1、食品微生物检验学实验指导课时分配及主要实验内容(总学时30,其中动检20,动食安30)实验1 微生物检验常规试验预备 3主要内容:菌落总数测定和大肠菌群检验所需的1)研钵、剪刀、镊子、吸管、平皿的包扎与干热灭菌;2)实验所需培养基(营养琼脂、EMB琼脂、乳糖胆盐发酵管)和生理盐水的配制、分装、包扎和高压蒸汽灭菌。实验2 菌落总数测定 3主要内容:1)样品的称取、匀浆和稀释;2)接种与琼脂倾注;3)24h后菌落计数及结果报告。实验3 大肠菌群MPN测定 3主要内容:1)样品的称取、匀浆和稀释;2)接种于乳糖胆盐发酵管,培养;3)24h后观察产酸产气情况,划线于EMB琼脂,培养;3)48h时观察菌
2、落特征,革兰氏染色、镜检;4)查MPN检索表,报告结果。实验4 蜡样芽孢杆菌检验 3主要内容:1)将细菌肉汤培养物划线于普通琼脂、MYP琼脂,点种于卵黄琼脂平板,接种生化培养基,培养;2)24h时观察菌落特征,革兰氏染色、镜检;3)观察主要生化试验结果。4)报告。实验5 致病性球菌检验 3主要内容:1)将金黄色葡萄球菌和链球菌肉汤培养物划线于普通琼脂、血液琼脂,接种生化培养基,进行纸片法药敏试验,培养;2)24h时观察菌落特征,革兰氏染色、镜检;3)观察主要生化试验结果和药敏试验结果。4)报告。实验6 魏氏梭菌检验 3 主要内容:1)形态及染色特性观察;2)细菌厌氧培养;3)家兔“泡沫肝”试验
3、实验7 霉菌检验 2主要内容:1)观察曲霉、毛霉和青霉在PDA琼脂上的菌落特性;2)挑取霉菌培养物制备压片,在显微镜下观察霉菌菌丝、孢子等结构。实验8 肉的微生物学检验 2主要内容:1)鲜肉的感官性状观察;2)鲜肉压印片制备与镜检、细菌计数;3)微生物毒素呈色反应。实验9 乳的微生物学检验 2主要内容:1)鲜乳的感官性状观察;2)乳的涂片制备与镜检、细菌计数;3)美兰还原试验。实验10 食品中沙门氏菌的检验 6主要内容:1)沙门氏菌检验所需培养基的制备;2)细菌分离与菌落挑选;3)细菌生化试验;4)血清学鉴定;5)结果报告。实验一 微生物检验常规试验预备目的与要求1.熟悉菌落总数测定和大肠菌群
4、检验所需的各种培养基的制备。熟悉高压蒸汽灭菌器的使用。2.熟悉玻璃器皿的包装与干热灭菌方法。 主要内容: 1 研钵、剪刀、镊子、吸管、平皿的包扎与干热灭菌。2 实验所需培养基(营养琼脂、EMB琼脂、乳糖胆盐发酵管)和生理盐水的配制、分装、包扎和高压蒸汽灭菌。1)配制700 mL生理盐水(0.9%NaCl),分别分装与5个盐水瓶,每瓶90 mL;分装18支试管,每管9 mL。2)配制乳糖胆盐培养基(发酵管)200 mL,并分装于小试管各3 mL,每管中加入一个充满培养基的小倒管,注意一定不能有气泡。(配方:2%蛋白胨,0.5%猪胆盐,1%乳糖,调pH7.4,然后加入0.4%溴甲酚紫2.5ml/1
5、00ml)3)配制普通琼脂培养基400ML,分装于2 个三角瓶。(0.5%NaCl,1%蛋白胨,0.3%牛肉粉(膏),pH7.4,琼脂粉1.5%)4)配制伊红美蓝培养基300 mL。(配方:蛋白胨1%,NaCl 0.5%,牛肉膏0.3%,pH7.4,琼脂粉1.5%,加热溶化后加入乳糖1%、2%伊红水溶液2 mL/1000 mL、0.65%美蓝1 mL/1000 mL)5)TTC培养基 (1)2%乳糖发酵管40支,每管2.5ml(2%乳糖,2%蛋白胨)。 (2) TTC培养液100ml(2%蛋白胨,1%Nacl,1%Na2HPO4.12H2O,0.4%十二烷基硫酸钠,PH7.4) (3)灭菌后加
6、10%TTC8ml后分装于(1),每管加2.5ml。6)DC培养基(0.5%蛋白胨,0.5%Nacl,1%乳糖,0.3%K2HPO4.3H2O,0.2%柠檬酸铁铵,琼脂粉0.7%)溶于水后调PH7.2,加入10%去氧胆酸钠 1ml及0.4%溴麝香草酚兰1.6ml。思考题1 配制培养基时的一般原则和注意事项?2 使用高压灭菌器和恒温干燥箱的注意事项?实验二 菌落总数测定目的与要求 通过本试验要求掌握食品的菌落总数测定的方法,菌落计数和报告方式,以及经常食用的各类动物性食品的菌落总数标准。 菌落总数是指食品检样经过适当处理,在一定的条件下培养后,所得1g或1mL检样中所含细菌菌落的总数,其也是判定
7、食品被污染程度的标志。实验器材及试剂 温箱、天平、灭菌试管、吸管、灭菌平皿、乳钵、剪子和镊子、稀释液、营养琼脂、显微镜、载玻片、革兰氏染色液,等。 实验内容(一)检样稀释及培养: 1. 以无菌操作,将检样 2 5 g(或 2 5mL)剪碎放于含有 2 5 0 mL(或 2 2 5 mL)灭菌生理盐水或其他稀释液的灭菌玻璃瓶内(瓶内预置适当数量的玻璃珠)或灭菌乳钵内,经充分振摇或研磨作成1: 10的均匀稀释液。 2. 用1mL灭菌吸管,吸取1:10稀释液1mL,注入含有9mL灭菌生理盐水的试管中振摇试管混合均匀,作成1:100倍稀释。 3. 另取lmL灭菌吸管,按(2)操作10倍递增稀释,如此每
8、递增稀释一次换一只1mL灭菌吸管。 4根据卫生标准要求或对样品污染情况的估计,选择23个适宜稀释度,分别在作10倍递增稀释的同时,用吸取该稀释度的吸管移1mL稀释液于灭菌平皿内,每个稀释度作2个平皿。 5. 稀释液移入平皿后,应立即将冷至46 左右营养琼脂培养基(可放置46 水浴中保温)注入平皿约15mL,并转动平皿使混合均匀,同时将营养琼脂培养基倾入加有lmL灭菌稀释液的灭菌平皿内,作空白对照。 6. 待琼脂凝固后,翻转平板,置37温箱内培养2 42h时(肉、水产、乳、蛋为 482h)取出,计算平皿内菌落数,乘以稀释倍数,即得每g(mL)样品所含菌落总数。(二)菌落计数方法 作平板菌落计数时
9、,可用肉眼观察,必要时用放大镜观察,以防遗漏。在记下各皿的菌落数后,求出同稀释度的各皿平均菌落数。(三)菌落计数的报告 包括三步。 1平板菌落数的选择 选取菌落数在30 3 0 0之间的平板作为菌落总数测定标准。一个稀释度使用两个平板应采用两个平板平均数,其中一个平板有较大片状菌落生长时,则不宜采用,而应以无片状菌落生长的平板作为该稀释度的菌落数,若片状菌落不到平板的一半,而其余一半中菌落分布又很均匀,即可计算半个平板后乘以2以代表全皿菌落数。 2. 稀释度选择 (1)选择平均菌落数在30300之间,乘稀释倍数。 (2)若两个稀释度,其菌落数均在30300之间,则视二者之比来决定。比值小于或等
10、于2,应报告平均数,大于 2则报告其较小的数字。 (3)若所有稀释度的平均菌落数均较大于300,则应按稀释度最高的平均数乘以稀释倍数报告。 (4)若所有稀释度平均菌落数均小于30,则应按稀释度最低平均数乘以稀释倍数。 (5)若所有稀释度均无菌落的生长,则以小于()1乘以最低稀释倍数报告之。 (6)若所有稀释度的平均菌落数均不在30300之间其中一部分大于300或小于30时,则以最接近30或300的平均菌落数乘以其稀释倍数。3菌落数的报告 菌落数在100以内时,按其实有数报告,大于100时,采用二位有效数字,在两位有效数字后面的数值,以四舍五入方法计算,为缩短数字后面的零数也可用10的指数来表示
11、,详见表21。思考题1 菌落总数的食品卫生学意义?2 影响本实验结果的因素有哪些? 表2-1 稀释度选择及菌落数报告方式例 稀释液及菌落数 两稀释 菌落总数 报告方式次 101 102 103 液之比 (个/g或mL) (个/g或mL)1 多不可计 164 20 16400 16000或1.6 1042 多不可计 295 46 1.6 37750 38000或3.81043 多不可计 271 60 2.2 27100 27000或2.71044 多不可计 多不可计 313 313000 310000或3.11055 27 11 5 270 270 或2.71026 0 0 0 110 107
12、多不可计 305 12 30500 31000或3.1 104 实验三 大肠菌群数的测定目的与要求 1掌握大肠菌群MPN的测定原理与方法,及实验结果报告方式。2熟悉检验中各种培养基的配制。3了解大肠菌群的食品卫生学意义原理大肠菌群系指一群能发酵乳糖,产酸产气,需氧和兼性厌氧的革兰氏阴性无芽孢杆菌。该菌主要来源于人畜粪便,故以此作为粪便污染指标来评价食品的卫生质量,具有广泛的卫生学意义。它反映了食品是否被粪便污染,同时间接地指出食品是否有肠道致病菌污染的可能性。 食品中大肠菌群数系以每100g(或ml)检样内大肠菌群最近似数(themostprobablenumber-简称MPN)表示。实验器材
13、及试剂样品:乳、肉、禽蛋制品、饮料、糕点、发酵调味品或其他食品。 温箱、天平、灭菌试管、吸管、灭菌平皿、乳钵、剪子和镊子、稀释液、营养琼脂、显微镜、载玻片、革兰氏染色液、乳糖胆盐发酵管、伊红美兰琼脂、乳糖发酵管、DC半固体培养基、TTC乳糖培养基、灭菌中性定性滤纸片,等。实验内容一、常规检验法1检样稀释及培养 取样及稀释方法与菌落总数检验方法相同,做成1:10的均匀稀释液为检样。同一稀释度在做菌落总数的测定的同时接种乳糖胆盐发酵管,并且用大肠埃希氏菌、产气肠杆菌混合菌种作对照。 2乳糖发酵试验 根据食品卫生要求或对检样污染程度的估计,选择三个稀释度,每个稀释度接种三管乳糖胆盐发酵管。接种量在1
14、ml以上者,用双料乳糖胆盐发酵管,1ml及1ml以下者,用单料乳糖胆盐发酵管,同时用大肠埃希氏菌和产气肠杆菌混合菌种混合接种于1支作单料乳糖胆盐发酵管对照。置361温箱内,培养242小时,如所有发酵管都不产气,则可报告为大肠菌群阴性,如有产气者,则与对照的混合菌种一起按下列程序进行。 3 分离培养 将产气的发酵管分别在伊红美兰琼脂(EMB琼脂)平板上划线分离。然后置361温箱内,培养1824小时后取出,观察菌落形态,并作革兰氏染色和证实试验。 4证实试验 在上述平板上,挑取可疑大肠菌落12个进行革兰氏染色,同时接种乳糖发酵管,置361温箱培养242小时,观察产气情况,凡乳糖管产气、革兰氏染色为
15、阴性的无芽孢杆菌,即可报告为大肠菌群阳性. 5报告 根据证实大肠菌群的阳性管数,查MPN检索表(见附录)报告每100ml(克)食品中大肠菌群的最可能数. 二、快速检验法(一)T T C(氯化三苯四氮唑)显色快速法 样品处理同常规法。具体操作步骤:1接种 每份样品以无菌操作接种lmL、0lmL、001mL各三管于TTC乳糖培养基中,如接种量为10mL,则用三倍TTC乳糖培养基。 2培养 接种后,置3537 温箱中培养1824h。 3结果判定 观察TTC乳糖培养基呈色和产气情况。按下列标准进行判定。见表3-1,表31 显色法的大肠菌群结果判定 显 色 产气 大肠菌群判定紫红、深红、红色、浅红色、局
16、部红色 十 阳性紫红、深红、红色、浅红色、局部红色 阴性小红点或局部浅红色 阳性无色透明或有小红点,局部浅红色 阴性不变红色 阴性 4结果报告根据阳性管数查MPN检索表,得出结果并报告之。 5注意事项 观察产气时,如小导管内有肉眼可见气泡,均为产气阳性,另要注意导管有无被沉淀物堵塞,如轻轻振动试管,有小气泡上升者仍为阳性。(二)DC(去氧胆酸钠)半固体试管快速法 样品稀释同常规法,具体操作步骤: 1. 接种 液体样品选择原液、1:10、l:100三个稀释度的样品液,每个稀释度取三个1mL,分别放入灭菌试管中。固体样品取1:10稀释液三个10mL(1g)样品分别注入三个灭菌试管内,再取1:10稀
17、释液三个lmL和1:100稀释液三个lmL分别加入灭菌试管内。 2加入培养基并进行培养 接种1mL样品的试管,注入已溶化并冷至50左右的DC半固体培养基3mL,接种10mL样品的试管加入三倍DC培养基5mL,立即将样品与培养基充分混合,待凝固后,置37温箱内培养1824h。取出观察结果。 3结果判定和记录则分别按下述四种处理 (1)培养基变桔红色,有气泡产生或琼脂崩裂,记录为。(2)培养基为桔红色,或有桔红色菌落,无气泡或琼脂崩裂现象,记录为十。(3)培养基为绿色,有黄色菌落无气泡和琼脂崩裂现象,记录为土。(4)培养基为绿色,记录为-。 4报告结果:判定为( 1)和( 4)反应结果,记录阳性管
18、数。查MPN检索表并报告之。 如遇( 2)、( 3)项反应结果,可挑23个大肠菌群可疑菌落接种乳糖复发酵管,置37温箱中培养1824h。时,根据产酸产气管数查MPN检索表并报告之。(三)纸片快速法 1制备纸片 将中性定性滤纸裁成 10 12cm,然后叠成 56cm大小双层纸片,灭菌后用专用培养基浸渍,然后3740烘干,以无菌操作放入塑料袋内备用(塑料袋为耐高温的聚丙塑料膜,以利消毒)。 2接种样品 样品稀释方法同前述液体和固体样品培养。( 1)液体样品:取原液、 1:10、 1:100三个稀释度各三个1mL,分别涂布于9张纸片上。(2)固体样品:取原液、 l:10、 1:100三个稀释度各三个
19、lmL,分别涂布于9张纸片上。3培养 将上述纸片置37士 1温箱中,培养15小时观察结果。4结果判定 根据以下情况分别判定:(1)纸片上出现紫红色菌落,其周围有黄圈者为阳性。(2)纸片为一种颜色,无菌落生长者为阴性。(3)纸片呈紫色,有紫红色菌落,其周围无黄圈者为阴性。(4)酸性食品接种后,纸片变黄,经培养后无紫红色菌落为阴性。(5)纸片变色呈现不典型菌落,结果可疑者,应做复发酵进行验证。5结果报告 根据纸片的阳性片数,查大肠菌群MPN检索表并报告之。6注意事项有二。(1)用培养基浸渍过的纸片,应避光保存,并注意防潮,可放冰箱中保存备用。(2)如发现纸片变为粉红色即为失效。 思考题 1大肠菌群
20、检验中为什么首先要用乳糖胆盐发酵管? 2作空白对照实验的目的? 3为什么大肠菌群的检验要经过复发酵才能证实? 4复发酵时为什么使用乳糖发酵管但不需加胆盐?表3-2大肠菌群最可能数(MPN)检索表阳性管数MPN100ml(g)95可信限1ml(g)30.1ml(g)30.01ml(g)3下限上限000000000123303060905900000111101233060901205130000022220123609012016052000000333301239013016019010210111100000123407011015010230111111110123701101501903
21、036011112222012311015020024030360111133330123160200240290303602222000001239014020026010370222211110123150200270340304402222222201232102803504207070390470222233330123290360440530100150033330000012323039064095040701501200130018003333111101234307501200160070140300210023003800333322220123930150021002900
22、1503003503800440047003333333301232400460011000240003607101500130002400048000注: 表采用3个稀释度1mL(g)、0.1mL(g)和0.01mL(g),每稀释度3管。 内所列检样量如改用10mL(g)、1mL(g)和0.1mL(g)时,表内数字相应降低10倍;如改用0.1mL(g)、0.01mL(g)和0.001mL(g)时,则表内数字应相应增加10倍。其余可类推。 实验四 食品中蜡样芽胞杆菌的检验 目的与要求 通过本实验要求了解蜡样芽胞杆菌的主要生化特性、毒力测定与类似菌鉴别;掌握本菌的形态特征,选择培养基的菌落特点。
23、 实验器材及试剂 温箱、营养琼脂、显微镜、载玻片、革兰氏染色液、硝酸盐培养基、酪蛋白琼脂、10卵黄琼脂、酚红葡萄糖肉汤,等。 实验内容一、活菌计数: 活菌计数是取样品25g(或25mL),用灭菌生理盐水(或磷酸盐缓冲液 PH7.0) 225mL稀释(固体样品如肉或肉制品等,应无菌研磨制成匀浆后稀释),稀释度为1:10,再将此稀释液作1:10(样品的实际稀释度为1:100,以下各稀释度类推)、1:100、1:1000和1:10000稀释,取各稀释度0.1mL,接种在10卵黄琼脂或MYP(甘露醇卵黄多粘菌素)琼脂上涂匀后,置 3 7温箱中培养1220h,选取菌落数在30个左右者计数,蜡样芽胞杆菌的
24、菌落在卵黄琼脂上呈粉红色,周围呈乳白色混浊环,在MYP琼脂上呈灰白色或微带红色,并且在粉红色(表示不发酵甘露醇)的背景中环绕白色至淡红色的晕(表示产生卵磷脂酶)。 计数后,从中挑取5个典型菌落作证实试验,根据证实为蜡样芽胞杆菌的菌落,计算出该皿内的蜡样芽胞杆菌数,然后乘其稀释倍数,即得每 g(或mL)样品中所含蜡样芽胞杆菌数,例如,将固定检样1:10000的稀释液0.lmL涂布于甘露醇卵黄多粘菌素琼脂平板上,生成的可疑菌落为25个,取5个鉴定,证实为蜡样芽胞杆菌的是4个,则1g检样中蜡样芽胞杆菌数为: 254510410=2106二、细菌培养:将检样或其稀释液接种于血琼脂或MYP琼脂平板,置3
25、7温箱内培养1220h,挑取可疑菌落接种于肉汤和营养琼脂做成纯培养,以备证实试验用。 三、证实试验 1形态观察:革兰氏染色法镜检,芽胞卵圆形,芽胞较菌体小,位于中央或稍偏一端。 2培养特性:蜡样芽胞杆菌在肉汤中呈混浊生长,常微有菌膜或壁环,振荡易乳化。营养琼脂上呈不透明、表面粗糙、似毛玻璃或融蜡状,边缘似齿轮状。 3生化特性:蜡样芽胞杆菌有动力,还原硝酸盐,接触酶阳性,溶血,不发酵甘露醇和木糖,常能液化明胶和溶菌酶试验阳性,淀粉酶试验阳性,厌氧条件下能发酵葡萄糖。1)硝酸盐试验:将纯培养的细菌穿刺接种于硝酸盐培养基中,培养1824h后,取出检查,有动力的细菌,可由穿刺线向四周扩散生长,使周围的
26、培养基变混浊,无动力的细菌仅能沿穿刺线生长,周围的培养基仍然保持透明,然后沿管壁加入硝酸盐还原指示剂甲液和乙液各二滴,能还原硝酸盐的细菌立即呈红色。 2)酪蛋白琼脂:划线后于37培养48h,观察菌落周围培养基,如透明表示酪氨酸蛋白酶阳性。 3)卵磷脂酶试验:取肉汤培养物点种于10卵黄琼脂平板上,置37培养3h,蜡样芽胞杆菌产生混浊环,6h后混浊环扩散至56mm。 4)厌氧发酵葡萄糖试验:取1环肉汤培养物接种于3mL酚红葡萄糖肉场内,置厌氧罐中,37培养24h,观察培养基颜色是否由红变黄,如果变黄,为厌氧条件下利用葡萄糖产酸阳性。 思考题1 为什么在检验食品中的蜡样芽胞杆菌时要进行活菌计数?2
27、蜡样芽胞杆菌的主要生化特性? 实验五 致病性球菌的检验 目的与要求 1掌握葡萄球菌和溶血性链球菌的常规检验方法。 2认识葡萄球菌和溶血性链球菌的形态、培养和生化特性。实验器材及试剂 温箱、营养琼脂、显微镜、载玻片、革兰氏染色液、健康人血浆、新鲜兔血浆、血琼脂平板、杆菌肽药敏纸片等。 实验内容一、葡萄球菌的检验 金黄色葡萄球菌能产生凝固酶,并使血浆纤维蛋白发生凝固,呈现阳性反应。 一)检样的采集与处理 取25 g检样加入 225 mL灭菌生理盐水内制成混悬液。 二)细菌的形态与培养观察 1吸取混悬液5mL接种7.5氯化钠肉场50mL,同时挑取混悬液接种血平板及 Baird-Parker氏培养基,
28、置36士1 温箱培养24h。如果血平板上菌落呈金黄、大而突起、圆形、不透明、表面光滑、周围有溶血圈。BairdParker氏培养基上为圆形、光滑、突起、湿润,颜色从灰色到黑色,边缘为淡色,周围为混浊带和透明带时,则初步判断为金黄色葡葡球菌。 2挑取可疑菌落进行革兰氏染色镜检,如见到革兰氏阳性球菌,呈葡萄状排列,无芽胞、无荚膜的细菌,则可认为是该菌。 三)血浆凝固酶试验 吸取1:4新鲜兔血浆0.5mL于小试管中,加入葡萄球菌肉场培养物0.5mL,振荡摇匀,放36土 l温箱或水浴内,每小时观察一次,观察6h,出现凝固即为阳性。同时取已知阳性和阴性菌株及肉汤作对照。二、溶血性链球菌 A群链球菌能产生
29、一种激活酶,此酶能激活血液中的溶纤维蛋白酶原(亦称胞浆原),使之变为有活性的溶纤维蛋白酶,以溶解纤维蛋白。产生链激酶的细菌除A群链球菌外,还有C和G等群键球菌。 一)检样的采集与处理 取25 g检样加入225mL灭菌生理盐水内制成混悬液。 二)细菌的形态与培养 1取混悬液接种于血平板上,并吸5mL接种于50mL葡萄糖肉浸液肉场内。如检样污染严重另取5mL接种匹克氏肉场,培养24h。挑取乙型溶血、圆形突起的细小菌落,接种血平板(纯精养)。如菌落呈灰白色、半透明或不透明,表面光滑、有浮光、圆形突起的细小菌落,周围有24mm无色透明的溶血环,可初步认为是溶血性链球菌。 2批取菌落作革兰氏染色镜检,如
30、见到革兰氏阳性球菌,不形成芽胞,无鞭毛,链状排列时可判定为该菌。 三)链激酶试验 1方法:取健康人血浆0.2mL(草酸钾0. 01g、加入5mL人血混匀,经离心沉淀吸取上清液,即为血浆),加入0.8mL灭菌生理盐水,混匀后,加入被检菌肉场培养液0.5mL,再加入0.25氯化钙溶液0.25mL,振荡后放入36水浴中。 2结果:10分钟内血浆先凝固,随后又溶化。血浆溶化的时间长短,视激活酶含量多少,链激酶愈多,溶化所需时间愈短,强阳性者可在20min内完全溶化凝固的血浆,24h仍不溶化者为阴性。 四、杆菌肽敏感试验 1.方法:挑取乙型溶血性链球菌浓菌液,涂布于血平板(肉浸液琼脂加入5%血液)上。用
31、灭菌镊子夹取每片含有0.04单位的杆菌肽纸片,放于上述平板上,放36士1培养1824h。 2结果如有抑菌环现即为阳性,可初步鉴定为A群链球菌,同时用已知阳性菌株作对照。思考题1 金黄色葡萄球菌的毒力主要表现在哪几个方面?2 链球菌与食物中毒的关系? 与肠球菌的比较? 实验六 魏氏梭菌检验目的与要求 1认识魏氏梭菌的形态及染色特性 2掌握魏氏梭菌检验方法。 实验器材及试剂 温箱、天平、灭菌试管、吸管、灭菌平皿、乳钵、剪子和镊子、稀释液、营养琼脂、显微镜、载波片、革兰氏染色液SPS琼脂、动力一硝酸盐培养基含铁牛奶培养基卵黄琼脂平板。 实验内容 一、形态及染色特性观察 本菌为革兰氏阳性的粗大杆菌,单
32、在或成双排列。芽胞呈卵圆形位于菌体中央或近端。在机体内形成荚膜,无鞭毛,不能运动。在陈旧的培养物中,菌体呈革兰氏阴性。 二、活菌计数培养 1按无菌操作称取食品检样25g( mL)放入均质器,加01蛋白胨水稀释剂225mL,低速搅动12分钟,使之均质化,做成1:10稀释。 2以上述1: 10稀释的均质液按lmL加01蛋白胨稀释剂9mL,做成10-210-6的系列稀释液。 3吸取各稀释液分别放于2个灭菌平皿内各lmL。每个平皿浇注约50的SPS琼脂 1520mL,仔细转动手血,使稀释液和琼脂充分混匀。 4上述琼脂平板凝固后,倒置于厌氧培养装置内36士 1培养24h。 5选取长有30300个黑色菌落
33、的平板,计数。 三、证实试验 1由平板上任取10个黑色菌落,分别接种FT培养基; 36土 1培养1824h。 2用上述培养液涂片,革兰氏染色镜检,检查培养液的纯净度。 3用接种环(针)穿刺接种动力一硝酸盐培养基, 36土 1培养24h,观察接种线的生长情况,判断有无动力。然后滴加 a一萘胺液和对氨基苯磺酸液各05mL,观察硝酸盐是否被还原。 4取生长旺盛的FT培养液lmL接种含铁牛奶培养基,于46水浴中培养,2h时后观察有无“暴烈发酵”现象。5h不发酵者为阴性。 5用接种环蘸取FT培养液点种卵黄琼脂平板(每个平板至少可点种10点),倒置厌氧培养装置内,35培养24h,观察接种点的乳白色混浊变化
34、,以判定有无卵磷脂酶产生。 四、菌落计算 根据黑色菌落的计数(5)和证实试验的结果,计算每g(mL)食品检样的含菌数。 例如,10-4稀释液的平板长有黑色菌落100个,而供作证实试验的10个菌落中有7个被确证为魏氏梭菌,则每g( mL)食品检样所含魏氏梭菌数: 1000.7104=7105 五、家兔“泡沫肝”试验:取待检菌1824h液体培养物0.5mL,经耳静脉注射家兔,10min后处死,置37温箱内58h,剖检。如有魏氏梭菌存在,则可见各脏器有许多气泡,尤以肝脏为甚,故称为“泡沫肝”或 “海绵肝”。用肝脏作涂片镜检和细菌分离培养。思考题1 魏氏梭菌的形态染色特性和培养特性?2 “暴烈发酵”的
35、原理是什么? 实验七 霉菌和酵母计数目的与要求 了解和掌握食品中霉菌和酵母计数的测定方法;了解霉菌直接镜检计数法。实验器材及试剂被检肉样,灭菌试管,灭菌吸管,灭菌平皿,天平,量筒,三角瓶,剪刀,镊子,载玻片,显微镜,香柏油,擦镜纸等。马铃薯-葡萄糖琼脂培养基(附加抗生素),孟加拉红培养基。实验内容一、琼脂倾注法1 以无菌操作称取检样25g(mL),放入含有225mL灭菌水的具玻塞锥形瓶中,振摇30min,即为1:10稀释的样品。2 用灭菌吸管吸取1:10样品液10mL,注入灭菌试管中,另用1mL一支灭菌吸管反复吹打50次,使霉菌孢子充分散开。3 吸取1:10样品液1mL注入含有9 mL灭菌水的
36、试管中,另换一支1 mL灭菌吸管吸吹5次,制成1:100样品液。4 按上述操作顺序做10倍系列稀释,每稀释一次,换用一支灭菌吸管,根据对样品污染程度的估计选择3个合适的稀释度,分别在进行稀释的同时吸取1mL样液置于灭菌平皿,每个稀释度做个平皿。然后将融化后保存在水浴中的琼脂培养基倾注入平皿,轻轻转动平皿使样液与培养基充分混匀,待琼脂凝固后倒置于温箱中,后开始观察,共观察。 计数方法:通常选择菌落数在10150之间的平皿进行计数,取同一稀释度的两个平皿菌落数的平均值乘以稀释倍数,即为每克(毫升)检样中所含霉菌和酵母数。稀释度选择和菌落报告方式可参照“菌落总数测定”。 报告:每克(毫升)食品中所含
37、霉菌和酵母数以cfug()表示。二、霉菌直接镜检计数法本方法适用于番茄酱罐头,常用郝氏霉菌计测法。检样的制备:取定量检样,加蒸馏水稀释至折光指数为1.34471.3460(即浓度为7.9%8.8%),备用。2 显微镜标准视野的校正:将显微镜按放大率90倍125倍调节标准视野,使其直径为1.382mm。3 涂片:洗净郝氏计测玻片,将制好的标准液用玻璃棒均匀地摊布于计测室,以备观察。4 观测:将制好的载玻片放于显微镜标准视野下进行霉菌观测,一般每一个检样观察50个视野,同一检样应由2人进行观察。5 结果与计算:在标准视野下,发现有霉菌菌丝且其长度超过标准视野直径(1.382mm)的1/6(测微器的一格)或3根菌丝总长度超过标准视野的1/6,即判为阳性,否则为阴性。按100个视野计,其中发现菌丝体阳性的视野数,即为霉菌的视野百分数。附:马铃薯葡萄糖琼脂(PDA): 马铃薯(去皮切块) 300 g 葡萄糖 20 g 琼脂 20 g 蒸馏水 1 000 mL 制法:将马铃薯去皮切块,加1 000 mL蒸馏水煮沸 10min20min。用纱布过滤,补加蒸馏水至1 000 mL。加入葡萄糖和琼脂,加热溶化,分装,121高压灭菌20 min。孟加拉红培养基: 蛋白胨 5 g 葡萄糖 10 g 磷酸氢二