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格列酮对内皮祖细胞增殖、黏附及迁移能力的影响.docx

上传人:丰**** 文档编号:4582823 上传时间:2024-09-30 格式:DOCX 页数:12 大小:17.31KB
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资源描述

1、格列酮对内皮祖细胞增殖、黏附及迁移能力的影响【摘要】 目的:观察罗格列酮(rosiglitazone,Ros)对体外培养内皮祖细胞(endothelial progenitor cells,EPCs) 增殖、黏附及迁移能力的影响。方法:以密度梯度离心法获取脐血单个核细胞,培养7 d后收集贴壁细胞并分为正常对照组、单独Ros (1mol/L、5mol/L及10mol/L)组、H2O2氧化应激模型组、Ros(1mol/L、5mol/L及10mol/L)和H2O2共同干预组,培养24 h。用流式细胞仪检测细胞表达CD34、CD133、VEGFR-2、VE-Cadherin并用荧光显微镜观察细胞吞噬D

2、iI-ac-LDL和FITC-UEA-1来鉴定EPCs。分别用CCK-8、普通光学倒置显微镜、改良的Boyden小室检测EPCs的增殖、黏附和迁移能力。结果:与正常对照组相比,单独Ros干预组呈浓度依赖性促进脐血来源的EPCs增殖、黏附及迁移能力,但是Ros 5mol/L和10mol/L组间没有显着差异;与H2O2氧化应激损伤组相比,Ros能呈浓度依赖性改善H2O2对EPCs增殖、黏附及迁移功能的抑制,Ros 5mol/L和10mol/L干预保护组之间没有显着差异。结论:噻唑烷二酮类药物Ros除具有激动PPAR-受体降糖作用外,还具有抗氧化应激损伤作用。Ros能促进EPCs功能,改善H2O2致

3、EPCs功能的氧化应激损伤。【关键词】 罗格列酮 内皮祖细胞 过氧化氢 氧化应激 Abstract: Objective: To study the effect of rosiglitazone on the ability of proliferation, conglutination and transfere of endothelial progenitor cell in vitro. Methods: Total mononuclear cells were isolated from the umbilical cord blood with ficoll density g

4、radient centrifugation, after the red 内皮祖细胞被认为是表达CD34/CD133/VEGFR-2的一群细胞,可以分化为内皮细胞,参与成体血管新生,同成熟内皮细胞相比具有迟发性的高增殖性。EPCs具有干/祖细胞增殖分化的特性,大量的动物实验和一些临床研究证明,EPCs是治疗缺血性疾病和修复血管内皮的良好种子细胞,具有巨大的临床应用潜能。越来越多的研究结果揭示,心血管危险因素如高血压、糖尿病、高血脂、年龄、吸烟都会抑制EPCs的功能,促进细胞衰老和凋亡1,2,EPCs的数量和功能可作为心血管疾病危险程度新的预测因子。近年来我国的糖尿病发病率明显上升,糖尿病被认

5、为是冠心病的等危症,糖尿病患者10年心脑血管疾病发病率大于20%。噻唑烷二酮(TZDs)Ros是选择性激活过氧化物酶体增殖激活受体激活剂,是治疗糖尿病的常用药。最近研究发现,TZDs类药物具有抗炎、抗免疫、保护血管内皮、抗动脉粥样硬化、降血压等胰岛素增敏效果的外作用3-5。本实验旨在观察Ros在体外正常培养和H2O2氧化应激损伤模型下对EPCs功能的影响,为明确Ros治疗糖尿病外的血管保护作用提供新的依据。 1 材料和方法 材料 6%羟乙基淀粉,纤维连接蛋白,VEGF,PE-CD34,FITC-VE-cadherin,PE-VEGF-2及FITC-AC133,胎牛血清、M199,Dil-ac-

6、LDL,FITC-UEA-1、rosiglitazone,改良的Boyden小室(江苏海门麒麟医用仪器厂生产),CCK-8细胞计数试剂盒,胃癌细胞株(SGC7901,中国科学院上海生科院细胞资源中心提供)。EPCs培养及鉴定人脐血培养EPCs:外周血采集于温州医学院第一附属医院分娩室。参考文献,取健康孕妇分娩后脐血50 ml,6%羟乙基淀粉沉淀红细胞,以密度梯度离心法分离脐血单个核细胞,以5106/cm2接种于包被有纤维连接蛋白的6孔培养板中,每孔加入2 ml包含有20%胎牛血清、VEGF(10 ng/ml),青霉素(100 IU/ml)及链霉素(100 IU/ml)的M199培养液,置37

7、、5% CO2、饱和湿度培养箱中培养。3 d后,洗去未贴壁细胞,添加培养液继续培养,以后每隔3 d换培养液。EPCs鉴定:在培养的第7天,细胞以%胰酶消化,制成1106/ml的单细胞悬液,加入荧光标记的抗CD34、VE-Cadherin、VEGFR-2及CD133单克隆抗体各10l(1mg/ml),流式细胞仪分析内皮祖细胞CD34、VE-Cadherin、VEGFR-2及CD133的表达情况。根据EPCs具有吞噬DiI-ac-LDL的特性,将DiI-ac-LDL以g/ml的终浓度加入培养液共孵育3 h,以2%的多聚甲醛固定10 min,再加入3l FITC-UEA-1(避光操作),于37 孵育

8、1 h。荧光显微镜下观察。以不加DiI-ac-LDL和FITC-UEA-1的同批培养细胞为对照。阴性对照采用SGC7901。实验分组 在培养第7天后,以%胰酶将各孔细胞消化下来制成细胞悬液,以等数量细胞接种,随机分为正常对照组、Ros组(浓度分别为1、5、10mol/L)、H2O2氧化应激损伤模型组、Ros+H2O2共同干预组,每组6孔培养24 h后,进行细胞功能检测。CCK-8增殖能力检测 单细胞悬液以1104/孔的接种密度接种到96孔板,随机分组培养24 h后,更换新鲜培养液,每孔加入10l CCK-8细胞计数试剂,于37 孵育 h,酶标仪450 nm下读取吸光度OD值。黏附能力检测 单细

9、胞悬液以5104/孔的接种密度接种到24孔板,随机分组,培养24 h后,各组细胞以%胰酶消化制成细胞悬液,以相同细胞数接种96孔板,置37 培养箱中培养30 min,洗去未贴壁细胞,倒置显微镜下随机选取10个视野(400),计数黏附细胞数。迁移能力检测 单细胞悬液以5104/孔的接种密度接种到24孔板,随机分组,培养24 h后,各组细胞以%胰酶消化制成细胞悬液,并计数。将培养液100l加入改良Boyden小室的下室,将2104/ml EPCs悬浮在150l培养液,注入上室,培养24 h,刮去滤膜上未移动的细胞,用甲醛固定,苏木素染色,随机选择4个显微镜视野(200),计数迁移的细胞。统计学处理

10、方法 用统计软件进行统计分析,多组比较采用单因素方差分析,组间两两比较方差齐者采用LSD检验,方差不齐者采用Dunnetts T3检验。 2 结果 EPCs鉴定培养3 d洗去不贴壁细胞及碎片后,可见典型细胞集落:中间为大量的圆形细胞, 层层叠叠,外周为纺锤形细胞,向外扩散(见图1A)。培养第7天荧光显微镜检显示:细胞吞噬DiI-ac-LDL,显微镜下激发红色荧光(见图1B),细胞吞噬FITC-UEA-1,显微镜下激发绿色荧光,空白对照及阴性对照均无荧光。用流式细胞仪分析表明,表达CD34、CD133、VEGFR-2、VE-Cadherin的细胞分别为()%、()%、()%及()%。Ros对EP

11、Cs增殖能力的影响 由表1可知,与对照组相比,Ros干预组呈浓度依赖性地促进EPCs的增殖(或);与H2O2组相比,Ros加H2O2干预组也呈浓度依赖性地保护EPCs的氧化应激损伤,改善EPCs的增殖能力(或)。Ros 5mol/L组、Ros 10mol/L组和Ros 5mol/L加H2O2干预组、Ros 10mol/L加H2O2干预组,两组间差异均无显着性(均)。Ros对EPCs黏附能力的影响由表1可知,与对照组相比,(5mol/L、10mol/L) Ros组能明显提高EPCs黏附能力(均),1mol/L Ros干预组无明显差异向内皮系转化,增加球囊损伤血管内膜的内皮覆盖率,抑制平滑肌细胞增

12、殖,这一作用可能与APC的eNOs活性有关。但是Gensch C等11研究发现,TZDs类药物吡格列酮促进大鼠皮下聚乙烯抑制物上血管新生,减少内皮祖细胞的凋亡,改善内皮祖细胞功能,可能是通过PI3K/Akt而不是eNOs途径起作用。Onuta G等研究发现Ros能显着抑制小鼠颈动脉移植后细胞免疫、炎症反应,抑制中膜、内膜平滑肌增生,减小动脉粥样硬化斑块形成。 Dernbach等11研究发现与脐静脉内皮细胞相比,EPCs具有较低的活性氧水平;H2O2或LY-83583(10mol)干预培养18 h,EPCs较脐静脉内皮细胞胞内的活性氧水平低、凋亡细胞少,其认为与EPCs胞内高表达过氧化物歧化酶、

13、谷胱甘肽还原酶、过氧化氢酶有关。由于EPCs自身具有很强的抗氧化、低活性氧的特点,本实验采用过氧化氢500mol/L作用24 h,制造细胞的氧化损伤模型12,13。本实验证实Ros在正常培养条件下促进EPCs增殖、黏附、迁移能力;在H2O2氧化应激损伤培养条件下Ros能保护H2O2致氧化应激损伤对EPCs的功能抑制,改善增殖、黏附、迁移能力。因此Ros在治疗糖尿病的同时可以起到与糖代谢无关如抗氧化应激损伤、抑制炎症反应、保护循环中的EPCs作用,而发挥修复损伤内皮的血管保护作用。其保护EPCs可能是通过活化PPAR-再通过PI3K/Akt和eNOs途径起作用,具体机制待进一步实验明确。 【参考

14、文献】 1 Imanishi T,Hano T, Nishio I. Angiotensin II potentiates vascular endothelial growth factor-induced proliferation and network formation of endothelial progenitor cellsJ. Hypertens Res, 2004, 27(2):101-108. Imanishi T, Hano T, Sawamura T, et al. Oxidized low-den-sity lipoprotein induces endothel

15、ial progenitor cell senescence, leading to cellular dysfunctionJ. Clin Exp Pharmacol Physiol, 2004, 31(7):407-413. Wang CH, Ciliberti N, Li SH, et al. Rosiglitazone facilitates angiogenic progenitor cell differentiation toward endothe- lial lineage: a new paradigm in glitazone pleiotropyJ. Circulati

16、on, 2004, 109(11):1392-1400. Onuts G, Rienstra H, de Boer JF, et al. Rosiglitazone attenu-ates transplant arteriosclerosis after allogeneic aorta trans-plantation in ratsJ. Transplantion, 2007, 84(4):517-526. Bolten CW, Payne MA, McDonald WG, et al. Thiazolidinediones inhibit the progression of esta

17、blished hy-pertension in the Dahl salt-sensitive ratJ. Diab Vasc Dis Res, 2007, 4(2):117-123. 张怀勤,胡盛寿,杨德业,等.脐血来源的人类内皮前体细胞培养的实验研究J.中国循环杂志,2003,18(6):456-457. 郭永芳,赵莹,宋达琳,等.冠心病合并代谢综合征危险因素患者胰岛素抵抗与氧化应激的关系J.医学检验与临床,2007,18(2):15-18. 林杰,张怀勤.内皮祖细胞治疗冠脉粥样硬化前景J.中国全 科医学,2007,17(10):1466-1468. Rios-Vazquez R, Ma

18、rzoa-Rivas R, Gil-Ortega I, et al. Per-oxisome proliferator-activated receptor-gamma agonists for management and prevention of vascular disease in patients with and without diabetes mellitusJ. Am J Cardiovasc Drugs, 2006, 6(4):231-242. 10 Meisner F, Walcher D, Gizard F, et al. Effect of rosiglitazon

19、e treatment on plaque inflammation and collagen content in nondiabetic patients: data from a randomized placebo-con-trolled trialJ. Arterioscler Thromb Vasc Biol, 2006, 26(4):845-850.11Dernbach E, Urbich C, Brandes RP, et al. Antioxidative stress-associated genes in circulating progenitor cells: evi

20、- dence for enhanced resistance against oxidative stress J. Blood, 2004,104(12):3591-3597.12Gensch C, Clever Y, Werner C, et al. The PPAR-agonist pioglitazone increases neoangiogenesis and prevents apoptosis of endothelial progenitor cellsJ. Atherosclerosis, 2007, 192(1):67-74.13Dernbach E, Urbich C, Brandes RP, et al. Antioxidative stress-associated genes in circulating progenitor cells: evi-dence for enhanced resistance against oxidative stressJ. Blood, 2004, 104(12):3591-3597.

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