多孔建筑涂层抗病毒测试方法研究.pdf

引言建筑内墙涂料对提高居住舒适性及美化室内环境具有重要作用。功能化建筑内墙涂层对控制室内建筑环境有一定的帮助作用，如具有甲醛及 VOC 净化功能的涂料和具有抗菌功能的建筑涂层1-2。由于新冠疫情的爆发，人们对于建筑涂料的功能又有了新的需求，抗病毒涂料成为研究和关注重点2-3，也推动了抗病毒涂料的快速发展。在公共场所，尤其是儿童娱乐场所（如幼儿园、儿童游乐场等）、养老机构和医院等特殊人群聚集场所，人与建筑室内涂层之间的接触不可避免，所以研究抗病毒涂层具有重要的意义。抗菌涂料的测试方法已经发展了很多年，标准体系已经相对成熟，而抗病毒涂料相关标准的发展相对滞后，我国抗病毒涂料相关标准主要有中国涂料工业协会发布的团体标准T/CNCIA010142020 抗菌及抗病毒涂料 和T/CNCIA030022020 涂料（漆膜）抗病毒性能测试方法，广东省涂料行业协会发布的团体标准T/GDTL 0112020 抗菌、抗病毒涂料，所用病毒均为人类病毒，过程操作困难且对测试条件要求较高。并且未针对涂层孔隙对测试方法进行区分，涂层孔隙的存在对病毒具有吸附作用，抗病毒测试方法的不同可能影响病毒多孔建筑涂层抗病毒测试方法研究朱常才，刘蕊蕊，冀志江，赵春艳，王静，解帅，郭春红（中国建筑材料科学研究总院有限公司 绿色建筑材料国家重点实验室，北京100024）摘要：多孔建筑涂层由于多孔性的特点对病毒具有吸附作用，从而赋予涂层抗病毒活性，而多孔涂层的抗病毒活性可能受测试中多种因素影响。选用多孔硅藻土制备多孔建筑涂层，以噬菌体 MS2 和 渍A039 作为非包膜病毒模型测试多孔涂层的抗病毒活性，研究抗病毒测试中病毒储备液种类、病毒悬液滴加量及其浓度对抗病毒测试结果的影响。结果表明，应尽可能选择与稀释液有机组成相同的储备液；涂层表面悬液滴加量应视样品大小而定；涂层表面滴加病毒悬液浓度以 1伊107PFU/mL 为宜。分析了多孔建筑涂层抗病毒测试中最佳测试条件，提出测试中需要注意的问题，为多孔涂层抗病毒测试和标准制定提供参考。关键词：多孔建筑涂层；抗病毒；储备液；病毒浓度；滴加量中图分类号：TU56+1.6文献标识码：A文章编号：1001-702X（2023）08-0001-06Study on antiviral test method of porous architectural coatingZHU Changcai，LIU Ruirui，JI Zhijiang，ZHAO Chunyan，WANG Jing，XIE Shuai，GUO Chunhong（State Key Laboratory of Green Building Materials，China Building Materials Acadamy，Beijing 100024，China）Abstract：Porous architectural coatings possess adsorption properties due to their porous nature，thereby imparting antiviral ac原tivity to the coatings.Consequently，the antiviral activity of porous coatings may be influenced by various factors during antiviraltesting.Porous architectural coatings were prepared using porous diatomite，and the antiviral activity of the coatings was tested usingbacteriophage MS2 and 渍A039 as non-enveloped virus models.The study investigated the effects of virus stock solution types，virussuspension droplet volume，and concentration of the droplet-added virus suspension on the antiviral test results.The results showthat the stock solution with the same organic composition as the diluent should be selected as far as possible in the test.The vol原ume of virus suspension droplets added to the coating surface should be determined based on the size of the sample.The optimalconcentration of virus suspension was 1伊107PFU/mL.This paper analyzes and puts forward the best conditions and problems need原ing attention in the antiviral test of porous architectural coating and provides reference for the antiviral testing and standard devel原opment of porous coatings.Key words：porous architectural coating，antiviral，stock solution，virus concentration，dropping amount基金项目：绿色建筑材料国家重点实验开放基金项目（ZA-58）收稿日期：2023-04-27；修订日期：2023-06-05作者简介：朱常才，男，1991 年生，博士研究生，E-mail：。通讯作者：冀志江，教授级高工，博士生导师，E-mail：。中国科技核心期刊1新型建筑材料圆园23援08的吸附与脱附，从而影响抗病毒测试结果。国际上较为通用的材料抗病毒测试方法标准有 ISO 21702：2019 塑料和其他非多孔表面抗病毒活性的测定，此标准主要是针对致密无孔表面的抗病毒活性测试，与我国标准类似，所用病毒为人类病毒。除此之外，国际上对于致密表面的抗病毒测试方法标准还包括 ISO 18071：2016 精细陶瓷（先进陶瓷、高技术陶瓷）-在室内照明环境下半导体光催化材料的抗病毒活性测定-噬菌体 Q-beta 试验法、ISO 18061：2014 精细陶瓷（先进陶瓷、高技术陶瓷）-半导体光催化材料的抗病毒活性测定-用噬菌体Q-beta 试验法，这 2 项标准所用病毒为噬菌体，噬菌体相比于人类病毒培养操作过程更为简单，且测试条件要求较低，安全性更高。对于多孔材料（织物）表面抗病毒测试方法标准较为通用的为 ISO 18184：2019 纺织品-纺织品抗病毒活性评价，但是此标准不适用于多孔建筑涂层抗病毒测试。由于多孔建筑涂层孔隙的存在对病毒具有吸附作用，在多孔涂层抗病毒测试中除了涂层中抗病毒成分对病毒具有灭活作用，涂层对病毒的吸附同样表现出抗病毒效果。为此研究多孔涂层抗病毒测试中各因素对测试结果的影响，有助于进一步优化多孔建筑涂层抗病毒测试方法，提高测试结果的准确性。本研究选用天然多孔材料硅藻土为填料，以苯丙乳液为基料制备多孔建筑涂料，选择粒径大小不同的 2 种噬菌体MS2（26 nm）和 渍A039（90 nm）作为非包膜病毒模型，研究了病毒储备液种类、涂层表面病毒悬液滴加量和滴加病毒悬液的浓度对多孔涂层抗病毒测试结果的影响，并探讨了抗病毒测试中应该注意的相关问题。1实验1.1主要原材料及仪器设备煅烧硅藻土：吉林远通矿业有限公司；苯丙乳液：固含量50%，德国巴斯夫；纤维素：250-HBR，亚什兰化工（南京）有限公司；多功能助剂：AMP-95，陶氏化学；乙二醇：分析纯，上海麦克林生化科技有限公司；消泡剂：NXZ 和 A10，圣诺普科有限公司；润湿剂：X-100，陶氏化学；分散剂：5040，圣诺普科有限公司；增稠剂：ASE-60，陶氏化学；水：自制去离子水。以上未表明纯度的原材料均为工业级。Luria-Bertani（LB）肉汤、Luria-Bertani（LB）琼脂：北京陆桥技术股份有限公司；营养肉汤、营养琼脂、琼脂粉：北京双旋微生物培养基制品厂；氯化钠（NaCl）：分析纯，天津市致远化学试剂有限公司；SM 缓冲液：北京依塔生物科技有限公司。大肠杆菌噬菌体 MS2（ATCC15597-B1）及其宿主大肠杆菌（ATCC 15597，E.coli）：北纳生物；维氏气单胞菌噬菌体 渍A039 及其宿主维氏气单胞菌A039：集美大学提供。实验所用仪器设备如表 1 所示。表 1实验仪器设备1.2涂层及培养液的制备多孔建筑涂料的基本质量配比为：水 40.50%，纤维素0.15%，多功能助剂 0.15%，乙二醇 1.30%，消泡剂 NXZ 0.20%，消泡剂 A10 0.20%，润湿剂 0.15%，分散剂 1.00%，硅藻土30.00%，苯丙乳液 25.70%，增稠剂 0.65%。按照配比依次将原材料加入到烧杯中，充分搅拌后过滤出料。涂层涂覆：抗病毒样品和 FE-SEM 测试涂层样品采用机械涂膜的方法，将液态涂料均匀涂覆在普通平板窗户玻璃基底（25 mm伊25 mm）表面（见图 1），涂覆厚度为 500 滋m。压汞测试样品采用机械涂膜将涂料均匀负载于聚酯膜表面，涂覆厚度为 500 滋m，待涂膜干燥后将其裁成 10 mm伊10 mm 小片测试。涂覆完的涂料样品，在室内环境下干燥 7 d 后置于玻璃干燥器中，至少放置 7 d 后再进行性能测试。图 1涂料在玻璃表面涂覆示意生理盐水：称取 4.25 g NaCl 加入去离子水中溶解，然后定容至 500 mL 得到浓度为 0.85%的生理盐水。半固营养琼脂（0.5%）：将1.8 g 营养肉汤粉和 0.5 g 琼脂粉加入 100 mL 去离子水中加热溶解。半固 LB 琼脂（0.5%）：将 2.5 g LB 肉汤粉和0.5 g 琼脂粉加入 100 mL 去离子水中加热溶解。1/500 肉汤培养基：取 1 mL 肉汤培养基（营养肉汤或 LB 肉汤）与 500 mL 去离子水混合均匀。其他培养基按产品说明配制，培养基、生理盐水及其他实验所用器皿于 121益下高压蒸汽灭菌 15 min。设备名称型 号生产厂家多功能搅拌分散机U450/80-220上海微达工贸有限公司电机分厂恒温恒湿箱ETH-1000-00-CP-AR巨孚仪器（北京）有限公司隔水式培养箱GH4500天津泰斯特仪器有限公司摇床培养箱DHZ-DA太仓实验设备厂3D 数字显微镜RH-3000日本 Hiroe Europe场发射扫描电子显微镜ZEISS sigma 500德国蔡司压汞仪AutoporeV 9620美国麦克默瑞提克注射过滤器椎=0.22 滋m天津市津腾实验设备有限公司台式高速离心机H/T16MM湖南赫西仪器装备有限公司朱常才，等：多孔建筑涂层抗病毒测试方法研究2晕耘宰 月哉陨蕴阅陨晕郧 酝粤栽耘砸陨粤蕴杂晕耘宰 月哉陨蕴阅陨晕郧 酝粤栽耘砸陨粤蕴杂1.3病毒储备液制备病毒肉汤储备液制备：噬菌体 MS2 和 渍A039 肉汤储备液根据 ISO18071：2016 制备。噬菌体 MS2 和 E.coli 用营养肉汤和营养琼脂进行培养，培养温度为 37 益，摇床培养转速为 170r/min；噬菌体 渍A039 和维氏气单胞菌 A039 用 LB 肉汤和 LB琼脂培养，培养温度为 28益，摇床培养转速为 120r/min。培养的菌液和噬菌体肉汤先在 8500r/min 离心 10min，然后取上清液，用注射过滤器过滤 3 次，滤液置于 4益冷藏。制备的噬菌体MS2 和 渍A039 的储备液浓度分别为 1伊1012、1伊109PFU/mL。病毒 SM 缓冲液储备液制备：取培养 12 h 的双层琼脂培养基顶层琼脂置于 10 mL 聚乙烯离心管中，然后加入 2 mLSM 缓冲液，将顶层琼脂于 SM 缓冲液中充分分散，置于 4 益冷藏过夜，过夜后于 8500 r/min 离心 10 min，取上清液用注射过滤器过滤 3 次，滤液置于 4 益冷藏。制备的噬菌体 MS2 和渍A039 储备液浓度分别为 1伊1012、1伊109PFU/mL。1.4孔隙特征和抗病毒测试方法根据 GB/T 21650.12008 压汞法和气体吸附法测定固体材料孔径分布和孔隙度 第 1 部分：压汞法 测试涂层孔隙特性；用 3D 数字显微镜观察涂层断面形貌，并测试干燥后的涂层厚度；用 FE-SEM 对干燥后的建筑涂层表面形貌进行观察，加速电压为 20 kV。建筑多孔涂层抗病毒测试参照薄膜粘附法4-5，在此基础上进行了一定的修改。选用 MS2 和 渍A039 作为非包膜病毒模型进行抗病毒测试。测试前将样品置于紫外灯下照射 1 h灭菌。用 1/500 营养肉汤（MS2）或 LB 肉汤（渍A039）将噬菌体储备液（肉汤储备液和 SM 缓冲液储备液）稀释至特定浓度，各测试条件下病毒稀释浓度见表 2。然后取特定量稀释后的噬菌体悬液滴加至样品表面，各测试条件下滴加量见表 2。滴加悬液后在样品表面覆透明薄膜，轻轻按压薄膜使噬菌体悬液分布于整个样品表面，覆膜后将样品置于带盖一次性塑料平皿中。最后将装有样品的一次性平皿置于恒温恒湿箱孵育，温湿度设置见表 2，分别孵育 2、4、8、12 h 后用 10 mL 生理盐水（0.85%）冲洗样品表面。再用 1 mL 移液枪吸取冲洗液反复冲洗样品表面 15 次，并在冲洗液中漂洗覆膜。然后用生理盐水对冲洗液进行梯度稀释。取稀释后的噬菌体悬液 100 滋L 与100 滋L 宿主菌液混合（MS2 感染 E.coli，渍A039 感染 A039），混合均匀后室温静置侵染 10 min，然后向侵染后的菌液中加入4 mL 半固琼脂，混合均匀后倒入平板琼脂培养基，制备双层琼脂平板培养基，待双层琼脂平板冷却凝固后将平板置于培养箱中培养（E.coli 培养温度 37 益，A039 培养温度 28 益）。双层琼脂平板在培养箱中培养 12 h 后计数噬斑。负载病毒样品在恒温恒湿箱中孵育后表面噬菌体 MS2 和 渍A039 回收浓度（N）通过噬斑数量和稀释倍数计算。初始病毒浓度（N0）是将稀释后的噬菌体悬液滴加至玻璃基底表面，覆膜后直接用生理盐水冲洗，稀释后培养计数噬斑，计算 0 h 样品表面病毒回收浓度。根据病毒浓度降低的对数值确定病毒灭活量，按 Lg（N/N0）确定病毒灭活量。对建筑多孔涂层表面病毒灭活量的评估重复 23 次，实验中每个样品平行稀释 2 组。表 2影响抗病毒测试各因素测试条件2结果与讨论2.1多孔建筑涂层的表征硅藻土涂层断面数字显微照片、表面 SEM 照片和填料堆积模型如图 2 所示。由图 2（a）可以看出，在低放大倍数下硅藻土涂层表面较为平整，无明显缺陷，通过数字显微镜无法观察到涂层填料微观结构。通过对 35 张涂层断面显微镜照片进行厚度统计，得到干燥后的硅藻土涂层厚度为（181依8）滋m，涂层收缩率较大，为 63.77%。由图 2（b）、（c）可以看出，涂层表面存在大量孔隙，且涂层中煅烧硅藻土形状各异，既存在长条形颗粒也存在粒径大小不均的块状颗粒，所用硅藻土具有宽的粒径分布。形状及粒径大小分布不均的硅藻土更容易形成堆积孔隙 见图 2（d）。此外，涂层中还有结构较为完整的多孔硅藻土颗粒，能够进一步丰富涂层的孔隙结构。这种多孔结构的存在有助于提高涂层对表面物质的吸附作用，在抗病毒测试中硅藻因 素储备液种类噬菌体类型滴加病毒浓度/（PFU/mL）滴加量/滋L孵育条件储备液种类肉汤储备液MS21伊10725 益、相对湿度 30%渍A039SM 缓冲液储备液MS21伊107渍A039病毒悬液滴加量肉汤储备液MS25025 益、相对湿度 90%100150渍A03950100150病毒悬液浓度肉汤储备液MS21伊10625 益、相对湿度 90%1伊1071伊1081伊109渍A0391伊1051伊1061伊10750501伊1071伊1075050朱常才，等：多孔建筑涂层抗病毒测试方法研究3新型建筑材料圆园23援08土涂层表面的多孔结构有助于涂层对病毒的吸附。对于开孔且孔隙较大的孔结构多以压汞法表征涂层孔隙分布6-7。采用压汞法测得硅藻土涂层的孔径分布如图 3 所示。图 3硅藻土涂层的孔径分布由图 3 计算可得，干燥后硅藻土涂层的中值孔径为 2.91滋m，孔隙率为 34.49%，总孔容为 0.38 mL/g。涂层孔径在 0.8311.32 滋m，具有宽的孔径分布。由于所选用的煅烧硅藻土为大小不一、形状各异的颗粒，导致在涂料成膜过程中尺寸较大且形状不规则的颗粒容易形成堆积孔隙。此外，尺寸较小且形状较为规则的硅藻土可填充部分较大堆积孔隙，一定程度上加宽了涂层孔径分布。涂层中不规则且大小不一的硅藻土堆积而成的涂层孔隙多为尺寸较大的微米级孔隙，属于大孔孔隙8。以硅藻土为填料所制备涂层为大孔径多孔涂层，对提高涂层吸附作用有利，有助于涂层对表面病毒的多重吸附。2.2噬菌体储备液种类对多孔涂层抗病毒活性的影响有机物影响病毒存活时间9，多孔硅藻土涂层负载病毒悬液后于低湿度（相对湿度为 30%）下孵育，是为了表征在较为苛刻的条件下储备液种类对噬菌体活性的影响。此外，非包膜病毒在低湿度条件下存活时间更短10-11，低湿度有助于 2 种噬菌体的灭活，这样才能更好地体现储备液种类对涂层表面病毒存活时间的影响。按照表 2 将悬浮于 SM 缓冲液和肉汤中的噬菌体用 1/500 肉汤稀释后用于涂层抗病毒活性测试，不同噬菌体储备液种类对多孔涂层抗病毒活性的影响如图 4所示。图 4不同噬菌体储备液种类对多孔涂层抗病毒活性的影响由图 4 可以看出，相同病毒不同储备液类型测得的多孔涂层的抗病毒活性存在明显差异，此外，多孔硅藻土涂层对 2种病毒灭活性也存在差异，多孔硅藻土涂层对噬菌体 渍A039的灭活量更高。以 SM 缓冲液作为储备液测得的多孔涂层表面病毒的灭活量低，说明在 SM 缓冲液存在情况下病毒存活时间更久。噬菌体的长期保存方法除了制成干粉外，还经常将噬菌体悬于 SM 缓冲液中进行保存12。虽然用 1/500 肉汤对噬菌体的 SM 缓冲液储备液进行了稀释，但是稀释液中依然有缓冲液残留，这有助于病毒的存活。SM 缓冲液中明胶的存在，可能有助于病毒在悬液中的聚集，从而延长病毒存活时间13-16。噬菌体肉汤储备液组成与稀释用 1/500 肉汤组成相同，可以避免其他物质对噬菌体存活时间的影响，从而使负载在多孔涂层表面的噬菌体的存活时间主要受建筑涂层自身性质影响。综上所述，使用噬菌体肉汤存储液可以有效避免噬菌图 2硅藻土涂层的断面数字显微照片、扫描电镜照片和填料堆积模型朱常才，等：多孔建筑涂层抗病毒测试方法研究4晕耘宰 月哉陨蕴阅陨晕郧 酝粤栽耘砸陨粤蕴杂晕耘宰 月哉陨蕴阅陨晕郧 酝粤栽耘砸陨粤蕴杂体悬液成分不同对测试结果的影响，提高多孔建筑涂层抗病毒测试结果的准确性。另外，如果因测试条件要求选用其他类型病毒储备液进行抗病毒活性测试时，要保证对比实验中所用储备液种类相同，以确保测试结果的可靠性。2.3病毒悬液滴加量对多孔涂层抗病毒活性的影响（见图 5）由图 5 可以看出，对于噬菌体 MS2，多孔硅藻土涂层表面滴加 50 滋L 病毒悬液时涂层表面病毒灭活量最高，滴加100、150 滋L 时涂层表面病毒灭活量大致相同；对于噬菌体渍A039，病毒在多孔硅藻土表面的灭活量随着病毒悬液滴加量的增加而降低。多孔建筑涂层对表面滴加的病毒悬液具有图 5病毒悬液滴加量对多孔涂层抗病毒活性的影响吸附作用，悬液滴加至涂层表面后会有部分病毒随悬液一起进入涂层孔隙内部。吸附于涂层孔隙内部并且无法脱附的病毒最终会因为无宿主可以感染而失活，从而使多孔涂层具备抗病毒特性。对于样品涂层而言，对负载悬液的吸附量有限，当病毒悬液滴加量过多时，涂层表面会附着大量水，可能影响多孔涂层对病毒的吸附，无法有效表征多孔涂层对病毒的吸附量，从而影响测试结果的准确性。另外，当多孔建筑涂层表面噬菌体悬液滴加量过多时（150 滋L），悬液极易从覆膜与涂层之间溢出，导致覆膜周边悬液量多于覆膜与涂层之间的悬液量（见图 6），这也容易造成大的实验误差。综上所述，对于特定大小的多孔建筑涂层测试样品，在抗病毒测试过程中要控制病毒悬液的滴加量，滴加过多会影响多孔涂层对病毒吸附且悬液容易从表面和覆膜之间大量溢出，滴加过少悬液可能会被完全吸附，造成病毒完全灭活的假象。因此，测试中样品表面病毒悬液的滴加量应根据测试样品大小确定，当测试样品大小为 25 mm伊25 mm 时，样品表面病毒悬液最佳滴加量为 50 滋L。当测试样品大小改变时，要在正式测试前先确定样品表面病毒悬液的最佳滴加量，以提高测试结果的准确性。2.4病毒悬液浓度对多孔涂层抗病毒活性的影响（见图 7）图 6涂层表面病毒悬液不同滴加量并覆膜后照片（罗丹明 B 溶液替代病毒悬液）朱常才，等：多孔建筑涂层抗病毒测试方法研究5新型建筑材料圆园23援08图 7病毒悬液浓度对多孔涂层抗病毒活性的影响由图 7 可以看出，随着病毒在涂层表面孵育时间的延长，2 种病毒回收浓度均降低，但是滴加的病毒悬液初始浓度不同时，涂层的抗病毒测试结果存在明显差异。对于噬菌体MS2，当病毒悬液浓度由 1伊106PFU/mL 增大至 1伊109PFU/mL时，涂层表面负载病毒的灭活量呈先升高后降低再升高的趋势，规律性较差，但是滴加不同浓度病毒悬液之间的抗病毒结果差异性明显；对于噬菌体 渍A039，随着病毒悬液浓度增大，病毒在涂层表面孵育 12 h 后病毒灭活量逐渐降低。在细菌灭活实验中已经有研究证实菌液浓度与细菌灭活有关17-18，实验结果表明，与细菌实验类似，病毒（噬菌体）浓度与病毒灭活之间也存在一定的关系。因此，在多孔涂层抗病毒测试的多次对比重复实验中，要保证每次实验的病毒悬液初始浓度一致，这样才能保证每次测试结果之间的抗病毒结果具有可对比性。另外，为了减少实验操作误差和工作量，提高实验效率，同时保证测试结果能够有效表征涂层抗病毒活性，所用病毒悬液初始浓度应该控制在一定范围内。悬液浓度过高，测试中从样品表面回收病毒的稀释次数增加，容易造成实验误差，且增加测试工作量；浓度过低，可能不能够充分表征涂层对病毒的灭活量。虽然多孔涂层表面病毒灭活率未达到 99.99%，但是涂层中加入抗病毒材料或环境条件变化会使病毒灭活增大，为了确保测试结果能够有效表征涂层抗病毒活性，所用病毒悬液浓度至少应保证最终病毒灭活率达到 99.99%5。测试结果表明，在多孔建筑涂层抗病毒测试中滴加病毒悬液的最佳浓度为 1伊107PFU/mL。3结语（1）病毒储备液种类不同时涂层抗病毒测试结果存在差异，测试中应尽量选用与储备液稀释液成分相同的病毒储备液，以提高多次对比实验测试结果的准确性。（2）涂层抗病毒测试中，涂层表面滴加稀释后的病毒悬液体积应视测试样品大小而定，以能充分填充涂层与覆膜之间间隙为宜。当样品大小为 25 mm伊25 mm 时，样品表面病毒悬液最佳滴加量为 50 滋L，测试样品大小改变时，应重新确定样品表面病毒悬液滴加量。（3）测试中对于病毒储备液的稀释浓度应控制在一定范围内，并确保对比测试中涂层表面滴加病毒悬液的浓度一致，以减少实验量，为提高对比测试结果的可靠性，储备液最佳稀释浓度为 1伊107PFU/mL。由此可见，在多孔建筑涂层抗病毒测试中，应尽量避免各种因素变化对测试结果的影响，并且在多次重复和对比测试中应保证各影响因素的一致性，从而提高测试结果的可靠性。参考文献：1孙猛，孙天宇，王春阳，等.空气净化功能硅藻土内墙涂料发展现状J.科技创新与应用，2017（16）：36-37.2刘晓静，张旭涛，吴晨辉，等.一种抗菌抗病毒多功能生态建筑涂料的制备J.中国涂料，2022，37（2）：55-58.3吴生英，彭光佳，孙彤，等.抗菌、抗病毒涂料的发展现状及其在医院中的应用J.中国医院建筑与装备，2021，22（6）：94-97.4Matsumoto T，Sunada K，Nagai T，et al.Effects of cerium andtungsten substitution on antiviral and antibacterial properties oflanthanum molybdate J.Materials Science and Engineering（C），2020，117：111323.5Matsumoto T，Sunada K，Nagai T，et al.Preparation of hydropho原bic La2Mo2O9ceramics with antibacterial and antiviral propertiesJ.Journal of Hazardous Materials，2019，378：120610.6田华，张水昌，柳少波，等.压汞法和气体吸附法研究富有机质页岩孔隙特征J.石油学报，2012，33（3）：419-427.7Voigt C，Hub佗lkov佗 J，Giesche H，et al.Intrusion and extrusionmercuryporosimetrymeasurementsatAl2O3-C-Influenceofmeasuring parameter J.Microporous and Mesoporous 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0.1豫的折固掺量下减水效率最高，使石膏水化进程更加充分。（2）PCE-1对石膏的分散性明显优于石膏专用萘系减水剂，并且缓凝作用更优，其对石膏水化进程释放更加充分，水化效果更好。参考文献：1余振新，许如源，陶鹃.聚羧酸减水剂在石膏基体系中的试验研究J.新型建筑材料，2017，44（6）：113-116.2彭家惠.建筑石膏减水剂与缓凝剂作用机理研究D.重庆：重庆大学，2004.3李逸晨.石膏行业的发展现状及趋势J.硫酸工业，2019（11）：1-7，13.4瞿金东，彭家惠，吴莉，等.建筑石膏外加剂研究进展J.材料科学与工程学报，2004（3）：466-469.5彭家惠，瞿金东，张建新，等.聚羧酸系减水剂在石膏颗粒表面的吸附特性及其吸附-分散机理J.四川大学学报（工程科学版），2008（1）：91-95.6刘烨，马雪英，徐忠洲.快凝型石膏板专用聚羧酸减水剂的合成及性能研究J.新型建筑材料，2021，48（12）：47-51.7瞿金东.减水剂对建筑石膏性能的影响与作用机理研究D.重庆：重庆大学，2002.8傅乐峰.聚羧酸超塑化剂的合成、性能和分散吸附行为研究D.上海：华东理工大学，2010.9逄建军，王栋民，魏中原.梳型聚羧酸减水剂对建筑石膏宏观性能的影响C/中国硅酸盐学会.固废分会成立大会第一届固废处理与生态环境材料学术交流会论文集.北京：中国学术期刊电子出版社，2015：31-36.10王响，张鹏，吴鹏，等.不同结构聚羧酸减水剂对 琢-高强石膏性能的影响J.新型建筑材料，2019，46（12）：73-75.11徐忠洲.纸面石膏板专用聚羧酸减水剂的合成及性能研究J.新型建筑材料，2021，48（7）：147-150.蒉（上接第 6 页）11Casanova L M，Jeon S，Rutala W A，et al.Effects of Air Tem原perature and Relative Humidity on Coronavirus Survival onSurfaces J.Applied and Environmental Microbiology，2010，76（9）：2712-2717.12丛聪，袁玉玉，渠坤丽，等.关于噬菌体实用保藏方法的研究进展J.中国抗生素杂志，2017，42（9）：742-748.13Gutierrez L，Nguyen T 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