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单击此处编辑母版标题样式,单击此处编辑母版文本样式,第二级,第三级,第四级,第五级,*,胚胎移植,第一节 概念、意义和发展简史,一,概念,胚胎移植,(,embryo transfer,)俗称“借腹怀胎”,是指于着床前自一母体(供体)收集胚胎,移植到另一母体(受体)内完成妊娠的过程。,在畜牧业上,供体一般为优秀母畜,而受体一般为品质较差些的母畜。,二,.,胚胎移植的意义,1,提高优秀种畜的繁殖率,这是胚胎移植之最显而易见的意义。,例如,像奶牛这样的单胎动物,一头优秀母牛一生中一般最多只能生,10,个牛犊。但若通过重复采卵进行胚胎移植,让生产性状较差的母牛代替优秀母牛怀孕,9,个月,就可以大大提高其繁殖率。而且,如果再用激素对供体进行超数排卵,使每次采集的胚胎数增加到,5-10,个,就又可以使优秀母畜的繁殖率增加,5-10,倍。,2,加速动物育种和品种改良进程,在发展中国家,通过利用当地母畜作为受体进行进口胚胎移植可迅速实现品种替代。在育种工作中,一头优秀种公畜所起的作用之所以远比一头优秀种母畜大,是因为一头公畜一生留下的后代数目要比一头母畜多得多。然而,由于胚胎移植可以使母畜的繁殖率提高许多倍,故也就提高了优秀母畜在育种工作中的作用。,3,促进动物的进出口,通过运输冷冻胚胎可以代替种畜的进出口活动。这样做可以大大节约购买、运输和检疫种畜所需的费用。此外,由外地引进胚胎而繁殖的家畜,因为是从小就在当地生长发育,故较容易适应本地区的环境,也可自养母得到一定的免疫能力。,4,某些感染性疾病的控制和不妊症的治疗,已经证明,胚胎移植是向,无特异性病原体,(,specific-pathogen-free,SPF,)猪群引入新鲜血液的一种安全手段。然而,其条件是,必须事先知道有关的特异性病原体不能够经胚胎或冲卵液传播。同样,在其他动物也有可能从感染某种疾病的母畜获得“干净”胚胎进行移植,以便拯救一些理想的基因。,在优秀母畜容易发生习惯性流产或难产,以及由于其他原因(如年老体弱)不宜负担妊娠过程的情况下,也可采用胚胎移植使其繁殖正常后代。,5,诱发肉牛(羊)怀双胎,可向已经配种的母畜排卵对侧的子宫角内移植一个胚胎,使配种后未受胎的母畜妊娠,而使本来已受胎的母畜怀双胎。这种方法既提高了供体母畜的繁殖力,也提高了受体母畜的繁殖力。但要注意,奶牛和种用肉牛的繁殖不能采用这种方法,因为“双生兼雌”(,free martinism,)现象会造成母犊的生殖机能异常。,6,作为研究手段,1,)繁殖和胚胎学研究,在绵羊,通过把一个品种的胚胎移植到另一个品种母体内的方法已经证明,出生重主要由羔羊的基因型决定,但也受受体品种和窝重的影响。被毛的特性是受妊娠期间母体环境的影响的。,通过从不育母羊收集胚胎并经形态鉴定后再移植到正常受体的方法,已经帮助确定了在受到诸如热应激、年龄、营养不良、泌乳以及孕激素处理等不利因素影响后所出现不育的原因。,在猪,通过胚胎移植实验证明,维持妊娠的最少胚胎数目是,2-4,个;黄体数目并不限制窝重。,在绵羊,一般产,1-2,个羔的品种在接受移植胚胎后,可维持更多的妊娠;说明是排卵数而不是子宫容量致使某些品种更高产。,进行绵羊品种间胚胎移植已经证明,妊娠期的长度是由胎儿控制的,而与母体无关。,2,)胚胎移植是胚胎工程各项技术的基础,体外受精、显微受精、动物克隆、转基因动物的产生等最终要通过胚胎移植技术来实现,三,.,胚胎移植技术的发展简史,3.1,早期阶段,1890-1900 W.Heape,将安哥拉兔和荷兰兔的受精卵分别移植到比利时兔的输卵管内,分别获得仔兔,2,只。,3.2,初级阶段,1900-1950,主要由英美科学家在家兔、绵羊、山羊小家畜方面研究,成功率,35%,左右。,3.3,发展阶段,1950-1970,日本首次在牛胚胎移植上成功,之后日、美采用非手术法移植成功。胚胎移植成功率达,70-80%,。,2025/12/14 周日,14,3.4,实用化初始阶段,1970-1980,加美开始成立牛胚胎移植公司,,1973,年牛冻胚移植成功(英)。,3.5,实用化研究阶段,1982-,目前 大规模胚胎移植、核移植、嵌合体、胚胎分割、性别鉴定、体外受精在英美日德广泛开展。克隆羊诞生。,第二节 胚胎移植的生理学基础与基本原则,一,.,胚胎移植的生理学基础,二,.,胚胎移植的基本原则,一,.,胚胎移植的生理学基础,成年母畜卵巢上存在数千到上万个卵泡,在外源激素作用下,每个发情期的卵泡发育和排卵数可达十数个;,每个发情周期生殖器官都有一个孕向发育;,早期胚胎处于游离状态;,胚胎发育不存在免疫问题;,胚胎发育到一定阶段会与子宫发生生理和组联系;,胚胎的遗传性不受受体的影响;,2.,胚胎移植的基本原则,种的一致性:供体和受体属于相同的种,动物生理状态的一致性:黄体期,解剖部位的一致性:子宫角或者输卵管,胚胎移植原则图解,第三节,胚胎移植的基本技术程序,一、供受体的选择与饲养管理,供,体,遗传品质优秀,繁殖性能良好,营养状况好,体格健壮,无疾病,受体,土种动物或者本地品种,体格接近,营养良好,无疾病,繁殖生理特点与供体相似,比如多周期发情,移植前,2,个月进行编号和补饲,二,.,供体超数排卵,1.,超数排卵的定义,超数排卵(,superovulation,)简称超排,是指通过给母畜注射适当的激素,维持更多卵泡正常发育而排除更多卵子的过程。,2.,超数排卵的作用,2.1,超排,作用一,,,也是其主要目的,,是增加动物的每次排卵数目,。,大家都知道,哺乳动物的卵巢在动物出生时就已经含有成千上万的卵母细胞,但在动物整个生命期间,经自然排卵所排除的卵母细胞数目则是相当少的。,排卵少有两个原因:,是哺乳动物,特别是家畜的妊娠期较长,排卵的机会很少;,是主要家畜都不是多胎动物,每次排卵排除的卵母细胞数只不过,1-2,个。单纯的胚胎移植只能解决第一个问题,使动物重复地发生暂时妊娠,而人为缩短动物的妊娠周期。而第二个问题的解决途径就是超数排卵。,2.2,超排,作用二,,是它可被用来,控制动物的排卵时间,。,为避免因卵子老化而降低繁殖率,必须准确掌握动物的排卵时间,适时配种。在自然状态下,动物的排卵时间是受促性腺激素(主要是,LH,)高峰控制的。由于此高峰是由成熟卵泡所分泌的动情素正反馈作用诱发的,故其出现的时间往往与动物的发情行为紧密相伴。这样,若能准确地检查出发情开始的时间,也就能正确地估计出排卵的时间。然而,由于实践中人们不可能那样频繁地对动物试情,故难以准确地估计排卵时间。因此,为了准确地把握排卵时间,人们往往用激素来控制或调整动物的排卵过程。,3.,超排方法,主要方法是给动物注射,LH,或,hCG,,模仿体内的,LH,高峰。但应注意,注射激素的时间要适当,必须在发情开始前不久、有成熟卵泡存在(发情前期)时进行注射。,由于一般难以准确确定发情前期,故多采用注射,PMSG,来调整发情周期(卵泡发育),而后再注射,LH,,使动物按时排卵。在大多数动物(如牛、羊和猪),都是于黄体退化末期和发情前期之间注射,PMSG,,而后间隔一定时间注射,LH,或,hCG,。,而在实验动物(小鼠、大鼠、仓鼠和兔),则可打乱情期注射,PMSG,,使其按照预定时间排卵。,1,)常用的激素,最初用于超排的垂体促性腺激素都是脑垂体组织的丙酮浸出物,但目前主要用孕马血清促性腺激素(,pregnant mare gonadotropin,PMSG,)和人绒毛膜促性腺激素(,human chorion gonadotropin,hCG,)等胎盘来源的激素,因为这些激素比脑垂体激素更容易获得,可从尿或血中大量提取。,PMSG,主要表现为,FSH,活性,而,hCG,则主要起,LH,样的作用。,PMSG,由滋养层细胞侵入子宫内膜基质中形成的子宫内膜杯细胞分泌产生,大约在孕马妊娠,60-90,天时效价最高,一般认为其作用是诱发形成附属黄体或使卵泡黄体化而维持妊娠。,PMSG,在血液中的半衰期要比脑垂体促性腺激素长得多,在,40-125,小时。,HCG,由人早期胚胎的滋养层产生,排卵后,8-9,天就可自母尿中检出,其作用与延长黄体寿命和维持妊娠有关。,目前多用于实验动物的另一种激素是人绝经促性腺激素(,human menopausal gonadotropin,hMG,),是从绝经妇女尿中提取的,主要表现为,FSH,活性。该激素分泌的机理是因闭经妇女卵巢内没有成熟卵泡,动情素反馈作用不明显而由脑垂体释放出来的。,2,)常见动物的常用超排方案,(,1,)小鼠 于发情周期的任意时间开始腹腔注射,PMSG 5-10IU,,,48,小时后注射,hCG5-10IU,。大约在注射,hCG,后,12-13,小时排卵。,(,2,)仓鼠 腹腔注射,PMSG 25IU,,,72,小时后注射,hCG 40IU,,一般于注射,hCG,后者,17,小时排卵。,(,3,)家兔 每天皮下注射,FSH 1mg,,连续注射,3,天。于最后一次注射,FSH,之后,24,小时注射,LH 2.5mg,。或者,先注射,PMSG 50IU,,,72,小时后再注射,hCG 50IU,。一般于注射,LH,(,hCG,)后,13,小时排卵。,(,4,)牛 于发情第,10-13,天开始一次肌肉或皮下注射,PMSG 2000-3000IU,,或者每天两次肌肉或皮下注射,FSH-P,(猪脑垂体,FSH,),连续注射,3-4,天,总剂量,28-50mg,。于开始注射促性腺激素后,48,小时,注射前列腺素,F2,或类似物来溶解黄体。母牛一般于注射,PG,后,36-48,小时发情。,(,5,)绵羊和山羊 于发情开始后第,13,(绵羊)或,16,(山羊)天一次肌肉或皮下注射,PMSG 1000-2000 IU,,或者每天肌肉注射,FSH-P,,连续注射,4,天,总剂量为,18-24mg,。于开始注射促性腺激素后,36-48,小时,一次肌肉注射,PGF2,或类似物。母羊一般于注射,PG,后,24-36,小时发情。发情开始时一次静脉注射,hCG 1000,单位。,(,6,)猪 于发情第,13,、,14,或,15,天肌肉注射氯前列烯醇,100g,,,8,小时后再注射同样剂量的氯前列烯醇。在第一次注射氯前列烯醇后,24,小时,肌肉注射,PMSG 750-1000IU,。,72,小时后,肌肉注射,500-1000IU hCG,。一般于注射,hCG,后,38-50,小时排卵。,几种动物注射,LH,(,hCG,)后的排卵时间,动物,注射,LH,(,hCG,)的方法,排卵时间(注射后,h,),小鼠,注射,5-10IU PMSG,后,48,小时注射,5-10IU,的,hCG,12-13,仓鼠,注射,25IU PMSG,后,72,小时注射,40IU hCG,17,兔,注射,FSH,(,PMSG,)后,72,小时注射,2.5mgLH,11-13,牛,停止注射孕激素后注射,500IU hCG,40,绵羊,注射孕酮和,PMSG,后注射,1000IU hCG,20-28,猪,于发情前期(根据阴门肿胀和发情行为判定)注射,500IU hCG,40,3,)影响超排效果的因素,超数排卵的效果受动物的遗传特性、年龄、营养状况、发情周期的阶段、季节及激素的批号等多种因素的影响。,所以,不同品种和不同个体的超排反应差异很大,至今仍是胚胎移植中有待研究改进的一个重要问题。,三供体母畜的配种,超排母畜表现发情后,选用优秀种公畜的精液进行人工授精或实施本交配种。由于超排母畜往往排卵很多,故应选择活力高、密度大的精液进行多次(,2-3,次)输精或配种,每次间隔,8-10,小时。,四胚胎的回收,胚胎的回收就是利用冲卵液将胚胎由雌性生殖道冲洗出来的过程。胚胎的回收用手术法,也可采用非手术法。,前者适用于各种家畜,后者仅用于牛、马等大家畜,而且只能在胚胎进入子宫角以后进行。,(一)回收率,要取得较高的获胚率,很重要的一点就是要准确掌握动物的排卵时间、胚胎发育阶段和在生殖道内运行的速度等情况,以便采用适当的收集方法。,收集胚胎的时间最早也应在发生第一次卵裂之后,这样有利于判断卵子是否受精。,通常是在配种后,3-8,天,发育到,4-,或,8-,细胞期以上为宜。,(二)回收时间,有关动物的排卵时间和胚胎发育速度,胚胎发育,阶段,排卵后天数,牛,马,绵羊,山羊,猪,兔,排卵(发情开始后,h,),1-,细胞,2-,细胞,4-,细胞,8-,细胞,进子宫,早期桑椹胚,致密桑椹胚,早期胚泡,胚泡,扩展胚泡,孵化胚泡,28-30,0-1,0-2,1-2,2-4,3-4,3-5,4-6,6-7,6-8,7-9,8-10,*,0-1,0-2,1-2,2-3,4-6,2-4,4-5,5-6,6-7,7-8,8-9,24-30,0-1,0-1,1-2,2-3,2-4,2-4,4-5,5-6,6-7,7-8,8-9,24-30,0-1,0-1,1-2,2-3,-,2-4,4-5,5-6,6-7,7-8,7-9,35-45,0-1,0-1,2-3,3-4,2-2.5,3-4,3-5,4-5,5-6,5-7,6-8,*,0-1,0-1,1,1,2.5-4,2,2,3,3,4-6,7,1,手术法收集胚胎,(三)回收方法,一般在腹中线开口,暴露出输卵管和子宫。根据要取胚胎的发育时期和在生殖道内的位置,决定冲洗子宫还是输卵管。,1,)如果胚胎处于输卵管内,就要冲洗输卵管;,2,)如果胚胎早以进入子宫,则必须冲洗子宫。,冲洗输卵管的方法,逆冲法,,即用注射器的钝针头插入子宫角尖端,注入冲卵液,同时在输卵管伞端插入一导管,接取冲卵液。,这种方法适用于牛、羊和兔等动物,因为它们的宫,-,管结合部没有阻止液体倒流的瓣状结构。,是正冲法,,即由伞部注入冲卵液,并在子宫角上端插管收集冲卵液。,猪和马的宫,-,管结合部有瓣,倒冲时冲卵液不易通过,只能采用正冲法。,冲洗子宫的方法,用肠钳子夹住子宫角基部后,自子宫角尖端注入冲卵液并在子宫角基部插入导管,收集冲卵液。这种方法适用于各种家畜,冲卵液的用量依动物子宫角大小不同而异。,注意事项:,手术冲卵操作应尽量轻微、迅速,防止伤口、生殖器官及冲卵液的污染。,缺点:,1,)费时。,2,)动物需要麻醉或者安定处理。,3,)易发生生殖道粘连。,2,非手术法收集胚胎,优点,在牛和马等大动物,更简便易行。,对动物(特别是生殖道)伤害较小。,可以重复进行。,牛的非手术冲卵多采用二路式导管冲卵器(,two-way catheter,)。,它由内外两个橡胶管嵌套起来组成。内管为冲卵液的通路,外端为“,Y”,分叉的,一枝为液体输入管,另一枝为液体收集管;外管为气体通路,前端连接一个气囊。,供体牛一般经硬膜外注射,lidocaine,麻醉后进行冲卵。,牛、羊的冲胚器械,滤胚器,羊采胚用具,山羊采胚准备,3,冲卵液,最常用的冲卵液是一种加强的磷酸缓冲液(,enriched phosphate-buffered Saline,也叫,Whittinghams,PB1,)。,收集胚胎用的冲卵液可不含牛血清白蛋白,但在检查和保存胚胎时必须加入,或者以灭活的胎牛血清代之。,培养液中的血清含量一般为,5-20%,。,五胚胎的检出和鉴定,把收集到的冲卵液在集卵杯内静止,10,分钟,待胚胎沉淀后移去上层液并把含有胚胎的液体倒入平皿内,放实体显微镜下检查。,用移卵管把找到的胚胎转移到新鲜的,PBS,液滴内暂存。,(一)胚胎和冲卵液的分离,胚胎移植,(13),胚胎移植,(14),在完成胚胎检出工作后,在镜下观察,判定胚胎质量。,正常发育胚胎的标志是:,(,1,)胚胎整体外观在中等以上,即卵裂球(细胞)大小一致,胞质内颗粒均匀,排列紧密、对称且没有脱落的,透明带没有变形现象;,(二)胚胎的质量判定,(,2,)发育速度与胚胎日龄相一致,一般把这样正常发育的胚胎判定为,A,级,胚胎。,把那些整体外观在中等以下,即卵裂球大小不一,许多细胞脱落,有明显的质膜破裂和发育速度明显滞后于胚龄的胚胎,判定为,C,级,。,介于,A,级与,C,级之间的胚胎,判定为,B,级,。,绵羊桑椹胚,一般来说,在进行胚胎检查等操作时,室温一般不应低于,25,,最好能保持在,37,。,经质量检查后的胚胎可装入移植管内立即进行鲜胚移植,也可进行冷冻长期保存。,六,.,受体的同期发情,对母畜进行同期发情一般采取两种手段:,一种是延长黄体期:最常用的方法是进行孕激素处理。常用的有孕酮、甲孕酮、甲地孕酮、炔诺酮、氯地孕酮等。处理方法是皮下埋植、阴道栓、口服和肌肉注射等。,另一种方法是缩短黄体期的方法有,注射促性腺激素注射促性腺激素释放激素注射前列腺素等。,同期发情的方法,1.,孕激素阴道栓法 孕激素可通过口服、注射、皮下埋植和阴道放置孕激素缓慢释放装置等方法。皮下埋植或阴道放置缓慢释放装置使用方便易行、效果可靠、成本低廉,尤其是阴道栓法。,2.,前列腺素及其类似物处理法 对有功能性黄体的母畜于注射后,48,96h,内发情:一次,PG,法、二次,PG,法,七胚胎移植方法,1,手术法,适合小动物。,2,非手术法,适合大家畜。,移植方法分类,动物的全身麻醉:,1,小白鼠 戊巴比妥钠法,以,PBS,把戊巴比妥钠以,2mg/ml,。按体重,0.1ml/10mg,腹腔注射。,2,兔 体重在,3Kg,以上的成年家兔,用戊巴比妥钠以,50mg/kg,耳静脉注射。,3,羊 用,40mg,水合氯醛溶于,100ml,蒸馏水灭菌后,作颈静脉注射(体重,40kg,以上)。,4,猪 耳静脉注射,1g,苏里塔尔钠(,surital sodium,)或戊硫代巴比妥酸钠(,thiopental sodium,)。母猪背朝下放在手术台上,自鼻孔插入麻醉导管,以便吸入,O2,与麻醉剂(氟烷(,halothane,)或二氟二氯乙基甲醚。,小鼠胚胎移植法,1,、假孕受体的准备,进行小鼠胚胎移植之前应该先准备好假孕受体。假孕受体是由结扎公鼠与雌鼠交配,见到阴道栓雌鼠。,1,),公鼠输精管的结扎,合适的公鼠龄在,6,周以上。,操作程序,麻醉 称重、麻醉,腹部消毒 用,70,的酒精消毒手术部位,剪毛 如鼠毛过多,可沿腹中线剪毛。,切开皮肤 用钝镊子夹起皮肤,使之离开腹壁,沿腹中线适当位置开口。注意要保持剪刀向上抬起。,切开体壁 用小镊子夹住体壁使之离开肠管,再用眼科剪刀再腹中线剪开,1,厘米长的切口。不能伤及肠管。,找到睾丸的白色脂肪垫(体)把一侧的睾丸从阴囊推入腹腔,用小镊子夹住腹壁切开一缘,找到附于睾丸的白色脂肪垫,取出睾丸 用钝镊子夹住脂肪体,将其轻轻拉出,随之睾丸和输精管也被拉出。因睾丸表面光滑,只能通过操作脂肪体来移动和定位。,结扎输精管 辨认附睾,将附睾下方的输精管夹起。用缝合线穿过结扎。结扎两端后从中间剪断。也可以用灼热的镊子将输精管完全断开。或者剪断一段输精管。,复位 结扎后,拉动脂肪体,使之睾丸和输精管回到腹腔。结扎另外一侧输精管。,缝合和术后处理 手术法缝合刀口。撒适量抗生素。提高环境温度术后,1,2,周后才能使用。,2,假孕母鼠准备,手术后的公鼠与母鼠合笼。验证其不育后,在根据其所移植的胚胎时期,准备适当的受体母鼠。,小鼠胚胎的子宫移植,用于移植桑椹胚和囊胚。,1,)暴露子宫,麻醉、消毒 根据体重,注射适当的麻醉药。待动物进入麻醉状态后,用,70,酒精在其背部消毒,如毛太长就先剪毛。,切开皮肤 在鼠背部近中线处,在最后肋骨水平,切开长约一厘米的纵向口。再用,70%,酒精擦拭开口,除去带入的毛。,打开体壁 拉动皮肤开口,可见其下的白色脂肪体。用小剪子在脂肪体上方开口。开口时,注意不要伤及较大的静脉。,拉出子宫 用钝镊子夹住脂肪体,从切口拉出。卵巢、输卵管、子宫被相继拉出,使卵巢和输卵管留在外面。并小心移入实体镜下。,2,),准备胚胎移植,准备好移植的胚胎、制作移卵管、吸入胚胎、移卵管的固定。,3,),胚胎移植,在子宫适当位置扎,1,小孔。用钝镊子夹住子宫上端,用缝合针或者针头在子宫下部扎,1,小孔。保证针孔进入子宫腔,可以轻轻抽出。,移入胚胎。将移卵针沿小孔轻轻插入,5mm,深,轻轻吹细管,将胚胎吹入子宫。,子宫复位、缝合 用镊子夹住脂肪体将子宫、卵巢、输卵管推回腹腔、缝合。,(三)家畜的胚胎移植,1,非手术法,大家畜牛、马。,1,)将鉴定后的胚胎装入细管,2,),将细管装入移植枪,山羊的胚胎移植,移植方法(手术法),将母羊仰卧保定,在乳房一侧切开腹壁,将子宫角和输卵管拉出于切口外,如果是从供体输卵管得到的胚胎,将装有胚胎的细吸管插入受体羊输卵管伞口内,缓缓注入到输卵管内。,如果是从供体羊子宫角尖端取得的胚胎,需用,个钝针头在距子宫角尖端,12,厘米处刺一小洞,然后用注射器连接装有胚胎的细导管或弯形针头插入子宫腔中,轻缓地将含有胚胎的培养液注入之后,迅速地使子宫、输卵管复位,再行缝合腹壁。,山羊胚胎移植手术操作,移植移卵操作绵羊胚胎,(,四)操作后供体和受体的观察和管理,第三节,胚胎移植的历史和目前研究概况,目前,在奶牛和肉牛,胚胎移植已经商业化,每年都出生大量胚胎移植犊牛。我们在泰康县农户家里进行冻胚移植,产犊率可达到,40%,;在松花江奶牛场,鲜胚移植妊娠率在,75%,,冻胚移植成功率达到,50%,。,国内外胚胎移植及主要相关生物技术的研究成果时间表,技术名称,国内,国际,时间差,牛超数排卵,1978,中科院遗传所和上海市奶牛公司,1940 Casida,38,年,牛非手术冲胚,1978,中科院遗传所和上海市奶牛公司,1972 Sugie,6,年,胚胎程序化冷冻,1982,中科院遗传所和上海市奶牛公司,1972 Whittingham,10,年,胚胎玻璃化冷冻,1993,朱士恩,1985 Rall,8,年,胚胎分割,1987,窦忠英,1981 Willadsen,6,年,胚胎嵌合体,1989,丛笑倩,1984 Bradley,5,年,牛体外受精,1989,旭日干,1978 Brackett,11,年,PCR,胚胎性别鉴定,1992,曾溢滔等,1990 Herr,2,年,牛活体采卵,1999,刘云海,1982 Sirard,17,年,体细胞克隆,2000,张涌,1997 Wilmut,3,年,牛胚胎移植主要专项技术国内外水平比较,技术名称,美国、加拿大,国内,超数排卵获可用胚,*,5.56.5,枚,56,枚,鲜常规胚胎移植妊娠率,*,55%65%,50%60%,冷冻常规胚胎移植妊娠率,*,50%60%,40%50%,PCR,性别鉴定准确率,98%,2%,98%,2%,性控胚胎雌性率,85%95%,85%95%,取样后鲜胚移植妊娠率,*,55%65%,50%55%,取样后冻胚移植妊娠率,*,55%65%,40%50%,性控胚胎妊娠率,*,55%65%,40%50%,*,饲养管理水平对技术指标影响较大,
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