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重组乙型肝炎疫苗(酿酒酵母).doc

1、重组乙型肝炎疫苗(酿酒酵母) Chongzu Yixing Ganyan Yimiao (Niangjiu Jiaomu) Hepatitis B Vaccine Made by Recombinant DNA Techniques in Saccharomyces CerevisciaeYeast 本品系由重组酵母菌表达的乙型肝炎(简称乙肝)病毒表面抗原(HBsAg)经纯化、加入铝佐剂制成,用于预防乙型肝炎。 1 基本要求 生产和检定用设施、原材料及辅料、水、器具、动物等应符合“凡例”有关要求。 2 制造 2.1 生产用菌种 2.1.1 名称及来源 生产用菌种为美国

2、默克公司以DNA重组技术构建的表达HBsAg的重组酿酒酵母原始菌种,菌种号为2150-2-3(pHBS56-GAP347/33)。 2.1.2 种子批的建立 应符合“生物制品生产和检定用菌毒种管理规程”规定。 由美国默克公司提供的菌种经扩增1代为主种子批,主种子批扩增1代为工作种子批。 2.1.3 种子批检定 主种子批及工作种子批应进行以下项目的全面检定。 2.1.3.1 培养物纯度 培养物接种于哥伦比亚血琼脂平板和酶化大豆蛋白琼脂平板,分别于20~25℃和30~35℃培养5~7天,应无细菌和其他真菌被检出。 2.1.3.2 HBSAg基因序列测定 应与美国默克公司提供菌种

3、的HBSAg基因序列保持一致。 2.1.3.3 质粒保有率 采用平板复制法检测。将菌种接种到复合培养基上培养,得到的单个克隆菌落转移到限制性培养基上培养,计算质粒保有率,应不低于95%。 PR%= [A /(A+L)] ×100 式中 PR为质粒保有率,(%); A为在含腺嘌呤的基本培养基上生长的菌落数,CFU/皿; A+L为在含腺嘌呤和亮氨酸的基本培养基上生长的菌落数,CFU/皿 2.1.3.4 活菌率 采用血细胞计数仪器, 分别计算每毫升培养物中总菌数和活菌数,活菌率应不低于50% 活菌率=活菌数/总菌数×100% 2.1.3.5抗原表达率

4、取种子批菌种扩增培养, 采用适宜的方法将培养后的细胞破碎,分别用Lowry法测定破碎液的蛋白质含量, 并采用酶联免疫法或其他适宜方法测定HBsAg含量。抗原表达率应不低于0.5% 抗原表达率=抗原含量/蛋白含量×100% 2.1.4 菌种保存 主种子批和工作种子批菌种应于液氮中保存,工作种子批菌种保存于-70℃应不超过6个月。 2.2 原液 2.2.1 发酵 取工作种子批菌种,于适宜温度和时间经锥形瓶、种子罐和生产罐进行三级发酵,收获的酵母菌应冷冻保存。 2.2.2 培养物检定 2.2.2.1 培养物纯度 同2.1.3.1项。 2.2.2.2 质粒保有率 平板复制法测

5、试的质粒保有率应不低于90%。 2.2.3 培养物保存 于-60℃以下保存不超过6个月。 2.2.4 纯化 用细胞破碎器破碎酵母菌,除去细胞碎片,以硅胶吸附法粗提HBsAg,疏水层析法纯化HBsAg,经硫氰酸盐处理后,稀释和除菌过滤后即为原液。 2.2.4 原液检定 按3.1项进行。 2.2.5 原液保存 于2-8℃保存不超过3个月。 2. 3 半成品 2.3.1甲醛处理 原液中按终浓度为100μg/ml加入甲醛,于37℃保温适宜时间。 2.3.2 铝吸附 每微克蛋白和铝剂按一定比例置2-8℃吸附适宜的时间,用无菌生理氯化钠溶液洗涤去上清后再恢复至原体积, 即为铝吸附

6、产物。 2.3.3 半成品配制 蛋白质浓度为20.0~27.0 µg/ml的铝吸附后原液可与铝佐剂等量混合后,即为半成品。 2. 3. 3 半成品检定 按3.2项进行。 2. 4 成品 2.4.1 分批 应符合“生物制品分批规程”规定。 2.4.2 分装 应符合“生物制品分装和冻干规程”规定。 2.4.3规格 每瓶0.5 ml、1.0 ml。每1次人用剂量0.5 ml(含HBsAg 5 µg或10µg)或1.0 ml(含HBsAg 10 µg)。 2.4.4 包装 应符合“生物制品包装规程”规定。 3 检定 3.1 原液检定 3.1.1无菌检查 依法检查(附

7、录XⅡ A), 应符合规定。 3.1.2 蛋白质浓度 应为20.0~27.0 µg/ml(附录VI B二法)。 3.1.3 特异蛋白带 依法测定(附录IV C),采用非还原性SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳,还原性电泳,上样量为0.5μg,银染法染色, 分离胶浓度为15%,上样量为0.5μg,银染法染色应有分子量为20~25kD蛋白带,可有低于24kD蛋白带及HBsAg二聚体蛋白带。 3.1.4 N末端氨基酸序列测定(每年至少进行一次该项测定) N末端氨基酸序列应为……………. 3.1.5 纯度 采用免疫印迹法测定(附录 VIII A),所测供试品不得出现国家药品检定机构认可

8、以外的酵母杂蛋白;采用高效液相色谱法(附录III B),亲水硅胶高效体积排阻色谱柱;排阻极限1000kD;孔径45nm, 流动相:pH7.0含0.05%叠氮钠,0.1%SDS的磷酸盐缓冲液;上样量:100μl;检测波长:280nm。HBsAg含量应不低于99.0%,或杂蛋白应不高于1.0%。 3.1.6 细菌内毒素检查 应小于10EU/ml(附录XⅡ E 凝胶限量试验)。 3.2 半成品检定 3.2.1 吸附完全性 取供试品于6500g离心5分钟取上清,依法测定(附录 X A)参考品、供试品及其上清中HBsAg含量。以参考品HBsAg含量的对数对应其吸光度值(或响应值)对数进行直线回

9、归,相关系数应不低于0.99,将供试品及其上清的吸光度值(或响应值)代入回归方程,计算其HBsAg含量,再按下式计算吸附率,应不低于95%。 Cs P%=100 - ───×100 Ct 式中 P为吸附率(%); Cs为供试品上清的HBsAg含量(µg/ml); Ct为供试品的HBsAg含量(µg/ml) 3.2.2 化学检定 3.2.2.1硫氰酸盐含量 将供试品于6500 g 离心5分钟,取上清。分别取含量为1.0、2.5、5.0、10.0 µg/ml

10、的硫氰酸盐标准溶液、供试品上清、生理氯化钠溶液各5.0 ml于试管中,每一供试品取2份,在每管中依次加入硼酸盐缓冲液(pH9.2)0.5 ml,2.25 %氯胺T-生理氯化钠溶液0.5 ml,50 %吡啶溶液(用生理氯化钠溶液配制)1.0 ml,每加一种溶液后立即混匀,加完上述溶液后静置10分钟,以生理氯化钠溶液为空白对照,在波长415 nm处测定各管吸光度。以标准溶液中硫氰酸盐的含量对应其吸光度均值进行直线回归,计算相关系数,应不低于0.99,将供试品上清的吸光度均值代入回归方程,计算硫氰酸盐含量,应小于1.0 µg/ml。 3.2.2.2 Triton X-100含量 将供试品于650

11、0 g 离心5分钟,取上清。分别取含量为5、10、20、30、40 µg/ml的Triton X-100标准溶液、供试品上清、生理氯化钠溶液各2.0 ml于试管中,每一供试品取2份,每管分别加入5%(V/V)苯酚溶液1.0 ml,迅速振荡,室温放置15分钟。以生理氯化钠溶液为空白对照,在波长340 nm处测定各管吸光度。以标准溶液中Triton X-100的含量对应其吸光度均值进行直线回归,计算相关系数,应不低于0.99,将供试品上清的吸光度均值代入回归方程,计算Triton X-100含量,应小于15 µg/ml。 3.2.2.3 pH值 应为5.5~7.2(附录V A)。 3.2.2

12、4游离甲醛含量 应小于20 µg/ml(附录VI L)。 3.2.2.5 铝含量 应为0.35~0.62 mg/ml(附录VⅡF)。 3.2.2.6 渗透压摩尔浓度 应为 280±65 mOsmol/L(附录 V H)。 3.2. 3无菌检查 依法检查(附录XⅡ A),应符合规定。 3.2.4 细菌内毒素检查 应小于5 EU/ml(附录XⅡ E 凝胶限量试验)。 3.3 成品检定 3.3.1 鉴别试验 采用酶联免疫法检测,应证明为HBsAg。 3.3.2 外观 应为乳白色混悬液体,可因沉淀而分层,易摇散,不应有摇不散的块状物。 3.3.3 装量 按附录I A

13、 装量项进行, 应不低于标示量。 3.3.4 化学检查 3.3.4.1 pH值 应为5.5~7.2(附录V A) 3.3.4.2 铝含量 应为0.35~0.62 mg/ml(附录VⅡF)。 3.3.5 体外相对效力测定 应不低于0.5(附录X A)。 3.3.6 无菌检查 依法检查(附录XⅡ A),应符合规定。 3.3.7 异常毒性检查 依法检查(附录XⅡ F),应符合规定。 3.3.8 细菌内毒素检查 应小于5 EU/ml(附录XⅡ E 凝胶限量试验)。 4 保存、运输及有效期 于2~8℃避光保存和运输。自生产之日起, 有效期为36个月。 5 说明书

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