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单击此处编辑母版标题样式,单击此处编辑母版文本样式,第二级,第三级,第四级,第五级,*,微丝染色及形态观察,目的要求,1,.,掌握微丝的染色方法。,2.,了解光镜下微丝的基本形态结构。,实验原理,真核细胞质中纵横交错的纤维网称为,细胞骨架,(,cell skeleton,),,在维持细胞形状和运动方面具有重要作用。根据组成成分和组装结构的不同,可将细胞骨架分为,微管,(microtubule,MT),、,微丝,(microfilament,MF),和,中间纤维,(intermediate filament,IF),。微丝普遍存在于多种细胞,对细胞的形状和运动有一定作用。,当细胞用,TritonX-100,溶液处理,能够溶解质膜结构中及细胞内许多蛋白质,而细胞骨架中的蛋白质却不被破坏,经固定和考马斯亮蓝(非特异性蛋白质染料)染色后,胞质背景着色弱,微管等蛋白结构在光镜下无法分辨,在光镜下观察到主要是由微丝组成的应力纤维。,应力纤维由平行排列的微丝组成,体外培养的贴壁细胞应力纤维尤为发达,形态长而直,常与细胞长轴平行并贯穿细胞全长。,微丝在细胞内的分布特征,实验用品,器具:,CO,2,恒温培养箱、倒置显微镜、超净工作台、低速离心机、普通光学显微镜、移液器、恒温箱、镊子、培养皿、载玻片、盖玻片、吸水纸。,材料:,盖玻片培养的成纤维细胞,试剂:,6,mmol,/L PBS,(,pH 6.5,)、,1,TritonX-100,溶液、,M-,缓冲液、,3,戊二醛固定液、,0.2,考马斯亮蓝染液、,DMEM,培养液。,实验步骤,1.,培养 在成纤维细胞进行传代培养时,将已消毒的盖玻片涂上多聚赖氨酸,放入培养皿中,于,37,、,5%CO,2,的温箱中生长,24h,48h,。,2.,染色处理,(,1,)取材 取出铺有细胞的盖玻片,放入小培养皿中(正面向上),用,PBS,洗,3,次(从盖玻片一角轻轻滴加,3,4,滴),洗去表面的培养液。,(,2,)抽提 吸弃,PBS,,加入,1%,Triton X-100,液,4-5,滴(刚好覆盖盖玻片表面),室温处理,15min,(,3,)稳定 吸弃,Triton X-100,,立即用,M-,缓冲液轻轻地洗涤,3,次。,(,4,)固定 略晾干,在,3%,戊二醛液,中固定,10min,,再以,PBS,液洗,3,次,洗去固定液。,(,5,)染色 滴加,3-5,滴,0.2%,考马斯亮兰,染液染色,10 min,,然后小心的用自来水漂洗。,(,6,)观察 留取少量水分封片于载玻片,吸水,纸吸去多余的水。光镜下观察临时装片。,实验结果,光镜观察,微丝聚集成的应力纤维束被染成蓝色,成纤维细胞多数有突起,微丝沿突起规则排列。,光学显微镜下微丝分布图,注意事项,1.,洗片时要轻柔,以免把细胞从载玻片上洗去。,2,操作中应注意区分细胞盖玻片的正反面。,3,染色后应冲洗盖玻片背面,避免损伤细胞。,4,TritonX-100,抽提蛋白时,注意避免抽提时间过长而导致细胞结构的破坏。,作业与思考题,1.TritonX-100,液、,M-,缓冲液、戊二醛及考马斯亮蓝在本实验中所起作用?,2,微丝作图,.,
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