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基于碳纳米管的安培型H2O2生物传感器的研究.docx

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基于碳纳米管的安培型H2O2生物传感器的研究 麦智彬 邹小勇* (中山大学化学与化学工程学院,广州:510275) 摘要 利用阳离子染料硫堇(Thionine, Thi)作为介体同时结合多壁碳纳米管(MWNTs)、壳聚糖(Chitosan, CHIT),辣根过氧化酶(Horseradish peroxidase, HRP)的混合包埋物制作H2O2生物传感器。通过循环伏安法、计时电流法对传感器的性能进行研究。结果表明所得传感器具有明显的增敏效应,线性范围为30μmol/L~5.5mmol/L,相关系数为0.9995。在S/N=3的情况下,检出限为19μmol/L。所得的传感器具有良好的稳定性及工作寿命。 关键词 碳纳米管 硫堇 壳聚糖 辣根过氧化酶 过氧化氢 1 引言 H2O2是过氧化酶参与的酶促反应产物,它的测定对于食品、药物和环境分析等具有重要意义。迄今为止,H2O2的测定方法包括光谱法[1],化学荧光分析法[2],滴定分析法[3]以及电化学分析法[4]。其中电化学分析法由于具有较高的灵敏度,良好的线性范围,快速而稳定的响应信号而被广泛研究。 碳纳米管(CNTs)发现于1991年[5],其独特的理化性质使之广泛地应用在生物传感器的研究之中。目前国内外已有多篇有关CNTs生物传感器的综述[6-7]。本文首次利用Thi作为介体结合CHIT、MWNTs和HRP的混合包埋物制作H2O2传感器,利用循环伏安法(CV),计时电流法(I-t)对传感器的工作机理、性能及寿命进行了研究。 2 实验部分 2.1 试剂 HRP购自国药集团化学试剂有限公司(RZ>250 units/mg)。CHIT购自上海伯奥生物科技有限公司,脱乙酰度为99%。H2O2(30% w/v溶液)购自广州化学试剂厂。羧基化的MWNTs购自深圳纳米港公司,纯度大于90%,直接使用。其它试剂均为分析纯。0.1mmol/L的Thi溶液用0.05mol/L pH=6.5的PBS溶液配制。1%的CHIT溶液用醋酸溶液配制。其余溶液用超纯水配制。 2.2 仪器 CHI660A型电化学工作站(上海辰华仪器公司)以及三电极系统:H2O2传感器为工作电极,铂丝为辅助电极,Ag/AgCl为参比电极。 扫描电镜(SEM)照片采自日本电子株式会社场发射扫描电子显微镜(型号:JSM-6330F),透射电镜(TEM)照片采自日本电子株式会社透射电子显微镜(型号:JEM-2010HR)。红外光谱采用德国Bruker公司傅里叶变换红外光谱-红外显微镜联用仪(型号:EQUINOX 55)制作。 2.3 传感器的制作 玻碳电极(GC, Φ=4mm)分别在载有1.0、0.3、0.05μm的Al2O3颗粒的绒毛垫上抛光处理后,用超纯水冲洗干净,依次在1:1 HNO3、无水乙醇及超纯水中超声处理各两分钟,自然晾干后备用。 5%的Nafion用无水乙醇稀释至0.5%。5μL 0.5%的Nafion滴加在电极表面,自然晾干,得Nafion修饰电极(GC/Naf)。GC/Naf在0.1mmol/L的Thi水溶液中浸泡10min,在此过程中,Nafion和Thi通过静电作用充分结合。静电吸附Thi后的电极用二次水彻底洗去弱吸附的Thi分子,晾干后得传感器底层(GC/Naf/Thi)。 1mg MWNTs在1%的CHIT中超声处理15min后得到1mg/mL的MWNTs-CHIT。10μL MWNTs-CHIT与5μL10mg/mLHRP均匀混合后,取其中8μL覆盖在传感器底层上, 4℃下干燥24h,得H2O2传感器(GC/Naf/Thi/MWNTs-HRP-CHIT),整个传感器的制作过程如图1所示。 图1 H2O2传感器制作流程图 2.4 实验方法 所有实验在0.05 mol/L pH6.5 PBS中进行。电解池中加入0.6mL底液,然后加入不同体积H2O2储备液进行电化学测定。循环伏安曲线在溶液静止状态下测定,计时电流法实验在搅拌状态下进行。 3 结果与讨论 3.1 MWNTs的物理表征 MWNTs在1% CHIT中的分散状况如图2C所示。分别考察MWNTs在水及1% CHIT中分散30天后的状况,研究发现MWNTs在水中已出现明显的聚沉现象,而在1% CHIT中仍分散良好。因此与水相比,1% CHIT对MWNTs具有更稳定的分散能力。 从MWNTs的SEM(图2A)可以很好地观察到MWNTs的管状结构。而由TEM(图2B)可判断出MWNTs的直径范围为8~20nm。 同时利用FT-IR表征了MWNTs功能化前后表面官能团(图2D)的状况。结果表明功能化后的MWNTs在1710和1568cm-1有明显的吸收峰。另外3440cm-1和1185cm-1的吸收峰分别归属于-OH和C-OH的弯曲吸收振动。由这些吸收峰可以推知,MWNTs的表面被部分氧化为羧基和羟基。 (A) (B) (C) (D) 图2 MWNTs的物理表征 (A为MWNTs的SEM图、B为MWNTs的TEM图、C为MWNTs分别在水和1%CHIT中分散30天后分散效果对比、D为羧基化前后MWNTs的IR图) 3.2 传感器的电化学性质 利用循环伏安法研究了传感器的电化学性质如图3所示。传感器在底液里(图3c)有一对准可逆峰(Ea=-0.137V, Ipa=-1.668μA; Ec=-0.212V, , Ipc=1.668μA; ΔE=75mV),该峰归属于Thi在电极表面的氧化还原。与GC/Naf/Thi(图3a)相比(Ea=-0.146V, Ipa=-8.672μA; Ec=-0.231V, , Ipc=6.203μA; ΔE=85mV),传感器的氧化及还原峰电流均有所下降,而可逆性增加。这是由于包埋MWNTs-CHIT-HRP后导致传感器的阻抗增大,但MWNTs特殊的空间效应和催化能力又促进了传感器内部介体的电子传递,使Thi的氧化还原电对的可逆性增加。在21mmol/LH2O2的存在下(图3b),Thi的还原峰电流明显地增加。H2O2与生物传感器的反应机理如下所示: H2O2+HRP→H2O+HRP-I (1) HRP-I+LTH→HRP-II+TH· (2) HRP-II + TH·→HRP + TH+ (3) TH++H++2e→LTH2 (4) HRP首先将H2O2还原为H2O,自身氧化为HRP-I(1)。HRP-I被白硫堇(LTH)进一步氧化成HRP-II(2),之后在硫堇自由基(TH·)的存在下HRP-II被还原为HRP,失去电子后的TH·转变成TH+,在酸性条件下得到电子重新还原LTH2,所以传感器在H2O2的存在下还原峰电流增加。 图3 生物传感器对21mmol/L H2O2响应的循环伏安图 3.3 实验条件的优化 通过一系列实验对传感器的实验条件进行了优化,结果如表1所示。在以后的定量分析中,均采用表1的选择值作为实验条件。 表1 实验条件参数优化表 参数 测量范围 选择值 静电吸附时间/min 5~15 10 扫描速率/(mV/s) 20~100 50 工作电位/V 0~-0.40 -0.22 pH 5.9~8.0 6.5 HRP用量/units 1~9 6 3.4 传感器工作机理探讨及在定量分析中的应用 3.4.1 传感器工作机理探讨 为了探讨MWNTs、HRP对传感器响应信号的贡献,利用计时电流法分别考察了(A)GC/Naf/Thi/MWNTs-HRP-CHIT;(B)GC/Naf/Thi/HRP-CHIT;(C)GC/MWNTs-CHIT对0.5mmol/L H2O2的响应情况,结果如图4所示。由图可知,IA>>IB+IC,传感器具有明显的增敏效应。增敏现象可以从几方面来考虑:一方面HRP可以有效地吸附在MWNTs管壁上[8],由于MWNTs具有较大的比表面积,电极表面的活性位点增多;另一方面MWNTs也可以利用其独特的三维网络结构深入HRP的活性中心[9],促进酶与电极的电子传递,减少HRP外层多肽的阻抗;另外,MWNTs较大的比表面积也可以对H2O2起到富集作用;同时,注意到GC/Naf/Thi/MWNTs-CHIT对H2O2仍有部分响应(图5),MWNTs 对H2O2具有催化作用,促使H2O2还原的过电位下降。总的来说,传感器的增敏作用受到以上几个因素的协同效应的影响,涉及到MWNTs在传感器中的空间效应及电子效应。 图4 传感器不同组分对0.5mmol/L H2O2 图5 GC/Naf/Thi/MWNTs-CHIT对 响应信号的贡献 0.5mmol/L H2O2的响应 3.4.2 传感器的工作曲线及米氏常数 利用计时电流法考察了传感器对H2O2的响应情况(图6)。结果表明,传感器的对H2O2具有快速的响应,信号达到95%所需的时间小于6s,且在H2O2浓度为30μmol/L~5.5mmol/L的范围内呈线性响应,方程为Current/A= 4.272×10-8+ 7.040×10-4C/(mol/L),相关系数为0.9995。同时,根据Lineweaver-Burk方程[10]: 1/Iss=1/Imax+KMapp/ImaxC (式中Iss为加入底物后的电流强度,C为底物浓度,Imax为固定底物浓度后的最大电流,KMapp为米氏常数。)用双倒数法求得米氏常数为1.93mmol/L(图7)。从图形意义上来说,米氏常数为检测上限和检测下限的中点位置,而本文所求得的米氏常数与该理论非常吻合,说明在该浓度范围内,传感器的反应属于一级反应动力学过程。 传感器对0.1mmol/L的H2O2分别进行了8次测量,求得R.S.D=5.8%,D.L. = 19μmol/L。 图6 传感器对H2O2的标准曲线 图7 传感器的米氏常数曲线 (I-t曲线由连续加入浓度为0.1mmol/LH2O2制作) 3.4.3 传感器的稳定性和寿命 传感器连续考察了7天,每天用0.1mmol/L H2O2分别测量6次,结果表明当传感器进入第四天后,电流下降了6.3%,但此后电流基本上稳定在75nA左右。说明传感器具有良好的稳定性和较长的寿命。 4 结论 利用MWNTs-CHIT包埋HRP制作了以Thi为介体的H2O2的生物传感器。实验结果表明,MWNTs由于其特殊的空间结构,电子性质,使其在传感器中起到三维网络导电骨架的作用,与一般的CHIT包埋HRP传感器相比具有明显的增敏效应。用这种方法制作的传感器具有良好的生物活性、稳定性及重现性。在这个结果之上有望开发基于氧化酶-HRP双酶体系的生物传感器。 参 考 文 献 1. Higashi N., Yokota H., Hiraki S., et al. Direct Determination of Peracetic Acid, Hydrogen Peroxide, and Acetic Acid in Disinfectant Solutions by Far-Ultraviolet Absorption Spectroscopy. Anal. Chem., 2005, 77(7): 2272-2277. 2. Lu J. Z., Lau C. W., Morizono M., et al. A Chemiluminescence Reaction between Hydrogen Peroxide and Acetonitrile and Its Applications. Anal. Chem., 2001, 73(24): 5979-5983. 3. Hurdis E. C., Romeyn Jr. H.. Accuracy of Determination of Hydrogen Peroxide by Cerate Oxidimetry. Anal. Chem., 1954, 26(2): 320-325. 4. Elzanowska H., Abu-Irhayem E., Skrzynecka B., et al. Hydrogen Peroxide Detection at Electrochemically and Sol-Gel Derived Ir Oxide Films. Electroanalysis, 2004, 16(6): 478-490. 5. Lijima S.. Helical micro-tubules of graphitic carbon. Nature, 1991, 354: 56-58. 6. Katz, I., Willner. E.. Biomolecule-Functionalized Carbon Nanotubes: Applications in Nanobioelectronics. ChemPhysChem, 2004, 5(8): 1084-1104. 7. Wang J.. Carbon-nanotube Based Electrochemical Biosensors: A Review. Electroanalysis, 2005, 17(1): 7-14. 8. Davis J. J., Green M. L. H., Hill H. A. O., et al. The immobilisation of proteins in carbon nanotubes. Inorg. Chim. Acta, 1998, 272(1-2): 261-266. 9. Zhang M. G., Gorski W.. Electrochemical Sensing Platform Based on the Carbon Nanotubes/Redox Mediators-Biopolymer System. J. Am. Chem. Soc., 2005, 127(7): 2058-2059. 10. Kamin R. A., Willson G. S.. Rotating ring-disk enzyme electrode for biocatalysis kinetic studies and characterization of the immobilized enzyme layer. Anal. Chem., 1980, 52(8): 1198-1205. 致 谢 感谢中山大学化学与化学工程学院创新实验与研究基金(No. 24)对本项目的资助。
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