃上清,重复两次,最后重悬细胞于0.1mL PBS中,并转移到1.5 mL离心管中。 4. 按照1:100加入1UL一抗(如下图对应),置于垂直混合液上室温孵育1-2小时。 5. 1500rpm,小型离心机离心5分钟,去除上清,加1 mL PBS缓冲液重悬细胞,再次离心弃上清,重复3次,最后将洗好的细胞重悬于0.1mL PBS中。 6.分别将荧光二抗DyLight 488、DyLight 567按照1:100比例加入细胞悬液中,室温孵育1小时。 7. 1500rpm离心5分钟,去除上清,加1 mL PBS缓冲液重悬细胞,再次离心弃上清,重复3次,最后重悬细胞于0.2mL PBS中。 8. 用锡箔纸包住避光,将细胞加入流式管中,在EPICS XL流式细胞仪上分析。 IR检测 类型细胞 NC组 NC组 NC组 A组 B组 C组 一抗 无 IgG1 IR IR IR IR 二抗 无 DyLight 488 DyLight 488 DyLight 488 DyLight 488 DyLight 488 目的 空白对照 同型对照 实验组对照 实验组1 实验组2 实验组3 GLUT4检测 类型细胞 NC组 NC组 NC组 A组 B组 C组 一抗 无 IgG2a GLUT4 GLUT4 GLUT4 GLUT4 二抗 无 DyLight 567 DyLight 567 DyLight 567 DyLight 567 DyLight 567 目的 空白对照 同型对照 实验组对照 实验组1 实验组2 实验组3 (因为IR 和GLUT4同样为鼠源抗体,并且分开进行检测,二抗颜色可进行调试。尽可能选择效果好的同一种二抗。可能使用一绿一红,也可能使用两个同样颜色的二抗)
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