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人血清白蛋白的提取纯化和分子量测定专家讲座.pptx

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principles,02,.,血清白蛋白初步分离,在半饱和硫酸铵溶液中,血清白蛋白不沉淀,球蛋白沉淀,离心后白蛋白主要在上清液中。因为血清白蛋白相对分子质量较硫酸铵大得多,故盐析初步分离白蛋白可用透析法或凝胶层析法除去硫酸铵。,奈氏试剂是络盐,K2HgI4,加,KOH,溶液,在无机化学定性分析中,用其检验氨或铵盐,人血清白蛋白的提取纯化和分子量测定专家讲座,第3页,血清白蛋白,血清白蛋白,约占血浆蛋白总量,60%,,水溶性很强,结构稳定,能结合各种小分子,如脂肪酸,胆红素,血红素等,起维持血液正常渗透压作用。另外白蛋白还有解毒、参加脂类代谢及血浆中微溶物质运输、维持血液酸碱平衡等作用,在医学临床及生物领域应用广泛。能够依据不一样蛋白质相对分子质量、溶解度以及在一定条件下带电情况不一样来分离及提纯各种蛋白质。,盐析,广泛使用分离蛋白质方法,所谓盐析就是用大量中性盐使蛋白质从溶液中析出过程。在高浓度中性盐影响下,蛋白质分子水化膜被剥夺及所带电荷被中和,因而破坏了蛋白质溶胶稳定原因,使蛋白质沉淀析出。但中性盐并不会使蛋白质变性,所以,若除去中性盐或减低盐浓度,蛋白质就能够重新溶解。,人血清白蛋白的提取纯化和分子量测定专家讲座,第4页,.,血清白蛋白纯化:,DEAE,纤维素阴离子交换剂,离子交换层析是一个用离子交换树脂作支持剂层析方法。,本试验采取是,DEAE,纤维素阴离子交换剂(中强碱型),可电离基团是二乙基氨基乙基,适合用于大分子分离。在离子交换层析中,蛋白质对离子交换剂结协力取决于彼此之间相反电荷基团静电吸引,而这又和溶液,pH,与盐离子浓度相关。所以,蛋白质混合物分离能够由改变溶液中盐离子浓度和,pH,来完成,对离子交换剂结协力最小蛋白质首先从层析柱中洗脱出来。除硫酸铵后白蛋白溶液在,0.02mol/L pH7.4,醋酸铵缓冲液条件下,加到二乙氨乙基(,DEAE,)一纤维素层析柱上,在此,pH,时,,DEAE,一纤维素带有正电荷,它能吸附带负电荷白蛋白、,及,球蛋白(血清白蛋白等电点为,4.5,,绝大多数,,及,球蛋白等电点均小于,6,)。伴随盐离子浓度提升,离子交换柱上,球蛋白、,球蛋白、白蛋白依次被洗脱下来。,人血清白蛋白的提取纯化和分子量测定专家讲座,第5页,.,血清白蛋白相对分子量测定:,SDS,PAGE,法,SDS,PAGE,是最惯用定性分析蛋白质电泳方法,尤其是用于蛋白质纯度检测和测定蛋白质分子量。电泳迁移率与颗粒电荷、形状、大小(分子量)相关,如电荷、形状都一样,则电泳迁移率只与分子量相关。,SDS,作用:,1.,能断裂分子内和分子间氢键,破坏蛋白质二级和三级结构,强还原剂(巯基乙醇)能使二硫键断裂,使蛋白质完全变性;,2.,能与变性蛋白质按百分比结合,形成,SDS-,蛋白质复合物。,SDS-,蛋白质复合物特点:,1.,因为结合大量,SDS,,使蛋白质丧失了原有电荷状态,从而降低或消除了各种蛋白质分子之间天然电荷差异;,2.,复合物都是椭圆棒状,从而降低或消除了各种蛋白质分子之间天然形状差异。,所以在进行电泳时,蛋白质分子迁移速度取决于分子量大小。,人血清白蛋白的提取纯化和分子量测定专家讲座,第6页,.,血清白蛋白相对分子量测定:,SDS,PAGE,法,在一定范围内,蛋白质迁移率和分子量对数呈线性关系,符合下式:,logMW=K-bx,(,MW,为分子量,,X,为迁移率,,k,、,b,均为常数),若将已知分子量标准蛋白质迁移率对分子量对数作图,可取得一条标准曲线,未知蛋白质在相同条件下进行电泳,依据它电泳迁移率即可在标准曲线上求得分子量。,该法测定蛋白质分子量不足,:,1.,蛋白质是由亚基(如血红蛋白)或两条以上肽链(如胰凝乳蛋白酶)组成,测定时只是它们亚基或单条肽链,MW,。,2.,电荷异常蛋白质(如组蛋白,带大量正电荷)。,3.,结构异常,不于分子量呈线性关系(如胶原蛋白)。,4.,带有较大辅基蛋白质(如糖蛋白)。,人血清白蛋白的提取纯化和分子量测定专家讲座,第7页,试验步骤,03,The experimental steps,血清白蛋白初步分离,血清白蛋白纯化,血清白蛋白相对分子量测定,人血清白蛋白的提取纯化和分子量测定专家讲座,第8页,血清白蛋白初步分离,1.,取样,取,2ml,血液,,4,,,3000rpm,离心,15min,,移取上清液(血清),1ml,至,10ml,离心管。,2.,盐析,量取,9ml50%,饱和硫酸铵溶液,以移液管逐滴加入,同时不停振荡,,4,静置,2h,。,4,,,3000rpm,离心,15min,,搜集上清液。,用,5%,柠檬酸缓冲液调整,pH,至,4.5,(即白蛋白等电点),用量筒确定上清液体积,确定上清液体积,计算加入饱和硫酸铵(,pH,4.5,)体积(,0.11V,)。,逐滴加入饱和硫酸铵(,pH,4.5,),边加边振荡,,4,静置,2 h,。,4,,,3,000 rpm,离心,20 min,,弃上清,沉淀用,0.5 ml pH 7.4,柠檬酸,-Na2HPO4,缓冲液溶解。,人血清白蛋白的提取纯化和分子量测定专家讲座,第9页,血清白蛋白初步分离,3.,透析,将剩下,0.4 ml,蛋白质溶液将透析袋中,放入,pH 7.4,柠檬酸,-Na2HPO4,缓冲液中,搅拌透析过夜至蛋白质溶液中无,NH4,存在。,NH4,检测(奈氏试剂检测):取,1 ml,透析液,加入,5,滴奈氏试剂,混匀,观察,假如出现砖红色沉淀,说明仍有,NH4,存在,需继续透析。,人血清白蛋白的提取纯化和分子量测定专家讲座,第10页,血清白蛋白纯化,离子交换层析,装柱:将层析柱固定,保持垂直位。将浸胀,DEAE-,纤维素装入柱内,至,8-10cm,高度,平衡过夜(装柱时应注意均匀,凝胶内不得有气泡,凝胶床要平整)。,准备,50-100,支试管,置于自动搜集器上;洗脱液经核酸蛋白检测仪监视,调整流速为,1mL/min,,蛋白质检测器调零。,上样:将透析袋剪开,用移液管转至凝胶面上,待样品进入凝胶后再加入少许缓冲液,使样品完全进入胶内。,洗脱:采取连续梯度洗脱。接上恒流泵,用,0.02,1.0mol,L,醋酸醋酸铵缓冲液(,pH7.4,)进行梯度洗脱,搜集;统计出现峰值管号;保留样品。,人血清白蛋白的提取纯化和分子量测定专家讲座,第11页,a.,分离胶制备,在一个洁净小烧杯中,按所列试剂用量配制。,SDS-,不连续系统,12,分离胶浓度,,5ml,体积配制量:,编号,溶液名称,12%,分离胶,1,30%Acr 0.8%Bis,2.0ml,2,pH 8.9 Tris-HCI,1.25ml,3,10%SDS,100ul,4,TEMED,2.5ul,5,10%AP,50ul,6,H2O,1.65ml,总体积,约,5 mL,血清白蛋白相对分子量测定,人血清白蛋白的提取纯化和分子量测定专家讲座,第12页,b.,浓缩胶制备,在另一个洁净小烧杯中。,4.5,分离胶浓度,,2.5 ml,体积配制用量表:,编号,溶液名称,4%,浓缩胶,1,30%Acr 0.8%Bis,0.33ml,2,pH 6.7 Tris-HCI,0.63ml,3,10%SDS,25ul,4,TEMED,2.5ul,5,10%AP,12.5ul,6,H2O,1.5ml,总体积,约,2.5 mL,血清白蛋白相对分子量测定,人血清白蛋白的提取纯化和分子量测定专家讲座,第13页,血清白蛋白相对分子量测定,c.,样品处理:,向标准蛋白质或待测样品中按百分比加入上样缓冲液(,Loading dye,),充分溶解后,加盖(不要密闭),置沸水浴,3 min,,取出冷至室温。,加样示意图:,样品,2,样品,2,标准蛋白样品,1,(,Marker,),样品,2,样品,2,以微量注射器或移液枪加入,10-20ul,至样品槽内。,人血清白蛋白的提取纯化和分子量测定专家讲座,第14页,d.,电泳:点样端负极,恒压:开始,80V,,待样品进入分离胶后改为,100V,进行电泳,待蓝色染料迁移至下端约,1cm,时,停顿电泳,约需,1,2,小时。(电极缓冲液:,pH 8.3 Tris,Gly,),e.,染色:剥胶后加入考马斯亮兰,R-250,,染色,20min,。,f.,脱色:染色完成,倾出染色液,加入脱色液。,20,30min,换一次脱色液,,2,3,次后可初步观察电泳条带,然后脱色过夜,直至背景清楚。,血清白蛋白相对分子量测定,人血清白蛋白的提取纯化和分子量测定专家讲座,第15页,g.,计算,通常以相对迁移率,(mr),来表示迁移率。相对迁移率计算方法以下:用直尺分别量出样品区带中心及染料与凝胶顶端距离,按下式计算:,相对迁移率,(mr)=,样品迁移距离,(cm),染料迁移距离,(cm),。,以标准蛋白质相对分子质量对数对相对迁移率作图,得到标准曲线。依据待测样品相对迁移率,从标准曲线上查出其相对分子质量,血清白蛋白相对分子量测定,人血清白蛋白的提取纯化和分子量测定专家讲座,第16页,预计试验结果,The expected experimental results,04,确定电泳取样试管编号,人血清白蛋白的提取纯化和分子量测定专家讲座,第17页,标准蛋白质相对分子质量(,kda,),染料迁移距离(,cm,),样品迁移距离(,cm,),相对迁移率(,mr,),标准蛋白质相对分子质量对数(,kda,),能够依据标准蛋白相对分子质量对数及相对迁移率做出标准曲线,以相对迁移率为横轴,以标准蛋白相对分子质量对数为纵轴,预测应为一条直线。,人血清白蛋白的提取纯化和分子量测定专家讲座,第18页,标准蛋白相对分子质量对数及相对迁移率做出标准曲线,电泳预期效果,人血清白蛋白的提取纯化和分子量测定专家讲座,第19页,可能结果偏差及解释,Possible result bias and interpretation,0,5,测得人血清白蛋白分子量偏大,测得人血清白蛋白分子量偏小,人血清白蛋白的提取纯化和分子量测定专家讲座,第20页,蛋白质磷酸化,凝胶浓度不适当,蛋白质跑不动,表示蛋白质提前终止了或者降解,SDS,变性目标蛋白质不完全,使得蛋白质空间结构没有成为线型,组成了空间位阻,离子交换柱分离效果不好,杂质造成电泳条带过宽,影响结果分析,为何结果会偏大?,人血清白蛋白的提取纯化和分子量测定专家讲座,第21页,人血清白蛋白是由,3,个结构相同,-,螺旋结构域组成,它们在,SDS,等作用下,可能解离成亚基或单条肽链。所以,,SDS-,凝胶电泳测定不是完整分子分子量。,试验过程中对白蛋白造成了机械损伤,使单链多肽链断裂。需经过电泳是否产生拖带等现象判断。,为何结果会偏小?,人血清白蛋白的提取纯化和分子量测定专家讲座,第22页,试验重点与难点剖析,The key points and difficult points,0,6,对盐析、离子交换层析及,SDS-PAGE,法了解;,实际操作中对试验条件(,pH,、时间、加样量等)控制;,后期对数据处理与对试验结果分析,人血清白蛋白的提取纯化和分子量测定专家讲座,第23页,可能出现问题!,1,、层析过快,接取样品纯度不够高;,2,、上样量要适当,不要超出柱负荷能力。柱负荷能力可用交换容量来推算,通常上样量为交换剂交换总量,1%-5%,;,3,、洗脱液体积不足,造成分离各峰太过拥挤。,1,、制胶不理想:浓缩胶长度不够,可能造成条带过粗,分离胶浓度过大会有拖尾现象;,2,、两板之间有气泡:条带两边向下,中间鼓起;,3,、电极不平衡:条带偏斜;,4,、加样过多:条带两边扩散。,盐析过程中温度和,pH,控制不妥,可能使得所得目标产物白蛋白量较少,影响后续测定。,离子交换层析,SDS-PAGE,法,盐析,人血清白蛋白的提取纯化和分子量测定专家讲座,第24页,THANKS,!,人血清白蛋白的提取纯化和分子量测定专家讲座,第25页,
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