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植物氨态氮测定.doc

1、植物组织氨基酸含量得测定(改良得茚三酮比色法) 一、实验原理   植物吸收得氮主要就就是氨态氮与硝态氮,后者经过还原过程形成氨,前者经同化后形成谷氨酰胺与谷氨酸,然后形成其她氨基酸与蛋白质。测定氨态氮得方法有多种,本实验为改良得茚三酮比色法。 α-氨基酸与水合茚三酮溶液一起加热,经氧化脱氨变成相应得α-酮酸,酮酸进一步脱羧变成醛,水合茚三酮则被还原,在弱酸环境中,还原型茚三酮,氨与另一分子水合茚三酮反应,缩合生成蓝紫色物质。根据蓝紫色得深浅,在580nm波长下测定吸光值。本实验中在茚三酮试剂中添加乙二醇并补加正丁醇与丙醇,可以克服茚三酮得不稳定性。 二、仪器设备 研钵、烧

2、杯、漏斗、量筒、具塞试管、三角瓶、容量瓶、移液管、天平、沸水浴锅、可见分光光度计 三、试剂 1、 10%醋酸(100mL) 2、 1% 抗坏血酸(100mL) 3、 5μg/mL 亮氨酸或丙氨酸溶液(0.005g定容至1000mL) 4、 pH5、4醋酸缓冲液:8、8mL 0、2mol/L 醋酸(冰醋酸11、55mL稀释至1000mL)加41、2mL 0、2mol/L醋酸钠(醋酸钠16.4g或三水醋酸钠27.2g 配成1000mL)。 5、 水合茚三酮试剂:1.1g茚三酮放到烧杯中,加入15mL正丙醇,摇匀,溶解,后加入30ml正丁醇与60ml乙二醇,混匀,再加9mL pH5、4醋

3、酸缓冲液,混匀。保存于棕色瓶中,冰箱保存,适用期限10天。 四、操作步骤 1、  标准曲线得绘制 以下表所示量从5μg/mL 亮氨酸或丙氨酸溶液中分别取溶液并在每个试管中加蒸馏水至2mL,对照仅加2mL 蒸馏水,后在各试管中加入3mL 水合茚三酮试剂与0、1mL 1%抗坏血酸,摇匀。盖上试管塞,于沸水中加热15分钟,取出后搅拌冷却15分钟。冷却后得有色溶液中加无水乙醇至10mL,在波长580nm 处测吸光值,以氨态氮浓度(μg/mL)为横坐标,吸光值为纵坐标绘制标准曲线。 试管号    1     2 3      4    5

4、    6     7 试剂(mL)   0      0、2   0、4    0、8     1、2    1、6   1、8 氨态氮浓度    0       0、5   1       2   3      4      5 (μg/mL) 2. 称取0.5g 新鲜植物材料,放入研钵中,加入5mL 10%醋酸,研磨后以蒸馏水稀释至100mL ,混匀,通过滤纸过滤,弃去最先滤下得一部分滤液后过滤到100mL三角瓶中。 3. 从剩下得滤液中取2mL 放入试管中,加3mL 水合茚三酮试剂与

5、0、1mL 1%抗坏血酸,摇匀。盖上试管塞,于沸水中加热15分钟。同时将盛有对照溶液(提取液用蒸馏水代替)得试管加热。 4. 取出后搅拌冷却15分钟。加热形成得红色茚三酮试剂被氧氧化而褪色,茚三酮与氨基酸形成得蓝紫色反应产物仍然存留并变得更加鲜明。冷却后得有色溶液中加无水乙醇至10mL ,混匀。在波长580nm 处测光密度值,根据标准曲线查得数值代入以下公式计算氨态氮含量。 (10-6×100×C) X(100g 样品中得氨态氮毫克数)=             ×100    n C:比色液中氨态氮浓度(μg/mL) n:样品重量(g)

6、 100:分析溶液总体积(mL) 5、实验结果与分析 氨态氮含量标曲: 序号 1 2 3 4 5 6 7 氨态氮浓度 0 0、5 1 2 3 4 5 OD值 0、152 0、237 0、318 0、415 0、484 0、607 0、718 方程:y=0、1073X+0、181 测定样品液得OD580值为:0、939   标曲查得:0、 939=0、1073C-0、181   C=10、38μg/mL (0、1×10×10、38μg/mL) X(100g 样品中得氨态氮毫克数)=             ×100=10、38mg/100g (2×0、5) 故:该植物中氨态氮得含量为10、38mg/100g。

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