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单击此处编辑母版标题样式,*,单击此处编辑母版文本样式,第二级,第三级,第四级,第五级,实验五,细胞染色体分析,(,秋水仙素裂解法,),一、原理,细胞处于分裂中期时染色体的长短和大小恰到好处,是研究染色体最好时期。,秋水仙素能破坏细胞纺锤体,并阻止其形成,使分裂的细胞停留在分裂中期。,秋水仙素使染色体收缩,形成清晰的轮廓。,低渗液处理可使细胞肿胀,染色体分散,空气干燥使细胞和染色体展平。,二、实验材料,1,、有丝分裂抑制剂,50,浓缩的秋水仙素(,20g/ml,):将,0.1mg,秋水仙素溶于,5ml,重蒸水中,分装后冰冻保存。,2,、细胞消化液:,0.25%,胰蛋白酶溶液,3,、低渗溶液:,0.075mol/L,KCl,4,、固定液:,甲醇,冰乙酸(,31,混合),5,、染液,(,Giemsa,吉姆萨染液,),Giemsa,染色液原液:,姬姆萨染料,0.6g,加于,50mL,甘油中,置,55,60,水浴,1.5h,2h,后,加甲醇,50mL,,静置,24h,以上,过滤即成,姬姆萨染色液原液,,装于棕色瓶内保存备用。,10%,Giemsa,染液:,取原液,1,份加入,9,份,0.01mol/L pH7.2 PBS,中混匀。,6,、细胞:,PK-15,细胞,7,、载玻片:,4,预冷,三、操作方法,秋水仙素处理,使细胞停止分裂,收集处理的细胞,取对数生长期的,PK-15,细胞一瓶,加入秋水仙素到培养液内使终浓度为,0.4g/ml,。,37,温箱中继续培养,2.5-3h,。,倾出秋水仙素处理液,用,0.25%,胰酶溶液消化细胞,细胞消化好后加入,DMEM,培养液将细胞吹下。,1600r/min,离心,10min,收集细胞。,低渗处理,使细胞肿胀,将细胞沉淀用,1ml 37,预温的,0.075mol/L,的,KCl,低渗溶液悬浮,混匀后置,37,温育,20-35min,。,加入新配制的固定液(甲醇,冰乙酸),1ml,,混匀,,1600r/min,离心,10min,,弃上清液。,再次加入固定液,1ml,,轻轻混匀,静置,20-30min,或,4,过夜,,1600r/min,离心,10min,,弃上清液。,固定,细胞重悬与浓度检测,每管加入,200,l,固定液,混匀。,吸取,50,l,细胞悬液于,4,预冷的干净载玻片上,轻吹液滴,使细胞悬液铺展于玻片上,室温下自然干燥。(在显微镜下观察,如果细胞均匀地铺开,细胞不重叠,则用同样细胞浓度制备细胞样品。否则要进一步稀释细胞悬液,以达到满意的铺片效果。),染色,C,D,用,10%,Giemsa,染液染,10-15min,。流水冲洗,自然干燥。,观察与计数,将载玻片置显微镜油镜下观察计数。,观察细胞的标准:,细胞完整,轮廓清晰,染色体分布在同一水平面上。,染色体形态和分布良好。,最好无重叠,即使有个别重叠,也要能明确辩认,以免差错。,所观察的细胞处于同一有丝分裂阶段,即染色体螺旋化程度或染色体长短大致一样。,在所观察的细胞周围,没有离散的单个或多个染色体存在,以免影响计数。,
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