基础生物学.doc

目 录

《基础生物学》 实验教学大纲 1
《生物化学（Ⅰ）》 实验教学大纲 2
《微生物学》实验教学大纲 5
《遗传学》实验教学大纲 8
《细胞生物学》 实验教学大纲 10
《分子生物学》 实验教学大纲 13
《生物信息学》 实验教学大纲 15
《食品分析》 实验教学大纲 19
《人类遗传病》 实验教学大纲 21
《实验动物学》 实验教学大纲 23
《实验动物营养学》 实验教学大纲 24
《人体解剖生理学》 实验教学大纲 26
《仪器分析》 实验教学大纲 28
《植物生物学》 实验教学大纲 30
《动物生物学》 实验教学大纲 32
《医学遗传学》 实验教学大纲 34
《酶工程》 实验教学大纲 36
《动物实验方法学》 实验教学大纲 38
《光镜与电镜》 实验教学大纲 39
《实验动物繁殖育种学》 实验教学大纲 40
《生物工程下游技术》 实验教学大纲 43
《基因工程》 实验教学大纲 45
《细胞工程》 实验教学大纲 47
《植物组织培养技术》 实验教学大纲 48
《微生物工程》 实验教学大纲 50
《生物工艺学》 实验教学大纲 52
《医学微生物与免疫学》实验教学大纲 54
《生物标本制作》实验教学大纲 56
《比较解剖学》实验教学大纲 59

61
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《基础生物学》 实验教学大纲
课程代码：

课程名称：
基础生物学
课程性质：
必修
课程类别：
专业基础
实验项目个数：
9
面向专业：
生物技术
实验教材：
黄诗笺主编《动物生物学实验指导》，高等教育出版社，2001
王英典、刘宁主编《植物生物学实验指导》，高等教育出版社，2001
一、课程学时学分
课 程 学 时：
80
学 分： 4
实验学时：
28

二、实验目的、任务、教学基本要求及考核方式
1、目的和任务：
通过本课程的学习，获得基础生物学必要的基本理论、基本知识和基本技能。了解生物的基本特性及其生命活动规律，为学习后续课程及从事于本专业有关的生物技术打下一定基础。
2、教学基本要求：
掌握基础生物学实验技术的基本操作和技能，熟练使用显微镜，并对原生生物及动植物的基本形态和结构有所了解。
3、考核方式：
操作考核：50%
理论考核：50%
三、实验项目一览表
序号
实验项目名 称
实验时数
实验内容及目的
实验要求
实验类型
备 注
1
显微镜的使用和细胞形态结构观察及原生动物和藻类植物的形态观察
3

1.显微镜使用的一般方法；
2.观察眼虫、草履虫、变形虫、鱼腥藻、衣藻、团藻及寄生性原生动物的形态结构。

必修
验证性
显微镜
2
植物的营养器官
3
1.观察各种新鲜植物根的标本，区别初生根与次生根，双子叶植物根与单子叶植物的根；
2.观察裸子植物茎，被子植物茎（木本、草本），分析其结构的区别；
3.观察各种叶子的形态结构，了解不同生态类型的叶的区别。
必修
验证性
显微镜，解剖镜
3
植物的繁殖器官
3
1．解剖几种植物的花，认识花的结构；
2．解剖几种植物的果实，认识不同类型的果实；
3．解剖几种种子，了解种子的基本结构。
必修
验证性
显微镜，解剖镜
4
动物组织学
3
1.单层扁平上皮装片，小肠横切，纤毛上皮装片等观察；
2.肌肉组织：平滑肌装片，骨骼肌横切，心肌切片等观察；
3.结缔组织：疏松结缔组织装片，腱纵切，透明软骨等，自制人血液涂片等观察；
4.神经组织：脊髓横切，运动神经元装片等观察。
必修
验证性
显微镜；采血针
5
鲫鱼的解剖
3
1.观察鲫鱼的外部形态：体色、体形、鳞片、侧线等；
2.观察鲫鱼的内部形态：消化系统，呼吸系统，循环系统，泄殖系统等。
必修
验证性
蜡盘，解剖工具
6
青蛙(或蟾蜍)外形观察、内部解剖和蛙心起搏点
3
1.蛙的解剖，观察各主要器官系统；
2．观察蛙心起搏点及心脏每次搏动顺序；用斯氏结扎法，观察心脏不同的收缩障碍。
必修
验证性
蜡盘，解剖工具，蛙心夹等
7
家兔解剖与去大脑僵直
3
1.观察家兔的外部形态；
2.观察家兔的消化系统，循环系统，呼吸系统，泌尿生殖系统，中枢神经系统；
3.观察在中脑上下叠体之间横切脑干后出现的现象。
必修
验证性
小动物解剖台，解剖工具
8
人血型、血压测定
3
1.用受试者血液与标准血清反应，判断血型；
2.用血压计、听诊器测量血压。
必修
验证性
采血针，血压计，听诊器
9
动物多样性及进化
4
1.观察和比较动物界10文化主要动物门代表动物的主要形态特征；
2.观察鸟类各目代表种的形态特征；
3.测量，查检索表，学习编制检索表。
必修
综合性

本大纲主笔人： 赵 春
审 核 人： 谢焕松
生命科学学院

《生物化学（Ⅰ）》 实验教学大纲
课程代码：

课程名称：
生物化学（Ⅰ）
课程性质：
必修
课程类别：
专业基础
实验项目个数：
15
面向专业：
生物科学、生物技术
实验教材：
生物化学实验，高等教育出版社
一、课程学时学分
课 程 学 时：
108
学 分： 5
实验学时：
36

二、实验目的、任务、教学基本要求及考核方式
1、目的和任务：
使学生通过本课程的学习，获得生物化学必要的的基本理论、基本知识和基本技能。了解生物化学发展的概况，为学习后续课程及从事与本专业有关的分子生物学、微生物学、细胞生物学、遗传学、基因工程、生化分析等课程和技术工作打下一定的基础。
2、教学基本要求：
掌握生物大分子蛋白质、酶、核酸以及糖类、脂类物质的理化性质的测定和生物功能。
3、考核方式：
理论考试：50%
实验技能：50%
三、实验项目一览表
序号
实验项目名 称
实验时数
实验内容及目的
实验要求
实验类型
备 注
1
总糖和还原糖的测定
3
掌握3,5—二硝基水扬酸比色法测定还原糖和总糖的原理，熟悉分光光度计比色的原理和使用方法。
必修
验证性
分光光度计
2
血清总胆固醇含量的测定（磷硫铁法）
3
学习并掌握磷硫铁法测定血清中总胆固醇含量的原理及操作；了解血清总胆固醇的正常值范围及临床意义
必修
验证性
分光光度计
3
蛋白质两性解离及等电点的测定
3
认识蛋白质的两性解离性质，了解等电点的意义及其与蛋白质分子沉降的关系，学习蛋白质等电点测定方法。
必修
验证性
恒温水浴锅、pH酸度计
4
蛋白质的呈色、沉淀、变性反应
3
目的：学习鉴定蛋白质氨基酸的方法及其原理；学习几种特定氨基酸的特殊颜色反应及其原理；了解蛋白质的沉淀反应、变性作用和凝固作用的原理及它们的相互关系；学习盐析和透析等生物化学的操作技术。
内容：双缩脲、茚三酮反应、黄色反应、可逆沉淀反应、不可逆沉淀反应。
必修
验证性
恒温水浴锅、离心机
5
氨基酸的分离与鉴定滤纸层析法
3
目的：了解氨基酸滤纸层析的原理及操作方法。
内容：进行氨基酸的纸层析及定性鉴定。
特征：如何将各种氨基酸分离
必修
设计性
层析缸
6
血清蛋白醋酸纤维素薄膜电泳
3
目的：了解电泳的一般原理，掌握醋酸纤维素薄膜电泳操作技术，测定人血清中各种蛋白质的相对百分含量。
内容：进行血清蛋白醋酸纤维素薄膜电泳并进行结果判断。
特征：如何利用血清蛋白醋酸纤维薄膜将血清蛋白分离
必修
设计性
电泳仪、电泳槽
7
蛋白质浓度测定（1）——考马斯亮蓝染色法
3
目的：学习考马斯亮蓝染色法的原理及方法，制备标准曲线，测定未知样品中蛋白质含量。
内容：制备考马斯亮蓝染色法标准曲线，测定未知样品蛋白质浓度。
必修
验证性
分光光度计
8
SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳法测定蛋白质的相对分子质量
6
目的：掌握一种测定未知蛋白质的分子量的方法；学会独立设计实验策略、摸索和设计样品处理等操作细节，并通过独立思考分析结果。
内容：蛋白质分子量测定
选修
验证性
电泳仪、电泳槽
9
蛋白质分子量的测定—凝胶层析法
6
目的：了解蛋白质分子量测定方法和凝胶层析原理和方法
内容：蛋白质分子量测定
选修
演示
层析柱、紫外检测仪、恒流泵、自动部分收集器、记录仪
10
酶的激活剂、抑制剂及温度对酶的活性的影响
3
目的：了解酶反应的激活剂、抑制剂，了解温度对酶活性的影响。
内容：酶的激活剂、抑制剂、温度对酶活性的影响。
知识点：①激活剂对酶的影响；②抑制剂对酶的影响；③温度对酶的影响
必修
验证性
恒温水浴锅
11
酶活力的测定
3
目的：酶活力测定的方法，加深对酶促反应速度及活力单位的理解
内容：淀粉酶活力测定，纤维素酶活力测定，过氧化氢酶活力测定）（选择一种方法让学生练习）。
选修
验证性
分光光度计
12
维生素C的定量测定
3
目的：了解用2，6—二氯酚靛酚滴定法测定维生素C含量的原理及方法。内容：用2，6—二氯酚靛酚滴定法定量测定维生素C的含量。
必修
验证性
分光光度计、离心机
13
酵母RNA的提取与地衣酚显色测定法
4
目的：了解并掌握稀碱法提取RNA及地衣酚显色法测定RNA含量的基本原理及具体方法。
内容：用稀碱法提取酵母细胞RNA，并用地衣酚显色法测定。
特征：酵母RNA提取的方法及条件优化
必修
设计性
离心机、分光光度计
14
紫外吸收法测定核酸含量
2
目的：了解紫外线（UV）吸收法测定核酸浓度的原理，并进一步了解紫外分光光度计的使用方法。
内容：用紫外线吸收法测定核酸浓度。
选修
演示
紫外分光光度计
15
血清谷丙转氨酶的测定（King氏法）
3
目的：掌握血清谷丙转氨酶（SGPT）活力测定的方法，学习绘制标准曲线，并学习如何设计实验。
内容：用King氏法测定血清谷丙转氨酶的活性。
必修
验证性
分光光度计、恒温水浴锅
说明：在“实验要求”栏标明该实验项目是“必修”还是“选修”；在“实验类型”栏标明该实验项目是“演示性”、“验证性”、“设计性”还是“综合性”实验；在“备注”栏标明完成该实验项目所需的主要仪器设备名称。
本大纲主笔人： 季本华
审 核 人： 刘晓瑞
生命科学 学院

《微生物学》实验教学大纲
课程代码：

课程名称：
微生物学
课程性质：
必修
课程类别：
专业基础
实验项目个数：
9
面向专业：
生物科学、生物技术
实验教材：
微生物学实验（第三版），沈萍、范秀容、李广武主编，高等教育出版社，1999年
一、课程学时学分
课 程 学 时：
82
学 分： 4
实验学时：
28

二、实验目的、任务、教学基本要求及考核方式
1、目的和任务：
通过本课程的学习，获得微生物学必要的基本理论、基本知识和基本技能。了解微生物的基本特性及其生命活动规律，为学习后续课程及从事与本专业有关的生物技术工作打下一定的基础。
2、教学基本要求：
掌握微生物学实验技术的基本操作和技能：油镜的使用、无菌操作、染色、培养基配制、消毒灭菌；学会微生物的分离纯化、微生物的生理生化特性的测定方法和微生物及其菌落特征的观察方法。
3、考核方式：
实验理论考试：50%
实验技能考核：50%
三、实验项目一览表
序号
实验项目名 称
实验时数
实验内容及目的
实验要求
实验类型
备 注
1
油镜的使用与细菌单染色
3
实验内容：
细菌制片、染色，油镜使用操作。
实验目的：
1.了解油镜的基本原理和使用方法；
2.掌握细菌的简单染色方法；
3.金黄色葡萄球菌，大肠杆菌，枯草杆菌的形态特征及观察。
必修
验证性
光学显微镜
2
培养基的制备、消毒与灭菌
3
实验内容：
按照给定的配方制备固体、半固体、液体培养基；高压灭菌操作。
实验目的:
1.学习掌握培养基制备的一般方法与步骤；
2.了解消毒和灭菌的原理和操作；
3.高压蒸汽灭菌的具体操作方法。
必修
验证性
可调节电炉、电子天平、
pH计、
高压灭菌锅
3
细菌的革兰氏染色、芽孢染色
3
实验内容：
细菌制片、染色、复染、媒染、脱色操作、镜检。
实验目的:
掌握革兰氏染色、芽孢染色的原理及操作方法。
必修
验证性
光学显微镜、恒温水浴锅
4
酵母菌和霉菌形态的观察
3
实验内容：
酵母细胞染色，霉菌制片，制片，镜检，
实验目的:
1.学会自制水浸片；2.观察青霉、曲霉的孢子梗、分生孢子梗、青霉的帚状分枝，曲霉的分生孢子小梗。3.观察根霉的孢子囊、匍匐菌丝、假根。4、观察酵母细胞的一般形态特征和出芽生殖形态；
必修
验证性
光学显微镜
5
微生物的分离、纯化及菌落的观察
3
实验内容：
取材，预处理，平板培养，观察不同菌落。
实验目的:
①掌握稀释分离、纯化土壤中的微生物的方法；
②观察并比较细菌、放线菌、霉菌、酵母菌的菌落的形态。
知识点：①无菌操作；②四大类微生物特征；③培养基配制
必修
综合性
超净工作台、
电子天平、恒温培养箱
6
细菌分解代谢系列实验
9
实验内容：
配置各种培养基进行葡萄糖发酵实验、甲基红实验、吲哚实验、VP实验，微生物对淀粉、油脂、明胶、酪素分解实验操作。
实验目的: ①了解细菌鉴定中常用的主要生理生化试验及其原理；②掌握并比较大肠杆菌、枯草芽孢杆菌的各类代谢实验。
知识点：①无菌操作；②各种代谢培养基配制；③大肠杆菌枯草芽孢杆菌代谢特征
必修
综合性
恒温培养箱、
超净工作台、
摇床
7
水的细菌学检查
3
实验内容：
配置尹红美蓝乳糖培养基（EMB）培养基进行水中微生物的检测。
实验目的:
1.了解自来水卫生的国家标准；
2.掌握大肠菌群值、大肠菌群指数的概念。
必修
综合性
恒温培养箱、
超净工作台、
摇床
8
细菌DNA 中G+Cmol%的测定
3
实验内容：
采用紫外分光光度计测定细菌DNA的热变性温度（Tm），并计算它们的G+Cmol%。
实验目的：
掌握应用氯仿苯酚混合提取细菌DNA的方法
选修
验证性
紫外分光光度计、
台式离心机
9
芽孢杆菌属（Bacillus）常见种的分离和鉴定
9
实验内容：
将土壤样品中分离的芽孢杆菌属的未知种鉴定到种。
实验目的：
掌握芽孢杆菌属常见种的分离、鉴定方法和技术。
特征：利用芽孢的特性，设计筛选芽孢杆菌
选修
设计性
恒温培养箱、
超净工作台、
摇床、
光学显微镜
说明：在“实验要求”栏标明该实验项目是“必修”还是“选修”；在“实验类型”栏标明该实验项目是“演示性”、“验证性”、“设计性”还是“综合性”实验；在“备注”栏标明完成该实验项目所需的主要仪器设备名称。
本大纲主笔人： 叶 辉
审 核 人： 王兆慧
生命科学 学院
《遗传学》实验教学大纲
课程代码：

课程名称：
遗传学
课程性质：
必修
课程类别：
专业基础
实验项目个数：
17
面向专业：
生物科学、生物技术
实验教材：
《遗传学实验》，杨大翔编著，科学出版社，2004
一、课程学时学分
课 程 学 时：
86
学 分：4
实验学时：
32

二、实验目的、任务、教学基本要求及考核方式
1、 目的和任务：
通过遗传学实验课的学习，使学生掌握遗传学研究的基本技能，熟悉有关的研究方法技术，培养科学务实的精神，培养端正的科研态度和独立思考解决问题的能力。
2、 教学基本要求：
在实验过程中，要求学生认真预习实验讲义，上课亲自动手操作，作好实验记录，实验结束后详细整理、统计、分析实验结果，写出实验报告。
3、考核方式：
实验操作考试50%
实验理论考试：50%
三、实验项目一览表
序号
实验项目名称
实验时数
实验内容及目的
实验要求
实验类型
备 注
1
有丝分裂
3
通过细胞染色体制片及观察，学习有丝分裂染色体制片技术，熟悉有丝分裂各时期的特点。
必修
验证性
恒温水浴箱
显微镜
2
减数分裂
3
通过减数分裂期染色体制片与观察，熟悉减数分裂各时期的特点，学习生殖细胞的染色体制片技术。
必修
验证性
显微镜
3
应用去壁低渗火焰干燥法制备植物染色体标本
3
以植物根尖为材料，学习去壁低渗火焰干燥法制备植物染色体的技术。
必修
验证性
恒温水浴箱
显微镜
4
染色体Giemsa分带技术
3
学习植物染色体分带技术。
必修
验证性
恒温水浴箱
显微镜
5
核型分析
3
学习染色体组型分析的方法，熟悉染色体组型分析中的各项指标。
必修
验证性
显微镜
显微摄影仪
6
植物姐妹染色单体区分染色法
3
学习植物姐妹染色单体区分染色法，观察植物细胞染色单体。
选修
验证性
显微镜
7
果蝇的性别鉴定、性状观察及饲养方法
2
通过果蝇的形态特征及常见突变性状的观察，了解果蝇的生活周期及各发育阶段的形态特征，熟悉雌雄果蝇的鉴别及常见突变性状。
必修
验证性
体视显微镜
恒温培养箱
8
孟德尔定律的验证
3
通过果蝇一对或两对相对性状的遗传，掌握孟德尔遗传定律。
选修
验证性
体视显微镜
恒温培养箱
9
果蝇唾腺染色体标本的制备与观察
3
学习果蝇幼虫唾腺染色体的制片方法，了解果蝇唾腺染色体的形态学及遗传学特征
必修
验证性
体视显微镜
显微镜
恒温培养箱
10
果蝇的伴性遗传
3
通过研究果蝇X连锁性状的遗传，熟悉伴性遗传的特点。
选修
验证性
体视显微镜
恒温培养箱
11
人类性染色质小体的制备与观察
3
通过口腔粘膜细胞和发根细胞巴氏小体观察，掌握观察与鉴别X染色质的简易方法，识别其形态特征及所在部位。
选修
验证性
显微镜
12
人类指纹的分析
3
掌握人类皮肤纹理图象。了解染色体病患者的肤纹特征。掌握皮纹异常判断标准。
选修
验证性

13
四分子分析
3
通过粗糙脉孢菌的杂交分析（着丝粒作图），了解粗糙脉孢菌的生活周期及特性，学习顺序四分子的遗传学分析方法。
选修
验证性
显微镜
14
植物总DNA的提取扩增及电泳检测
9
通过植物DNA提取、PCR扩增及琼脂糖凝胶电泳检测，学习提取、纯化、扩增、检测DNA的方法。
利用DNA性质，PCR技术和琼脂糖凝胶电泳方法完成本实验
根据实际条件任选一个必修其余选修
综合性
离心机
分光光度计
PCR仪、电泳仪
15
植物多倍体的诱发和鉴定
6
学习人工诱导植物多倍体的方法，了解其在植物育种上的意义。
验证性
显微镜
恒温培养箱
16
调查人群中某一或某几种性状
6
通过调查人群中的色盲等性状，了解人类几种性状的遗传规律，培养实验设计、科普调查的能力。
验证性

17
诱变因素对染色体结构的影响
6
了解染色体结构变异的类型，观察各变异类型的细胞学特征；学习诱发染色体结构变异的方法。
利用物理或化学诱变因素诱导染色体变异
设计性
显微镜

本大纲主笔人：谢晓玲
审核人： 谭湘陵

《细胞生物学》 实验教学大纲
课程代码：

课程名称：
细胞生物学
课程性质：
必修
课程类别：
专业基础
实验项目个数：
16
面向专业：
生物科学、生物技术
实验教材：
细胞生物学实验教程，科学出版社
一、课程学时学分
课 程 学 时：
80
学 分： 4
实验学时：
32

二、实验目的、任务、教学基本要求及考核方式
1、目的和任务：
使学生通过本课程的学习，获得细胞生物学方面必要的基本理论、基本知识和基本技能。了解细胞生物学发展的概况，为学习后续课程及从事与本专业有关的工作打下一定的基础。
2、教学基本要求：
掌握细胞生物学研究常规方法：如显微摄影术、细胞凝集反应与细胞膜的渗透性、细胞核与线粒体的分级分离、动植物染色体标本的制备与观察、细胞融合实验、细胞骨架观察等。
3、考核方式：
实验理论：50%
实验技能：50%
三、实验项目一览表
序号
实验项目名 称
实验时数
实验内容及目的
实验要求
实验类型
备 注
1
显微摄影术
3
了解显微摄影装置及其操作技术，完成显微摄影的过程。
必修
验证性
显微图像分析系统。
2
细胞凝集反应与细胞膜的渗透性
3
掌握细胞凝集反应的原理，了解细胞膜的渗透性及各类物质进入细胞的速度。
必修
综合性
显微镜，天平
3
线粒体和液泡系的超活染色与观察
3
了解活细胞内线粒体、液泡系的形态、数量与分布，了解超活染色的原理和技术
必修
验证性
显微镜，水浴锅
4
细胞核与线粒体的分级分离
3
通过细胞核、线粒体的分离，了解细胞器分离的一般原理和方法，掌握运用差速离心法进行细胞器的分离技术
选修
验证性
玻璃匀浆器，低速离心机，高速离心机
5
叶绿体的分离与荧光观察
3
通过植物细胞叶绿体的分离了解细胞器分离的一般原理方法，了解荧光显微镜的使用方法
选修
验证性
匀浆器，离心机，荧光显微镜
6
动物骨髓染色体标本的制备与观察
3
掌握动物染色体标本制备的基本过程，了解操作步骤的原理
选修
验证性
离心机、显微镜
7
植物染色体标本的制备与观察
3
掌握植物染色体标本制备的基本过程，了解操作步骤的原理
选修
验证性
显微镜
8
DNA的细胞化学-Feulgen反应
3
了解Feulgen反应的原理，掌握有关的操作方法
选修
验证性
显微镜，恒温水浴锅
9
细胞中酸性磷酸酶的定位
5
了解酸性磷酸酶定位的原理及操作步骤，观察酸性磷酸酶在细胞中的分布
选修
验证性
显微镜，恒温水浴锅
10
细胞中碱性磷酸酶的定位
5
了解冰冻切片的过程，熟悉酸性磷酸酶定位的原理及操作步骤，观察酸性磷酸酶在细胞中的分布
选修
验证性
冰冻切片机，显微镜，恒温水浴锅
12
细胞融合实验
3
初步掌握利用PEG进行细胞融合的方法
必修
验证性
显微镜
13
植物细胞骨架观察
3
观察细胞骨架，了解细胞骨架作用
必修
验证性
显微镜
14
核仁组织者银染实验
3
掌握银染核仁组织者技术方法，观察核仁组织者结构
选修
验证性
水浴锅，显微镜
15
腹腔巨噬细胞吞噬功能检测方法
3
掌握巨噬细胞吞噬异物的测定方法，观察机体的非特异性免疫现象
选修
设计性
显微镜，恒温培养箱
说明：在“实验要求”栏标明该实验项目是“必修”还是“选修”；在“实验类型”栏标明该实验项目是“演示性”、“验证性”、“设计性”还是“综合性”实验；在“备注”栏标明完成该实验项目所需的主要仪器设备名称。
本大纲主笔人： 张艳红
审 核 人： 叶 辉
生命科学 学院

《分子生物学》 实验教学大纲
课程代码：

课程名称：
分子生物学
课程性质：
必修
课程类别：
专业基础
实验项目个数：
8
面向专业：
生物科学、生物技术
实验教材：
《分子生物学实验指导》高等教育出版社2002年
一、课程学时学分
课 程 学 时：
64
学 分： 3
实验学时：
28

二、实验目的、任务、教学基本要求及考核方式
1、目的和任务：
分子生物学技术已经渗透到生物学的各个分支学科及医药农林的各个分支领域，并正在迅速改变着它们的面貌。本课程在全面介绍分子生物学的基本技术的同时，注重对反映当前分子生物学技术发展方向的新技术、新方法的介绍，激发学生的学习热情，使学生全面掌握分子生物学实验基本原理和技术，为培养基础扎实、适应性强的分子生物学人才奠定基础。
2、教学基本要求：
本课程通过一系列的实验从基因分离、克隆到目的基因的鉴定、表达等多种方法，帮助学生巩固和掌握有关分子生物学的相关理论和实验方法。
3、考核方式：
通过学生的平时成绩进行考核。平时成绩包括实验态度、实验室常识、实验技能的掌握和实验报告等方面。
考核学生的独立实验设计和实践过程，注重学生的创新性思维及独立分析问题解决问题能力的提高。
三、实验项目一览表
序号
实验项目名 称
实验时数
实验内容及目的
实验要求
实验类型
备 注
1
Northern杂交系统实验
18（总）
目的要求：通过Northern杂交系列实验，学习和掌握分子生物学研究中常用的实验手段，为今后的分子操作打下技术基础。
必修
综合性
6个系列实验构成

总RNA提取
3
实验目的：掌握Trizol法提取总RNA的原理和方法
实验内容：用Trizol法提取组织总RNA
必修

台式离心机，低温冰箱

甲醛变性琼脂糖凝胶电泳分析总RNA
3
实验目的：掌握甲醛变性琼脂糖凝胶电泳分析总RNA的方法
实验内容：甲醛变性琼脂糖凝胶电泳
必修

电泳仪、水平电泳槽

RT-PCR
3
实验目的：通过本实验学习PCR反应的基因原理与实验技术
实验内容：RT、PCR扩增目的基因
必修

PCR仪、水平电泳槽、电泳仪

电转移法印迹RNA
3
实验目的：通过本实验学习RNA转膜方法。
实验内容：电转移法印迹RNA
必修

电转槽、电泳仪

Northern杂交探针标记
3
实验目的：通过本实验学习掌握Northern杂交探针标记的方法。
实验内容：地高辛探针标记检测试剂盒进行PCR产物标记，点膜检测。
必修

水平摇床等

Northern杂交
3
实验目的：通过本实验学习掌握Northern杂交的实验原理和方法。
实验内容：预杂交、杂交、洗膜、显色、分析杂交结果。
必修

杂交炉、水平摇床、-70℃冰箱
2
遗传分子标记系列实验
10（总）
实验目的：了解遗传标记多态性的应用意义，掌握检测技术方法。

必修
综合性
2个系列实验构成

人基因组DNA的提取、PCR反应
3
实验目的：通过本实验学习和掌握人基因组DNA提取的方法。
实验内容：人基因组DNA的提取、以不同位点引物扩增不同个体遗传分子标记片断。
必修

PCR仪、恒温水浴箱

聚丙烯酰胺凝胶电泳及银染、多态性分析
7
实验目的：通过本实验学习掌握聚丙烯酰胺凝胶电泳及银染方法。
实验内容：1.PAGE-银染检测
2.多态性分析
必修

垂直电泳槽，电泳仪
说明：在“实验要求”栏标明该实验项目是“必修”还是“选修”；在“实验类型”栏标明该实验项目是“演示性”、“验证性”、“设计性”还是“综合性”实验；在“备注”栏标明完成该实验项目所需的主要仪器设备名称。

本大纲主笔人： 陈佩林
审 核 人： 刘晓瑞
生命科学 学院

《生物信息学》 实验教学大纲
课程代码：

课程名称：
生物信息学
课程性质：
必修
课程类别：
专业课程
实验项目个数：
4
面向专业：
生物技术
实验教材：
《简明生物信息学》，人民卫生出版社，北京，2004年
一、课程学时学分
课 程 学 时：
32
学 分： 2
实验学时：
12

二、实验目的、任务、教学基本要求及考核方式
1、目的和任务：
通过本课程的学习，使学生掌握生物信息学的基本技能，了解和掌握必备的计算机基础和主要的信息学资源，学习DNA序列分析、系统发育分析、基因组分析以及蛋白质组分析方法，为学习后续课程及从事与本专业有关的信息分析工作打下一定的基础。
2、教学基本要求：
要求学生了解和掌握必备的计算机基础和主要的信息学资源，掌握DNA序列分析、系统发育分析、基因组分析以及蛋白质组分析方法。
3、考核方式：
上机考试
三、实验项目一览表
序号
实验项目名 称
实验时数
实验内容及目的
实验要求
实验类型
备 注
1
上机1
3
熟悉主要生物数据库界面和功能；查询所指定的基因、蛋白、疾病等文献。
必修
综合性
计算机
2
上机2
3
下载基因序列和蛋白数据。
必修
综合性
计算机
3
上机3
3
离线和在线引物设计；酶切图谱分析。
必修
综合性
计算机
4
上机4
3
OMIM数据库使用；多序列对比和进化树制作。整理实习资料，上传作业。
必修
综合性
计算机
本大纲主笔人： 谭湘陵
审核人： 朱新宇
生命科学学院

《生物技术大实验》 实验教学大纲
课程代码：

课程名称：
生物技术大实验
课程性质：
必修
课程类别：
专业
实验项目个数：
9（必修）+3（选修）
面向专业：
生物科学、生物技术
实验教材：
自编
一、课程学时学分
课 程 学 时：
112
学 分：7
实验学时：
112

二、实验目的、任务、教学基本要求及考核方式
1、目的和任务：
本实验课程是专门为生命科学学院生物技术专业、生物学专业开设的一门专业实验技术课，是培养学生今后从事教学科研及技术开发工作最重要的教学实验环节之一，本课程具有知识面宽、实验性强、精密仪器使用多之特点，其目的是使本科生在参加工作和进入攻读硕士之前，对已学课程尤其是现代实验技术手段从理论上有更深的理解，提高学生的动手能力，为其今后从事教学、科研工作打下坚实的理论基础和实际操作能力。

2、教学基本要求：
要求学生掌握生物大分子物质的分离纯化（离心技术、凝胶电泳分离技术、层析分离技术）、生化检测分析、基因工程技术、生物发酵工程等方面的技术以及对大型精密仪器的操作使用有进一步了解和掌握，
3、考核方式：
1. 通过学生的平时成绩进行考核。平时成绩包括实验态度、实验室常识、实验技能的掌握和实验报告等方面。
2. 考核学生的独立实验设计和实践过程，注重学生的创新性思维及独立分析问题解决问题能力的提高。

三、实验项目一览表
序号
实验项目名 称
实验时数
实验内容及目的
实验要求
实验类型
备 注
1
酸性磷酸酯酶的提取与检测
12
　使学生掌握胞内酶的分离提取方法，学会离心机的使用；掌握SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳测定蛋白质分子量的原理与技术。掌握凝胶成像系统的使用方法。
　材料的准备，研磨，离心，配制制胶试剂，制胶，上样，电泳，染色，观测，分子量计算。
必修
综合性
高速冷冻离心机、电泳装置一套、凝胶成像系统。
2
聚丙烯酰胺凝胶电泳分离水稻POD、SOD同工酶
12
掌握聚丙烯酰胺凝胶电泳检测同工酶原理与技术。
　材料的准备和胁迫处理，研磨，离心，配制制胶试剂，制胶，上样，电泳，染色，观测。
必修
综合性
高速冷冻离心机、电泳装置一套、凝胶成像系统、冰箱等。
3
离子交换柱层析法
6
　使学生理解和掌握离子交换柱层析技术的基本原理和方法，通过实验学习和掌握柱柱层析系统的操作使用。
　柱层析系统的安装调试，生物样品的分离，绘制洗脱曲线。
必修
综合性
层析柱、恒流泵、自动部分收集器、紫外及可见分光光度计。
4
凝胶渗透层析法
6
使学生理解和掌握凝胶渗透层析技术分离溶质分子的基本原理和方法，通过实验学习和掌握凝胶柱层析系统的操作使用。
　柱层析系统的安装调试，生物样品的分离，绘制洗脱曲线。
必修
综合性
层析柱、恒流泵、自动部分收集器、紫外及可见分光光度计。
5
鸡卵粘蛋白的分离纯化与浓度和纯度鉴定
16
掌握蛋白的提取与纯化的原理和技术，学会浓度与纯度检测的方法。
粗提蛋白，用柱层析纯化蛋白，应用分光光度法测蛋白质浓度和纯度。
选修
综合性
层析柱、恒流泵、自动部分收集器、紫外及可见分光光度计。
6
胰蛋白酶粗提取与酶原激活
10
掌握从猪胰脏中提取胰蛋白酶的原理和技术。
组合子匀浆，过滤，酶原激活
必修
综合性
组织捣碎机、过滤装置、冰箱。
7
亲和层析法
9
使学生理解和掌握亲和层析技术纯化生物大分子的基本原理和方法，通过实验学习和掌握亲和柱层析系统的操作使用。
　柱层析系统的安装调试，生物样品的分离，绘制洗脱曲线。
必修
综合性
G-3烧结漏斗、抽滤装置、层析柱、恒流泵、自动部分收集器、紫外及可见分光光度计。
8
天然产物中多糖的制备与测定
13
学习并从植物中植被多糖的方法
材料准备，沉淀法提取多糖，脱蛋白，多糖检测
必修
综合性
离心机、酸度计、水浴锅、分液漏斗、烧杯、真空干燥机、分光光度计等。
9
重组基因的表达、分离、纯化和鉴定
32
掌握通过基因工程技术将特定基因转入细菌，由细菌表达产物，通过选择性标记鉴定等鉴定技术。
实验内容：表达载体的构建、蛋白质的表达、分离、纯化和鉴定
必修
综合性
冷冻高速离心机、移液器、恒温水浴箱、冰箱、超声波细胞破碎仪、制冰机、超净工作台、恒温摇床、垂直电泳槽、电泳仪、培养箱。
10
植物基因转化
32
通过农杆菌介导进行特定基因转移，并表达产物，
实验内容：表达载体的构建、农杆菌感受态植被、植物组织培养、转基因、筛选、鉴定
选修
综合性
冷冻高速离心机、移液器、恒温水浴箱、冰箱、制冰机、超净工作台、恒温摇床、潜水电泳槽、电泳仪、光照培养箱。
11
免疫生物化学技术
23
实验目的：掌握生化免疫检测
实验内容：单向定量免疫电泳（火箭免疫电泳）
酶联免疫吸附（ELASA）测定
选修
综合性
载玻片、打孔器、微量取液器、稀释板、培养器或带盖培养皿、聚苯乙烯微量反应板(40孔或96孔)，可调式微量吸液器（200μl），封口膜，小烧杯，试管，37℃恒温箱，酶联免疫检测仪。
12
发酵技术

12
实验目的：了解发酵技术
实验内容：
1．发酵罐的使用方法与参数设定：熟悉发酵罐结构；参数设定方法。
2．工程菌活化、接种与发酵过程的参数监测：接种工程菌，运转发酵罐，参数检测和调整，处置临时出现的问题。