淡水生物资源调查技术规范.doc

DB43/T 432-2009

淡水生物资源调查技术规范

1　范围
本标准规定了浮游植物和浮游动物采样、样品保存、定性及定量分析方法，着生生物的定性调查方法，底栖动物采样、样品保存和生物量计算方法，大型水生植物调查方法等。
本标准适用于湖南省水库、江河、湖泊等水体水生生物资源调查。
2　规范性引用文件
下列文件中的条款通过本标准的引用而成为本标准的条款。凡是注日期的引用文件，其随后所有的修改单（不包括勘误的内容）或修订版均不适用于本标准，然而，鼓励根据本标准达成协议的各方研究是否可使用这些文件的最新版本。凡是不注日期的引用文件，其最新版本适用于本标准。
SC/T 9102　渔业生态环境检测规范　第三部分：淡水部分
SL 88　叶绿素的测定　分光光度法
SL 167　水库渔业资源调查
3　淡水生物资源调查主要内容
淡水生物资源调查主要内容见表1。
表 1　淡水生物资源调查主要内容
调 查 项 目
调 查 主 要 内 容
必 做
选 做
水体形态与自然环境调查
地理位置及环境特征；水体大小及形态特征；集雨区、淹没区和消落区概况；环境污染状况；气候气象和水文条件
工程概况；

水的理化性质调查
水温；透明度；pH值
其他常规水质指标
浮游生物调查
种类组成；数量；生物量
—
浮游植物初级生产力的测定
初级生产力
—
底栖动物调查
种类组成；数量；生物量
—
着生生物调查
—
种类组成；数量；
大型水生植物调查
种类组成；生物量
—
4　水体形态与自然环境调查
水体形态与自然环境调查的主要内容见附录A的表A.1、A.2、A.3、A.4。表中各项目的资料、数据，可从所属管理单位和当地水产、水利、农业、林业、气象、水文、环保等部门获取，也可通过调查访谈或独立观测方式获取。
4.1　气候
需了解年、季节气候特征，年最高气温、最低气温、平均气温和气温年变化，年（月）均风速、主导风向，年（月）均降水量、年均相对湿度，年均日照时数、无霜期、冰封期等。
4.2　水体
需调查水体形状，总面积、最大面积、最小面积、正常水面，水体长度、宽度、深度，正常水位、最高水位、最低水位，水体交换量，湖（库）湾数量及主要湖（库）湾的面积和水深，底质类型及特性。湖泊还需调查容积、湖岸线长度、湖底倾斜度，含盐量等；水库需调查总库容、兴利库容、死库容，枯水期、丰水期，入库径流，各径流流量；河流需调查源头、终点，流经地区，流速和流量，含沙量，各支流名称及特征等。
4.3　水体污染源
主要调查水体沿岸工业污染源分布情况，农业（农田）污染源分布情况，人口分布与生活污水排放情况，矿山污染情况等。
4.4　周围环境
需调查水体周围或集雨区的面积、地貌、土壤类型及特性；植被类型及覆盖率；水土流失情况；矿产资源的种类、分布、储量和开采情况；自然保护区面积和保护状况；风景名胜区级别、旅游情况。
5　水的理化测定项目及方法
按SC/T 9102 淡水部分的规定进行。
6　浮游生物调查
6.1　试剂与器具
主要试剂见附录B，器具见附录C的C.1、C.2。
6.2　采样
6.2.1　采样点布设
6.2.1.1　原则
根据水体面积、形态、浮游植物的生态分布特点和调查的目的等决定采样点数量。采样点应有代表性，能反映整个水体浮游生物的基本情况。
采样点设置数量见表2。采样结果记入附录A的表A.5。
表2　采样点设置数量
水体面积（km2）
＜2
2～5
5～20
20～50
50～100
100～500
＞500
采样点数（个）
3
3～5
5～7
7～10
10～15
15～20
20～30
6.2.1.2　湖泊、水库
湖泊应兼顾在近岸和中部设点，可根据湖泊形状在湖心区、大的湖湾中心区、进水口和出水口附近、沿岸浅水区（有水草区和无水草区）分散选设；水库应在库心区（河道型水库应分别在上游、中游、下游的中心区）及大的库湾中心区、主要进水口、出水口附近、主要排污口、入库江河汇合处设点。
6.2.1.3　江河
在干流上游、中游、下游，主要支流汇合口上游、汇合后与干流充分混合处，主要排污口附近、河口区等河段设置采样断面。根据江河宽设置断面采样点，一般小于50m的只在中心区设点；50m～100m的可在两岸有明显水流处设点；超过100m的应在左、中、右分别设置采样点。
6.2.2　采样层次
6.2.2.1　浮游植物采样
水深小于3m时，只在中层采样；水深3m～6m时，在表层、底层采样，其中表层水在离水面0.5m处，底层水在离泥面0.5m处；水深6m～10m时，在表层、中层、底层采样；水深大于10m时，在表层、5m、10m水深层采样，10m以下处除特殊需要外一般不采样。
6.2.2.2　浮游动物采样
由水体的深度决定，每隔0.5m、1m或2m取一个水样加以混合，然后取一部分作为浮游动物定量之用。
6.2.3　采样频次和采样时间
采集次数依研究目的而定，采样次数可逐月或按季节进行，一般按季节进行。样品瓶必须贴上标签，标明采集时间、地点。
采样时间尽量保持一致，一般在上午8：00～10：00进行。
6.2.4　采样方法
6.2.4.1　浮游植物采样
定量样品在定性采样之前用采水器采集，每个采样点取水样1L，贫营养型水体应酌情增加采水量。泥沙多时需先在容器内沉淀后再取样。分层采样时，取各层水样等量混匀后取水样1L。大型浮游植物定性样品用25号浮游生物网在表层缓慢拖曳采集，注意网口与水面垂直，网口上端不要露出水面。
6.2.4.2　浮游动物采样
原生动物、轮虫和无节幼体定量可用浮游植物定量样品，如单独采集取水样量以1L为宜；定性样品采集方法同浮游植物。
枝角类和桡足类定量样品应在定性采样之前用采水器采集，每个采样点采水样10L～50L，再用25号浮游生物网过滤浓缩，过滤物放入标本瓶中，并用滤出水洗过滤网3次，所得过滤物也放入上述瓶中；定性样品用13号浮游生物网在表层缓慢拖曳采集。注意过滤网和定性样品采集网要分开使用。
6.3　样品的固定
浮游植物样品立即用鲁哥氏液固定，用量为水样体积的1％～1.5％。如样品需较长时间保存，则需加入37%～40％甲醛溶液，用量为水样体积的4％。
原生动物和轮虫定性样品，除留一瓶供活体观察不固定外，固定方法同浮游植物。枝角类和桡足类定量、定性样品应立即用37%～40％甲醛溶液固定，用量为水样体积的5％。
6.4　水样的沉淀和浓缩
固定后的浮游植物水样摇匀倒入固定在架子上的1L沉淀器中，2h后将沉淀器轻轻旋转，使沉淀器壁上尽量少附着浮游植物，再静置24h。充分沉淀后，用虹吸管慢慢吸去上清液。虹吸时管口要始终低于水面，流速、流量不能太大，沉淀和虹吸过程不可摇动，如搅动了底部应重新沉淀。吸至澄清液的1/3时，应逐渐减缓流速，至留下含沉淀物的水样20mL～25（或30～40）mL，放入30（或50）mL的定量样品瓶中。用吸出的少量上清液冲洗沉淀器2次～3次，一并放入样品瓶中，定容到30（或50）mL。如样品的水量超过30（或50）mL，可静置24 h后，或到计数前再吸去超过定容刻度的余水量。浓缩后的水量多少要视浮游植物浓度大小而定，正常情况下可用透明度作参考,依透明度确定水样浓缩体积见表3，浓缩标准以每个视野里有十几个藻类为宜。
表3　依透明度确定水样浓缩体积
透明度（cm）
1L 水样浓缩后的水量（mL）
＞100
30～50
50～100
100～50
30～50
500～100
20～30
1000（不浓缩）
＜20
＞1000（稀释）

原生动物和轮虫的计数可与浮游植物计数合用一个样品；枝角类和桡足类通常用过滤法浓缩水样。
6.5　种类鉴定
优势种类应鉴定到种，其它种类至少鉴定到属。种类鉴定除用定性样品进行观察外，微型浮游植物需吸取定量样品进行观察，但要在定量观察后进行。
6.6　计数
6.6.1　浮游植物计数
6.6.1.1　计数框行格法
计数前需先核准浓缩沉淀后定量瓶中水样的实际体积，可加纯水使其成30mL、50mL、100mL等整量。然后将定量样品充分摇匀，迅速吸出0.1mL置于0.1mL计数框内（面积20mm×20mm）。盖上盖玻片后，在高倍镜下选择3行～5行逐行计数，数量少时可全片计数。
1L水样中的浮游植物个数（密度）可用下列公式计算：
　　　　　　　　　　　　　　　………………………………………………（1）
式中:
N——1L水样中浮游生物的数量，个/L；
N0——计数框总格数；
N1——计数过的方格数；
V1——1L水样经浓缩后的体积，mL；
V0——计数框容积，mL；
Pn——计数的浮游植物个数。
6.6.1.2　目镜视野法
首先应用台微尺测量所用显微镜在一定放大倍数下的视野直径，计算出面积。计数的视野应均匀分布在计数框内，每片计数视野数可按浮游植物的多少而酌情增减，一般为50个～300个，依浮游植物数确定计算视野数见表4。
表4　依浮游植物数确定计算视野数
浮游植物平均数（个/视野）
视野数（个）
1～2
300
2～5
200
5～10
100
＞10
50
1L水样中浮游植物的个数（密度）可用下列公式计算：
　　　　　　　　　　　　　　………………………………………………（2）
式中：
N——1L水样中浮游生物的数量，个/L；
Cs——计算框面积，mm2
Fs——视野面积，mm2
Fn——每片计数过的视野数；
V——1L水样经浓缩后的体积，mL；
V0——计数框容积，mL；
Pn——计数的浮游植物个数。
6.6.2　浮游动物计数
6.6.2.1　原生动物：吸出0.1mL样品，置于0.1mL计数框内，盖上盖玻片，在10×20倍显微镜下全片计数。每瓶样品计数两片，取其平均值。
6.6.2.2　轮虫：吸出1mL样品，置于1mL计数框内，在10×10倍显微镜下全片计数。每瓶样品计数两片，取其平均值。
6.6.2.3　枝角类、桡足类：用5mL计数框将样品分若干次全部计数。如样品中个体数量太多，可将样品稀释50mL或100mL，每瓶样品计数两片，取其平均值。
6.6.2.4　无节幼体：如样品中个体数量不多，则和枝角类、桡足类一样全部计数；如数量很多，可把过滤样品稀释，充分摇匀后取其中部分计数，计数3片～5片取其平均值。也可在轮虫样品中同轮虫一起计数。
6.6.2.5　计数前，充分摇匀样品，吸出迅速、准确。盖上盖玻片后，计数框内无气泡，无水样溢出。
6.6.2.6　单位体积浮游动物的数量按下式计算
　　　　　　　　　　　　　　…………………………………………………………（3）
式中:
N——1L水样中浮游动物的数量，个/L；
V——采样的体积，L；
Vs——样品浓缩后的体积，mL；
Va——计数样品体积，mL；
n——计数所获得的个体数，个。
6.6.3　注意事项
每瓶样品计数两片取其平均值，每片结果与平均数之差不大于±15％，否则必须计数第三片，直至三片平均数与相近两数之差不超过均数的15%为止，这两个相近值的平均数即可视为计算结果。
浮游植物计数单位用细胞个数表示。对不易用细胞数表示的群体或丝状体，可求出平均细胞数。浮游动物计数单位用个数表示。
某些个体一部分在视野中，另一部分在视野外，这时可规定只计数上半部分或只计数下半部分。
6.7　生物量的测定
浮游植物的比重接近1，可直接采用体积换算成重量（湿重）。体积的测定应根据浮游植物的体型，按最近似的几何形状测量必要的长度、高度、直径等，每一种类至少随机测定50个，求出平均值，代入相应的求积公式计算出体积。此平均值乘上1L水中该种藻类的数量，即得到1L水中这种藻类的生物量，所有藻类生物量的和即为1L水中浮游植物的生物量，单位为mg/L或g/m3。
种类形状不规则的可分割为几个部分，分别按相似图形公式计算后相加。量大或体积大的种类，应尽量实测体积并计算平均重量。其他种类可参照表D1。微型种类只鉴别到门，按大、中、小三级的平均质量计算。极小的（＜5μm）为0.0001 mg/104个；中等的（5μm～10μm）为0.002mg/104个；较大的（10μm～20μm）为0.005mg/104个。
原生动物、轮虫可用体积法求得生物体积，比重取l，再根据体积换算为重量和生物量。甲壳动物可用体长一体重回归方程，由体长求得体重（湿重）。无节幼体可按0.003mg湿重/个计算。
轮虫、枝角类、桡足类及其幼体可用电子天平直接称重。即先将样本分门别类，选择30个～50个样本，用滤纸将其表面水分吸干至没有水痕，置天平上称其湿重。个体较小的增加称重个数。
6.8　结果整理
分析浮游植物和浮游动物种类组成，按分类系统列出名录表，见附录A的表A.6，数量和生物量的调查结果应随时记入附录A的表A.7、表A.10中。
7 水体初级生产力的测定
7.1　浮游植物叶绿素测定
7.1.1　采样
样品在浮游植物定量采样的同时用采水器采集，采样点布设同6.2.1，采样层次同6.2.2.1，方法同6.2.4.1。
7.1.2　仪器、试剂、步骤
按SL 88的规定执行。
7.1.3　结果整理
浮游植物叶绿素的测定结果记入附录A的表A.8中。
7.2　“黑白瓶”测定
7.2.1　采样
7.2.1.1　采样点布设
同6.2.1。
7.2.1.2　采样层次
应在水表面和透明度的0.5倍、1倍、2倍、3倍、4倍处分层采样，4倍透明度以下一般不采样。最下一层不超过距库底0.5m的深度。
7.2.1.3　采样方法
采样应在晴天进行。样品应在浮游植物定量采样的同时用采水器采集。各层次应采水样2L～2.5L。
7.2.2　仪器、试剂、步骤
按SL 167的规定执行。
7.2.3　结果整理
浮游植物初级生产力的测定结果记入附录A表A.9中。
8　底栖动物调查
8.1　试剂与器具
主要试剂见附录B，器具见附录C的C.3。
8.2　采样
8.2.1　采样点布设
根据不同环境（如水深、底质、水生植物等）特点设置断面和采样点，一般选择代表水域特性的地区和地带，如湖泊的主湖区和湖湾等，水库的库湾、近坝区、消落区、旧河床等，河流的浅滩、深槽、支流、洄水湾等。断面和采样点的设置多少视环境情况而定。大型水体的采样断面一般为5个～6个，中型水体的采样断面一般为3个～5个，小型水体的采样断面一般为3个。采样断面上直线设点，采样点的间距一般为100m～500m。
除采样断面上的采样点外，还应根据实际情况在湖泊、水库的大型水生植物分布区、入水口区、出水口区、中心区、最深水区、沿岸带、厍湾、污染区及相对清洁区等水域设置采样点。
8.2.2　采样次数
一般每季度采样一次，最低限度应在春季和夏末秋初各采样一次。水库采样需在最大蓄水和最小蓄水时进行采样。
8.2.3　定量采样
螺、蚌等较大型底栖动物，一般用带网夹泥器采集。采得泥样后应将网口闭紧，放在水中涤荡，清除网中泥沙，然后提出水面，捡出其中全部螺、蚌等底栖动物。
水生昆虫、水栖寡毛类和小型软体动物，用改良彼得生采泥器采集。将采得的泥样全部倒入塑料桶或盆内，经40目、60目分样筛筛洗后，捡出筛上可见的全部动物。如采样时来不及分捡，则将筛洗后所余杂物连同动物全部装入塑料袋中，缚紧袋口带回室内分捡。如从采样到分捡超过2 h，则应在袋中加入适量固定液。塑料袋中的泥样逐次倒入白色解剖盘内，加适量清水，用吸管、小镊子、解剖针等分捡。如带回的样品不能及时分检，可置于低温（4℃）保存。
各采样点上，用上述两种采样器各采集2次～3次样品。水库中无螺、蚌等较大型底栖动物时，可用不带网夹的采泥器进行定量采样。
8.2.4　定性采样
除用定量采样方法采集定性样品外，还可用三角拖网、手抄网等在沿岸带和亚沿岸带的不同生境中采集定性样品。
采样情况按附录A的表A.11做好记录。
8.3　样品的固定和保存
软体动物宜用75％乙醇溶液保存，4d～5d后再换一次乙醇溶液。也可用5％甲醛溶液固定，但要加入少量苏打或硼砂中和酸性甲醛。还可去内脏后保存空壳。
水生昆虫可用5%乙醇溶液固定，5h～6h后移入75%乙醇溶液中保存。
水栖寡毛类应先放入培养皿中，加少量清水，并缓缓滴加数滴75％乙醇溶液将虫体麻醉，待其完全舒展伸直后，再用5％甲醛溶液固定，75％乙醇溶液保存。
8.4　种类鉴定
软体动物须鉴定到种；水生昆虫（除摇蚊科幼虫）至少鉴定到科；水生寡毛类和摇蚊科幼虫至少鉴定到属。鉴定水生寡毛类和摇蚊科幼虫时，应制片在解剖镜或低倍显微镜下进行，一般用甘油做透明剂。如需对小型底栖动物保留制片，可将保存在75%乙醇溶液中的标本取出，用85%、90%、95%、100%乙醇进行逐步脱水处理，一般每15min更换一次，直至将标本水分脱尽，再移入二甲苯溶液中透明，然后将标本置于载玻片上，摆正姿势，用树胶或Puris胶封片。
8.5　计数
每个采样点所采得的底栖动物应按不同种类准确地统计个体数。在标本已有损坏的情况下，一般只统计头部，不统计零散的腹部、附肢等。
8.6　生物量测定
每个采样点采得的底栖动物按不同种类准确称重。称重前，先把样品放吸水纸上轻轻翻滚，使吸去体表水分，直至吸水纸上没有水痕为止，大型双壳类应将贝壳分开去除壳内水分。软体动物可用托盘天平或盘秤称重；水生昆虫和水生寡毛类应用扭力天平称重或电子天平称重。先称各采样点的总重，然后再分类称重。
8.7　结果整理
将所获得的数据换算成单位面积上的个数（密度，ind/m2）和质量（生物量，g/m2）。再将所有采样点的数据进行累计、平均，算出采样月（季或年）整个水体底栖动物的平均密度和平均生物量。并按分类系统列出名录表，见表附录A的A.6；数量和生物量的调查结果记入附录A的表A.12中。
9　着生生物调查
只进行定性检查。主要刮取或剥离水中浸没物诸如石块、木桩、树枝、水草或硬底泥等表层藻膜、丝状藻和粘稠状生长物，用鲁哥氏液固定。室内显微镜下鉴定种类组成。
9.1　试剂与器具
主要试剂见附录B，器具见附录C的C.4。
9.2　采样
9.2.1　采样点布设
采样点数量依着生生物分布及丰度而定，一般5个～6个。采样点布设在水体的浅水区、沿岸带和大型水生植物分布区等水域，一些受污染等特殊点也需采样观察。
9.2.2　采样方法
水体中有大量大型水生植物分布，则采集整株水草，带回实验室。在室内从水草根部起，依次刮取植株上的所有着生生物。除此外，水底石块、木桩、树枝等基质上的着生生物可用刀片或硬刷刮（刷）到盛有蒸馏水的样品瓶中，再将基质冲洗干净，冲洗液装入样品瓶中。现场来不及刮样时，可将基质带回室内刮取。
9.3　样品的处理
着生藻类样品的处理：样品用鲁哥氏液固定，用量为水样体积的1％～1.5％。
着生原生动物样品的处理：将样本连同基质分别放入盛有采样点水样的广口瓶内，其中一瓶用鲁哥氏液固定，另一瓶不加固定液，供活体观察用。
9.4　种类鉴定
优势种类须鉴定到种，其他种类至少鉴定到属。并按分类系统列出名录表，见附录A的表A.6。
10　大型水生植物调查
10.1　试剂与器具
主要试剂见附录B，器具见附录C的C.5。
10.2　采样
10.2.1　采样点布设
首先测量或估计各类大型水生植物带区的面积，然后选择密集区、一般区和稀疏区布设采样断面和点。采样断面应平行排列，亦可为“之”字形。采样断面的间距一般为50m～100m。采样断面上采样点的间距一般为100m～200m。没有大型水生植物分布的区域不设采样点。
10.2.2　定量采样
挺水植物一般用l㎡采样方框采集。采集时，将方框内的全部植物从基部割取。
沉水植物、浮叶植物和漂浮植物，一般用采样面积为0.25m2的水草定量夹采集，采集时，将水草夹张开，插入水底，然后用力加紧，把方框内的全部植物连根带泥夹起，冲洗去淤泥，将网内水草洗净装入编有号码的水草袋内。
每个采样点采集两个平行样品。除去污泥等杂质，装入样品袋内，沉水植物须放入盛水的容器中。
10.2.3　定性采样
挺水植物用手采集；浮叶植物和沉水植物用水草采集耙采集；漂浮植物直接用手或带柄手抄网采集。
定性样品应尽量在开花和（或）果实发育的生长高峰季节采集，采集的样品应完整（包括根、茎、叶、花、果）。
10.3　标本制作
10.3.1　蜡叶标本（干制标本）
在采集到的定性样品中，选择较完整的植物体，剪除枯枝叶及多余部分，用平头镊子将枝、叶、花各部分展开，整齐自然地置于吸水纸上。如果叶有明显的背腹差异，应把部分叶片翻转使其背面向上。枝条较长者要适当折转后铺放。有些粗厚的果实或地下茎，可剖开压放或摘除后另行处理。个体较大的植物，可选择具有分类特性的部位进行压制。对枝叶纤细、质地柔软的植物，应将单株植物体放入水中，整形后依其自然形态用玻璃板或白铁板轻轻托出水面，滴去积水放吸水纸上。
在标本上面盖一层纱布和2层～3层吸水纸，最后将若干夹有标本的吸水纸叠放一起，置标本夹（上下两片木制夹板）中，用绳捆紧加速定形和吸水。前3天应每天换纸和纱布2次，其后每天1次，约一周后可完全干燥。干燥成形的标本取出后，夹在干纸中间或用纸条粘在卡片纸上。
10.3.2　浸制标本
质地柔软的水生植物（如丝状藻），不宜制成蜡叶标本，则用浸制液浸泡。浸制时间视叶色变化而定，一般几天后叶片由绿变褐，再由褐变绿时将标本取出，置5%甲醛溶液或70%的乙醇溶液中保存。如标本过分柔软，可用线将其缚于玻璃棒或玻璃板上。
制成的标本要及时贴上标签，注明采集日期、地点、采集者，并留下名称和分类地位栏待鉴定后填写。
10.4　种类鉴定
定性样品趁新鲜时进行鉴定。所有标本要鉴定到种。
10.5　称重
10.5.1　鲜重
一般按种类称重。称重前，洗净，除去根、枯死的枝叶及其他杂质，放干燥通风处阴干。用盘秤或托盘天平称重。要求在采样当天完成。
10.5.2　干重
称取子样品（不得少于样品量的10％），置于105℃鼓风干燥箱中干燥48 h或直到恒重，取出称其干重。按下式进行计算：
　　　　　　　　　　　　　　………………………………………………………（4）
式中：
M——样品干重，g；
M1——样品鲜重，g；
M2——子样品干重，g；
M3——子样品鲜重，g。
10.6　结果整理
分析大型水生植物的种类组成，并按分类系统列出名录表，见附录A的表A.6；称重结果随时记入附录A的表A.13中。

附录A
（规范性附录）
淡水生物调查常用表格

表A.1　湖泊形态与自然环境调查表
湖泊名称

行政区划

主管单位

地理位置

高程（m）

水体形状

长度（km）

最大宽度（km）

平均宽度（km）

正常水位（m）

最高水位（m）

最低水位（m）

最大深度（m）

平均深度（m）

湖岸线长度（m）

面积（hm2）

最大面积（hm2）

最小面积（hm2）

容积（m3）

含盐量（%）

湖底倾斜度

底质类型

土壤类型

土壤特性

年入水量（m3/a）

年出水量（m3/a）

年交换量（m3）

集雨区面积（hm2）

植被类型

覆盖率（%）

备注

　　记录日期：　　　　　　　　　　　　　　　记录人：

表A.2　江河形态与自然环境调查表
水体
形态
特征
江河名称

最大高程（m）

最小高程（m）

长度（km）

起点

终点

最大宽度（km）

最小宽度（km）

平均宽度（km）

最大深度（m）

平均深度（m）

地理位置

流经地区

水文
条件
正常水位（m）

最大水深（m）

年均水深（m）

枯水期（d）

丰水期（d）

泥沙含量

流速（m/s）

流量（m3/s）

支
流
数目

名称

长度（km）

最大宽度（km）

最小宽度（km）

平均宽度（km）

最大深度（m）

平均深度（m）

正常水位（m）

最大水深（m）

年均水深（m）

集
雨
区
概
况
面积（hm2）

地理位置（经纬度）

流域总人口

土壤类型

土壤特性

底质类型

植被类型

覆盖率（%）

水土流失

排污口类型、数量

矿产资源的种类、分布、储量和开采情况

交通、旅游情况

工农业结构

水利工程开发状况

备注

　　记录日期：　　　　　　　　　　　　　　　记录人：
表A.3　水库形态与自然环境调查表
工
程
概
况
水库名称

行政区划

主管单位

建设时间

蓄水时间

蓄水方式

水库形状

植被状况

高程（m）

主要用途

水库装机容量（kW）

年发电量（kW·h）

生活饮用水（m3/a）

灌溉用水（m3/a）

灌溉面积（h㎡）

拦鱼设施

过鱼设施

调节方式

形
态
特
征
长度（km）

最大宽度（km）

平均宽度（km）

最大深度（m）

平均深度（m）

最大水面（hm2）

正常水面（hm2）

养鱼面积（hm2）

死水位面积（水库，㎡）

总库容（m3）

兴利库容（m3）

死库容（m3）

水
文
条
件
死水位（m）

养鱼水位（m）

正常水位（m）

设计水位（m）

最大水深（m）

年均水深（m）

年入水量（m3/a）

年出水量（m3/a）

年交换次数

枯水期（d）

丰水期（d）

泥沙含量

集
雨
区
概
况
地理位置

面积（km2）

底质

地貌

土壤类型

土壤特性

总人口

植被类型

覆盖率（%）

水土流失

土地利用类型和现状

林业建设管理和保护状况

矿产资源的种类、分布、储量和开采情况

风景名胜区级别、旅游情况

生产布局与经济结构

工农业结构

交通体系

能源结构

淹没区概况
总面积（km2）

淹没前植被类型

覆盖率（%）

土壤类型

土壤特性

地貌

淹没前渔业资源状况

消落区状况
面积（km2）

坡度

分布范围

土壤类型

土壤特性

利用状况

备注

　　记录日期：　　　　　　　　　　　　　　　记录人：
表A.4　气候气象条件调查表
　　水体名称：
年气候特征

季气候特征

调查区小气候特点

年均气温（℃）

年最高气温（℃）

年最低气温（℃）

各月均气温（℃）

年均降水量（mm）

年均相对湿度

各月均降水量（mm）

年均风速

年主导风向

季主导风向

各月均风速

年均日照时数（d）

日照率（%）

无霜期（d）

冰封期（d）

冰层最大厚度（cm）

主要灾害性天气

　　记录日期：　　　　　　　　　　　　　　　记录人：

表A.5　浮游生物采样表
　　河、湖、库名称：
水体名称

采样点

样品编号

采样时间

采样工具

采样层次

样品类别

样品量

固定剂

天气

风力风向

底质

水深（m）

透明度（cm）

流速（m/s）

气温（℃）

水温（℃）

pH

采样点生物（大型水生植物、水华等）状况

周围环境

备 注

　　记录日期：　　　　　　　　　　　　　　　记录人：

表A.6　淡水生物名录及其分布表
　　河、湖、库名称：　　　　　　　　生物类别：　　　　　　　　采样日期：
序号
种类
学名
采样点分布状况

合计

　　记录日期：　　　　　　　　　　　　　　　记录人：

注：用下列符号表示分布情况，“-”表示少，“+”表示一般，“++”表示较多，“+++”表示很多。
表A.7　浮游植物调查表
　　河、湖、库名称：　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　采样日期：
采样点
浮游植物总量
各门浮游植物数量（生物量）占总量百分比
数量（万个/L）
生物量（mg/L）
蓝藻
绿藻
黄藻
硅藻
甲藻
隐藻
裸藻
其它

平均

　　测定日期：　　　　　　　　　　　　　　　记录人：

表A.8　浮游植物叶绿素测定记录表
　　河、湖、库名称：　　　　　　　　采集工具：　　　　　　　　采样日期：
项目
采样点
Ca
Cb
Cc

平均

　　记录人：

表A.9　水体初级生产力“黑白瓶”测定表
　　河、湖、库名称：　　　　　采样点号：　　　　　透明度（cm）：　　　　　采样日期：
挂瓶深度
计 算
0.0

初始氧（mg/l）

白瓶氧（mg/l）

黑瓶氧（mg/l）

日毛生产量（mgO2/L.d）

日呼吸量（mgO2/L.d）

日净生产量（mgO2/L.d）

水柱产量（O2/m2.d）
水柱日毛生产产量
水柱日呼吸量
水柱日净生产产量

　　采样日期：　　　　　　　　　　　　　　　记录人：
表A.10　浮游动物调查表
　　河、湖、库名称：　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　采样日期：
采样点
浮游动物总量
各类浮游动物数量（生物量）占总量百分比
数量（万个/L）
生物量（mg/L）
轮虫类
枝角类
桡足类
原生动物

平均

　　测定日期：　　　　　　　　　　　　　　　记录人：

表A.11　底栖动物采样记录表
　　河、湖、库名称：　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　采样日期：
水体名称

采样点

样品编号

采样时间

采样工具

采集面积

该点采集次数

断面位置

固定剂

天气

风力风向

底质

水深（m）

透明度（cm）

流速（m/s）

气温（℃）

水温（℃）

pH

底质类别
淤泥、泥沙、黏土、粗沙、石、岩石 其它：
水草繁茂概括
-、+、++、+++：
周围环境

备 注

　　记录日期：　　　　　　　　　　　　　　　记录人：

表A.12　底栖动物调查表
　　河、湖、库名称：　　　　　　　　采样日期：　　　　　　　　采集工具：
采样点号
项目

平均
备注
软体动物
数量（个/m2）

生物量（g/ m2）

水生昆虫
数量（个/m2）

生物量（g/ m2）

水生寡毛类
数量（个/m2）

生物量（g/ m2）

其它
数量（个/m2）

生物量（g/ m2）

　　记录日期：　　　　　　　　　　　　　　　记录人：
表A.13　大型水生植物调查表
　　河、湖、库名称：　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　采样日期：
地点： 到 方位，估计 km2，共采集 次，共计采集面积 m2
采样点
种类
1
2
3
4
5

实测平均值（g）
g/m2
与总重量的百分比
湿重
干重
湿重
干重
湿重
干重

总计

备
注
水深（m）

透明度（cm）

采集工具名称及
其面积
（m2）：
底质类型

其他

　　测定日期：　　　　　　　　　　　　　　　记录人：

附录B
（规范性附录）
主要试剂及配制

B.1　鲁哥氏液：称取6g碘化钾溶于20mL蒸馏水中，待完全溶解后，加入4g碘，摇动，至碘完全溶解，加蒸馏水定容到100mL，贮存于磨口棕色试剂瓶中。
B.2　甲醛溶液：37%～40%,5％，（V/V）。
B.3　乙醇溶液：5％、50％、70％、75％、85%、90%、95%、100%，（V／V）。
B.4　二甲苯溶液。
B.5　甘油。
B.6　树胶。
B.7　Puris胶：用8g阿拉伯胶，10mL蒸馏水，80mL水合氯醛，7mL甘油，3mL冰醋酸配制而成。配制时，在烧杯中加入阿拉伯胶和蒸馏水，置80℃恒温水浴，用玻璃棒搅动。胶溶后，依次加入其他试剂，用玻璃棒搅拌均匀，然后以薄棉过滤即成。
B.8　水生植物标本浸制液：用90mL 50%乙醇，5mL 40%甲醛溶液，2.5mL甘油，2.5mL冰醋酸，10g氯化铜混合配制而成。

附录C
（规范性附录）
主要器具

C.1　浮游植物调查器具
C.1.1　采水器：水深小于10m的水体可用玻璃瓶采水器，深水必须用颠倒式采水器或有机玻璃采水器，规格为1000mL。
C.1.2　浮游生物网：圆锥形，用25号（孔径0.064mm）筛绢缝制成。
C.1.3　水样瓶：1000mL。
C.1.4　样品瓶：定量样品瓶采用带刻度的30mL或50mL玻璃试剂瓶；定性样品瓶采用30mL～50mL玻璃或聚乙烯瓶。
C.1.5　沉淀器：1000mL圆筒形玻璃沉淀器或1000mL分液漏斗。
C.1.6　乳胶管或U形玻璃管：内径2mm。
C.1.7　洗耳球。
C.1.8　刻度吸管：0.1mL、1.0mL。
C.1.9　计数框：0.1mL（10行×10行，共100格）。
C.1.10　盖玻片。
C.1.11　显微镜：附测微尺。
C.2　浮游动物调查器具
C.2.1　采样工具：采水器（1000mL，5000mL），13号浮游生物网（孔径0.112mm），水样瓶（1000mL，带刻度的30mL或50mL）。
C.2.2　计数器具：沉淀器（1000mL），刻度吸管（1.0mL，5.0mL），计数框（0.1mL，1.0mL，5.0mL）