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灵芝多糖对前列腺素E2抑制小鼠脾细胞增殖及IL.docx

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灵芝多糖对前列腺素E2抑制小鼠脾细胞增殖及IL1α, IL2 mRNA表达的拮抗作用 【摘要】 【目的】观察灵芝多糖对前列腺素E2抑制小鼠脾细胞增殖及IL1α、IL2 mRNA表达的拮抗作用。【 方法 】采用混合淋巴细胞培养反应作为实验模型,四甲基偶氮唑盐法检测细胞增殖程度,半定量逆转录聚合酶链反应法检测IL1α及IL2 mRNA的表达水平。【 结果】PGE2连续作用48h后,脾细胞增殖反应受到不同程度的抑制作用,当PGE2浓度在10 μmol/L以上时差异有显着性意义(P<);固定PGE2的浓度为20 μmol/L,并合用不同浓度的GLB,当GLB为100 mg/L以上浓度时可部分对抗PGE2的抑制作用(P<);培养8h及12h后,PGE2可抑制IL1α及IL2 mRNA的表达,GLB为100 mg/L以上浓度时可部分对抗PGE2的抑制作用。【结论】灵芝多糖可部分拮抗前列腺素E2对小鼠脾细胞增殖及IL1α和IL2 mRNA表达的抑制作用。 【关键词】 灵芝多糖/药 ; 肿瘤/中药疗法; 肿瘤/免疫学; 细胞培养   灵芝[Ganoderma lucidum (Leyss ex Fr. Karst.)]是灵芝菌科灵芝属真菌。 文献 报道[1-3],灵芝多糖是灵芝中主要的生物活性成分之一,其主要的药理作用为增强免疫功能和抗肿瘤。 目前 其抗肿瘤作用的机制尚不清楚。肿瘤逃避免疫监视的机制比较复杂,其中之一是有些肿瘤细胞能直接分泌[4-5]或刺激巨噬细胞[6]分泌前列腺素E2(PGE2),后者可对免疫系统产生广泛的抑制作用。藉此,肿瘤得以逃避免疫系统的攻击,在体内无限生长。本 研究 观察了灵芝多糖对PGE2抑制小鼠脾细胞增殖及IL1α和IL2 mRNA表达的 影响 ,探讨灵芝多糖的抗肿瘤免疫学机理。现报道如下。  1 材料与方法  动物 C57BL/6j及BALB/c小鼠,8~10周龄,雌雄兼用,购自南方医科大学实验动物中心,合格证号分别为:2005A044和2005A046。  药品与试剂 RPMI1640培养基;新生牛血清;HEPES;四甲基偶氮唑盐、焦碳酸二乙酯、前列腺素E2均为Sigma产品;RNAoutTM;傻瓜逆转录反应体系[AccuPower RT PreMix, 内含逆转录酶、脱氧核苷三磷酸(dNTPs)、RNA酶抑制剂、缓冲剂等], 傻瓜聚合酶链反应体系均购自赛百盛公司;Oligo d T 18(TaKaRa产品);琼脂糖;溴化乙锭(EB, 上海博彩生物工程公司产品);GLB参照文献方法[7]提取,为多糖组分,呈浅棕色,易溶于水,分子量7 000~9 000D。其他化学试剂均为 分析 纯。  仪器 311型CO2培养箱;AB120型 电子 分析天平;连续波长酶标仪;CS15R台式低温高速离心机;PTC100TMPCR循环仪;Power PAL3000电泳仪;凝胶成像分析系统(法国Ets VILBER LOURMAT公司)。  方法  混合淋巴细胞培养 参照文献[8]进行。  MTT法检测细胞增殖程度 参照文献[8]进行。结果用570nm处的光密度(D570)值表示。  总RNA提取 根据试剂盒说明书所提供的方案按比例缩小进行操作。于96孔板中,每孔加RNAoutTM试剂40μL,每组收集10孔裂解液于LEppendorf管中,提取总RNA。  逆转录反应 DEPC处理水配制的Oligo dT18 (10 nmol/L)与DEPC处理水配制的总RNA 按体积比1∶1混合于Eppendorf管中,70℃孵育5min,4℃冷却2min。吸取上述混合液20μL加入AccuPower RT PreMix 管中,振荡混匀,加石蜡油15μL,1000r/min离心3s,置PCR循环仪中反应。反应参数42℃、60min,94℃、5min。  PCR扩增 PCR引物采用在线Primer 3进行设计。小鼠IL1α:上游引物 5’GCATCCTCACAGCAGGATTT3’,下游引物 5’GAATCCAGGGGAAACACTGA3’,PCR扩增产物为354bp。小鼠IL2:上游引物5’AAGCTCTACAGCGGAAGCAC3’,下游引物5’TCATCGAATTGGCACTCAAA3’,PCR扩增产物为348bp。小鼠βactin:上游引物 5’CCAGAGCAAGAGAGGTATCC3’,下游引物 5’GGGGTGTTGAAGGTCTCAAA3’,PCR扩增产物为216bp。经预实验发现IL1α和IL2 mRNA的表达丰度约为βactin的1/5左右,为了使被检测基因的扩增速率与βactin的扩增速率基本一致,均处于指数扩增范围从而防止平台效应,在进行βactin基因扩增时,将逆转录第1链cDNA 产物稀释5倍,其他条件与被检测基因相同,操作在PCR PreMix 管中加入消毒双蒸水8μL, 被检测基因mRNA逆转录产物2 μL或内参βactin mRNA逆转录产物经5倍稀释后2 μL,相应的上、下游引物各5μL(15pmol),振荡混匀,加石蜡油15μL,1000r/min 离心3s,置PCR循环仪中反应。反应参数 94℃预变性, 然后进入以下28个循环:94℃变性45s,57℃退火1min,72℃延伸。循环完毕,72℃延伸5min。  半定量分析 取被检测基因和βactin RTPCR扩增产物上样于20g/L琼脂糖凝胶梳孔中,采用倍Tris硼酸电泳缓冲液,在3V/cm电压条件下电泳50min。将凝胶转移至凝胶分析系统暗箱中,在紫外线照射下测定PCR扩增产物的荧光强度(I)值。结果表示为:p=[I检测基因/]×100%。  学方法 采用统计软件进行统计分析。混合淋巴细胞培养反应数据的显着性差异采用独立样本t检验;PCR半定量数据采用配对样本t检验。  2 结果  PGE2对混合淋巴细胞培养反应抑制作用的造模浓度 将C57BL/6j及BALB/c小鼠脾细胞按体积比1∶1混合作为MLR模型,PGE2连续作用48h后,小鼠脾细胞增殖受到不同程度的抑制作用,浓度在10 μmol/L以上时差异有显着性意义(P<)。根据表1结果,选择PGE2抑制模型的造模浓度为20 μmol/L。    GLB拮抗PGE2对MLR中脾细胞增殖的抑制作用 在MLR中,固定PGE2的浓度为20 μmol/L,再加入不同浓度的GLB,观察GLB对PGE2的拮抗作用。培养48h后,当GLB为100 mg/L以上浓度时可部分对抗PGE2的抑制作用(P<),但不能恢复至正常水平,结果见表2。  GLB对PGE2抑制MLR中脾细胞IL1α mRNA表达的拮抗作用 培养8h后,GLB可明显促进IL1α mRNA的表达,而PGE2抑制IL1α mRNA的表达。两者合用,GLB为100、200 mg/L的浓度时均可部分对抗PGE2对IL1α mRNA表达的抑制作用,结果见1、表3。  GLB对PGE2抑制MLR中脾细胞IL2 mRNA表达的拮抗作用 培养12h后, GLB同样可以促进IL2 mRNA的表达,而PGE2产生抑制作用,结果两者合用,GLB也可部分对抗PGE2对IL2 mRNA表达的抑制作用,结果见图2、表4。表1 PGE2对MLR中小鼠脾细胞增殖的抑制作用 方法 :t检验;①P<,与阴性对照组比较 表2 GLB拮抗PGE2对MLR中脾细胞增殖的抑制作用统计方法:t检验;①P<,与阴性对照组比较; ②P<,与PGE2组比较表3 GLB对PGE2抑制MLR中脾细胞IL1αmRNA表达的拮抗作用统计方法:t检验;①P<,②P<,与阴性对照组比较;③P<,④P<,与PGE2组比较表4 GLB对PGE2抑制MLR中脾细胞IL2 mRNA表达的拮抗作用统计方法:t检验;①P<,②P<,与阴性对照组比较;③P<,与PGE2组比较   3 讨论 肿瘤发生 的机制十分复杂,其中有些肿瘤能释放出一些可溶性免疫抑制因子,降低宿主免疫力,从而逃避免疫系统的监视。PGE2是众多免疫抑制因子中最重要的一种,合成PGE2的限速酶是环氧化酶2(COX2), 许多良性癌前病变和恶性肿瘤中均有COX2基因的扩增及其蛋白的高表达, 如结直肠腺瘤和腺癌、胃肠上皮化生和胃癌、食管癌、慢性肝炎和肝细胞肿瘤、胰腺癌、口腔黏膜白斑和头颈部肿瘤、腺瘤样不典型增生和非小细胞肺癌、乳腺癌、前列腺癌、膀胱癌、宫颈癌、光化性角化病和皮肤癌、胶质瘤等[9-10]。有些肿瘤除了本身合成和释放PGE2以外,还刺激宿主巨噬细胞产生PGE2[6]。可见,产生PGE2抑制宿主的免疫功能,从而逃避免疫系统的攻击是众多肿瘤得以无限生长的重要机理之一。PGE2对免疫系统的抑制作用广泛而深重,如抑制白介素1[11]和白介素2[12]的产生等。在特异性免疫反应中,巨噬细胞在呈递抗原的同时,合成和释放IL1,IL1再作用于T辅助细胞产生IL2,后者产生广泛的免疫调节作用,包括促进前体细胞毒T细胞的活化,并分化为具有杀伤活性的效应细胞毒T细胞(Tc),Tc在肿瘤免疫中发挥重要作用。 混合淋巴细胞培养反应是同种异型抗原诱发的特异性免疫反应模型,具有特异性免疫应答的一般特征,实验操作简单、方便,得到的结果具有较好的指导意义。本 研究 结果显示PGE2可抑制MLR中小鼠脾细胞的增殖,抑制IL1α和IL2 mRNA的表达,这些结果与以往采用其他模型的研究结果相一致[11-12],说明本研究的模型是可靠的。 灵芝多糖的免疫增强作用和抗肿瘤作用已得到广泛的研究和证实,但其抗肿瘤作用机制尚不十分清楚。本研究发现GLB在100 mg/L以上时可部分对抗PGE2对小鼠脾细胞增殖和IL1α、IL2 mRNA表达的抑制作用(P<),提示灵芝多糖对产生PGE2的肿瘤进行辅助 治疗 具有一定的意义,也提示灵芝多糖拮抗PGE2的免疫抑制作用可能是其抗肿瘤作用的免疫学机制之一。 【 参考 文献 】   [1]Li M C, Liang D S, Xu Z M, et al. Effects of Ganoderma(Ganoderma lucidum) polysaccharide on PKA activity of murine peritoneal macrophages[J]. Chinese Traditional and Herbal Drugs(中草药), 2000, 31(5):353.   [2]Ning A H, Cao J, Huang M, et al. Observation on the immune index and inhibition function of ganoderma polysaccharides to mice tumor[J]. Cancer Research and Clinic (肿瘤研究与临床), 2004,16(3):147.   [3]Zhao S H,Yao W S,Pang X S,et al. Isolation,purification,characterization and antitumor activities of Ganoderma Lucidum polysaccharide[J]. Chinese Journal of Biochemical Pharmaceutics( 中国 生化药物杂志), 2003,24(4):173.   [4]Ye F, Wu J, Dunn T, et al. Inhibition of cyclooxygenase2 activity in head and neck cancer cells by genistn[J]. Cancer Lett, 2004, 211(1): 39.   [5]Mitsuhashi M, Liu J, Cao S, et al. Regulation of interleukin12 gene expression and its antitumor activities by prostaglandin E2 derived from mammary carcinomas[J]. J Leukoc Biol, 2004, 76(2): 322.   [6]Trejo Y G, Bordenave R H, Beviacqua M, et al. In vitro secretion of cytokines and prostaglandinE2 by monocytes from lung cancer patients[J]. Respir Med, 2001, 95(4): 243.   [7]Li R Z, He Y Q. The relation between antiaging mechanism and the active constituents of Ganoderma lucidum: Study of the chemistry and structureactivity relationship of ganoderma polysaccharides[J]. Journal of Bjing Medical University, 1991,23(6):473.   [8]Sun L S, Lei L S, Fang F Z, et al. Inhibitory effects of koumine on splenocyte proliferation and humoral immune response in mice[J]. Pharmacology and Clinics of Chinese Materia Medica(中药药理与临床), 1999,15(6):10.   [9]Dannenberg A J, Altorki N K, Boyle J O, et al. Cyclo oxygenase 2: a pharmacological target for the prevention of cancer[J]. Lancet Oncol, 2001, 2(9): 544.   [10]Howe L R, Dannenberg A J. A role for cyclooxygenase2 inhibitors in the prevention and treatment of cancer[J]. Semin Oncol, 2002,29(3 Suppl 11):111.   [11]Funaki N, Arii S,Adachi Y, et al. Effect of PGE2 on interleukin-1 and superoxide release from primarycultured human hepatic macrophages[J]. Life Sci, 1992,51(17):1339.   [12]Emond V, Fortier M A,Murphy B D, et al. Prostaglandin E2 regulates both interleukin-2 and granulocytemacrophage colonystimulating factor gene expression in bovine lymphocytes[J]. Biol Reprod,1998,58(1): 143.
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