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两型星形胶质细胞基因表达谱差异的初步观察
【摘要】 目的:研究不同型别星形胶质细胞的基因表达谱,比较1型和2型星形胶质细胞基因表达谱之间的差异,以进一步研究两者的生物学特性及其功能。方法:原代培养新生SD大鼠大脑皮质混合胶质细胞,经振荡和差速消化纯化培养1型星形胶质细胞和2型星形胶质细胞;应用基因芯片技术获取T1A和T2A的基因表达谱,并对两者的基因表达谱进行初步分析。结果:基因芯片上检测点4096个,共有差异表达基因267条,其中113条在T1A中高表达,154条在T2A中高表达。结论:本实验获得大鼠大脑T1A和T2A的基因表达谱,首次报道267条存在于T1A和T2A之间的差异表达基因。
【关键词】 星形胶质细胞;细胞谱系;基因表达谱;基因芯片
随着研究的不断深入,人们已认识到胶质细胞不仅对神经元有支持、分隔绝缘、形成髓鞘、营养、修复和再生等多种功能。并积极参与神经元的活动,调节神经元的代谢和离子环境,对神经系统的发育和正常生理活动以及病理变化都具有重要作用。而且胶质细胞对正常脑发育、神经元的调控和中枢再生等方面所发挥的作用,已不亚于神经元本身。星形胶质细胞是中枢神经系统中最主要的胶质细胞,根据发生分化谱系的不同可分为1型(type 1 astrocyte, T1A)和2型(type 2 astrocyte, T2A)星形胶质细胞,两者行使着某些不同的生物学功能[1~3]。目前有关T1A和T2A基因表达差异的研究尚未见文献报道。本实验应用基因芯片技术研究T1A和T2A基因表达谱及其之间的差异,这对认识不同型别星形胶质细胞的功能有极其重要的意义。
1 材料与方法
细胞培养 取新生SD大鼠大脑皮质作原代混合胶质细胞培养,采用振荡法和胰酶差速消化法,结合使用富含血清培养基,分别纯化培养T1A和T2A。将大鼠大脑T1A作为对照组,T2A作为实验组。
基因芯片 采用上海博星基因芯片责任有限公司芯片,芯片类型为BiostarR-40S。1型星形胶质细胞样品编号T1A,Cy3标记,2型星形胶质细胞样品编号T2A,Cy5标记。
细胞 总RNA提取 D-Hank’s液洗涤纯化培养的T1A和T2A,每10cm2细胞加入2ml Trizol试剂裂解细胞,使之充分溶解,分别转移入 15 ml离心管,加入氯仿,15℃~30℃放置3min,4℃12000g/min离心15min,吸取上清分别至另一15ml离心管,加入异丙醇,15℃~30℃放置10min,4℃12000g/min离心10min,弃上清,加入75%乙醇,4℃8000g/min离心10min,弃上清,超净工作台内干燥沉淀,加入适量DEPC水完全溶解RNA沉淀,-80℃保存。
探针标记和杂交 预杂交:预杂交液95℃水浴变性2 min,预杂交的玻片95℃水浴变性30 s取出放入无水乙醇中30s,晾干后将变性的预杂交液加到玻片的点样区域内,盖上盖玻片,放入杂交箱内42℃预杂交5~6h;标记探针:分别在2个 Eppendorf管中依次加入ddH2O 23μl、逆转录引物5μl和T1A或T2A总RNA 100μg,反应总体积50μl。混匀置70℃水浴10min,取出后迅速置冰,分别加入逆转录酶缓冲液10μl、DTT 5μl和dNTPs 4μl,在暗室中加入逆转录酶2μl和Cy3-dCTP或Cy5-dCTP3μl,混匀样品,室温2min,42℃水浴2 h,加入标记试剂I 4μl,65℃水浴10 min后加入标记试剂 II 4μl,混匀,合并实验组和对照组,避光,真空抽干至50μl,DNA纯化柱纯化DNA,加入标记试剂III 8μl,真空抽干;杂交:在抽干的探针管中加入μl杂交试剂I,充分混匀至探针溶解,再加入μl杂交试剂II,混匀备用。将预杂交的玻片取出并去除盖玻片,探针置95℃水浴变性2min取出后迅速置冰,玻片置95℃水浴变性30s取出浸入无水乙醇30s,将探针置于芯片上,盖玻片覆盖,置于杂交舱中并以Parafilm密封,42℃杂交箱内杂交18h,取出玻片并去除盖玻片,洗片剂洗涤后晾干扫描。
杂交结果检测和图像分析 用ScanArray 4000扫描仪扫描芯片,通过芯片图像分析软件GenePix 对芯片灰度扫描图进行分析。收集Cy3和Cy5荧光标记信号值,将Cy5信号值小于200的以200取代以避免弱信号对实验结果的干扰。为校正Cy5、Cy3标记体系间的系统误差,均对实验数据进行均一化处理:计算每个有效基因点的Ri的自然对数值r [= ln (Cy5 /Cy3)],算出全部有效基因点r的平均值r’, 实验的均一化系数ND就等于r’的倒数即ND=EXP(r’)。将所有基因点的Cy3信号值乘ND,得出调整后的Cy3*,将所有小于200的Cy3*值以200取代以避免弱信号对实验结果的干扰。计算每个基因点在本次实验中的表达差异值Ratio,Ratio2或的数据项表示差异表达的基因。
2 结果
总RNA提取 正常SD大鼠大脑1型和2型星形胶质细胞总RNA提取结果:T1A总RNA及T2A总RNA电泳结果均可见清晰的18S和28S条带,两者亮度比为1∶2,隐约可见5S条带,表明RNA没有降解,纯度较高,符合实验要求。
基因表达谱 基因芯片上测定了4096个点,包括1500条已知基因,2548条未报道基因,其中48个阴性对照点,实验中这些点的杂交信号很低。经过2次重复试验,发现在T1A高表达()的基因分别有157条和195条,而在T2A高表达()的基因分别有195条和244条。最后筛选出两次试验中均出现高表达的基因,它们在与两种荧光标记的探针杂交时表现出较大的差异,且上下调趋势一致,程度相似,认为它们是表达存在差异的基因,分别有113条和154条基因在T1A和T2A中高表达。统计结果见表1,两型星形胶质细胞基因表达谱。
3 讨论
基因芯片是将大量的靶基因片段有序地、高密度地固定在玻璃、硅等载体上,以检测不同样本基因表达情况的一项技术。自1995年Stanford大学的Schena M等发表第一篇应用基因芯片的论文以来,基因芯片已广泛用于基因功能的研究[5~7]。基因芯片技术大大推动了功能基因相关分子生物学的研究。
基因表达谱芯片是目前应用最广泛的基因芯片,是将几千个基因特异探针或其cDNA片段固定在一块基因芯片上,对来源于不同个体、不同组织、不同细胞周期、不同发育阶段、不同病变、不同刺激下的细胞内的mRNA或逆转录产物cDNA进行检测,从而大规模对这些基因表达的个体特异性、组织特异性、发育阶段特异性、分化阶段特异性、病变特异性、刺激特异性进行综合的分析和判断。与传统研究基因表达差异的方法相比[8,9],基因表达谱芯片具有许多优点:检测系统微型化,对样品等需要量非常小;能同时研究成千上万条基因的表达变化,研究效率明显提高;能
[1] Brown DR. A method for long term culture of murine type 2 astrocytes[J]. J Neurosci Methods, 1998,79:161-167.
French-Constant C, Raff MC. The oligodendrocyte-type-2 astrocyte cell lineage is specialized for myelination[J].Nature, 1986, 323: 335-338.
Miller RH, Abney ER, David S, et al. Is reactive gliosis a property of a distinct subpopulation of astrocytes[J]. J Neurosci, 1986, 6: 22-29.
孙 燕, 王 劼, 夏春林. 新生大鼠大脑皮质O2A 祖细胞的体外诱导分化[J]. 解剖学研究, 2004, 26(3):167-170.
Schena M, Shalon D, Dais RW, et al. Quantitative monitoring of gene expression with a complementary DNA microarray[J]. Science, 1995, 270 (2):467-470.
Schena M,Shalon D,Heller R,et human genome analysis:Microarray-based expression monitoring of 1000 genes[J].Prog Nat Acad Sci, USA, 1996,93: 10614-10619.
Golub TR, Slonim DK, Tamayo P, et al. Molecular classification of cancer:Class discovery and class prediction by gene expression monitor[J]. Science,1999,286(5439):531-537.
Beattie JH. Obesity and hyperleptinemia in metallithionein null mice[J]. Proc Nat Acad Sci, USA, 1998,95:358-363.
Kuang WW, Thompson DA, Hoch RV, et al. Differential screening and suppression subtractive hybridization identified genes differentially expressed in an estrogen receptor-positive breast carcinoma cell line[J]. Nucleic Acid Res, 1998, 26(4):1116-1123.
[10] Belliveau DJ, Naus CC. Cortical type 2 astrocytes are not dye coupled nor do they express the major gap junction genes found in the central nervous system[J]. Glia, 1994, 12(1): 24-34.
[11] Aloisi F, Agresti C, Levi G. Establishment, characterization and evolution of cultures enriched in type-2 astrocytes[J]. J Neurosci Res, 1988, 21: 188-198.
[12] Xia CL, Du ZW, Liu ZY, et al. A2B5 lineages of human astrocytic tumors and their recurrence[J].Int J Oncol, 2003, 23: 353-361.
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