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CD8mAb对呼吸道合胞病毒诱导的哮喘小鼠气道炎症的影响
【摘要】 目的: 观察CD8mAb对呼吸道合胞病毒诱导哮喘小鼠气道炎症的影响. 方法: Balb/c小鼠50只,随机分成5组: 磷酸盐缓冲液对照组;卵白蛋白组;OVA/RSV模型组;CD8mAb治疗组;IgG2αmAb治疗对照组. 应用OVA腹腔注射致敏、OVA气道雾化结合RSV滴鼻激发复制小鼠哮喘模型,观察实验动物气道炎症和气道反应性变化,支气管肺泡灌洗液作细胞分类计数,测定BALF上清中白细胞介素4, IL5, 干扰素γ含量并采用三色光流式细胞分析法检测气管旁淋巴结中CD4+, CD8+T细胞及细胞内细胞因子IFNγ, IL4, IL5表达. 结果: 与模型组相比,CD8mAb可明显减轻小鼠气道炎症和气道高反应. CD8mAb治疗后BALF中嗜酸性粒细胞及上清中细胞因子IFNγ, IL4, IL5含量明显减少,CD8+T细胞百分比及Tc2/Tc1比值明显下降. PBLN中CD8+T细胞百分比与BALF中IFNγ, IL4, IL5含量呈显着正相关(分别rs=, ; rs=, ; rs=, ). 结论: CD8mAb对RSV诱导的哮喘小鼠气道炎症和气道高反应具有抑制作用,其部分机制可能与致敏条件下病毒感染引起CD8+T细胞功能发生转化,即由产生IFNγ为特征的细胞毒CD8+T细胞转化为产生IL4, IL5为特征的非细胞毒CD8+T细胞有关.
【关键词】 呼吸道合胞病毒;哮喘;CD8+T细胞;CD8单克隆抗体;气道炎症
0引言
临床及流行病学研究表明,呼吸道病毒感染是哮喘急性加重、致死的重要原因[1]. Osullivan等[2]在因重度哮喘死亡患者的肺标本中检测到呼吸道合胞病毒,鼻病毒基因组,并发现气管旁有大量CD8+T细胞浸润,且CD8+T细胞表面分子CD25,穿孔素表达增高,提示重度哮喘患者气道局部存在CD8+T细胞数量和功能的异常. Schwarze等[3]的研究表明,病毒诱导的哮喘与过敏性哮喘在气道炎症的发生机制上有所不同,前者的Th2型炎症主要由CD8+T细胞产生和维持,而后者主要由CD4+T细胞产生和维持. 上述研究提示,CD8+T细胞在呼吸道病毒诱导的哮喘发作及急性加重中起重要作用. 因此,我们采用RSV诱导的小鼠哮喘模型,观察CD8mAb对哮喘气道炎症和气道反应性的影响.
1材料和方法
材料
动物、试剂和仪器清洁级雌性Balb/c小鼠50只,6~8周龄,体质量17~20 g. 乙酰胆碱,卵白蛋白; IFNγ, IL4, IL5酶联免疫吸附试验试剂Kit; 大鼠抗小鼠CD8a(Ly2) mAb,大鼠抗小鼠IgG2αmAb对照抗体;流式细胞检测试剂盒包括:刺激剂卟啉醇肉豆蔻酸乙酸酯,离子霉素, 阻断剂(brefeldinA,BFA),大鼠抗小鼠PECy5标记CD3, FITC标记CD8,PE标记IFNγ, IL4, IL5 mAb及大鼠IgG1阴性对照(Caltag);动物肺功能体描箱,呼吸机(北京鑫奥成科技有限公司提供);软件分析系统,酶标仪,真空冻干机,FACScalibur流式细胞仪.
细胞和病毒RSV Long株A型;人喉癌上皮细胞. HEp2细胞在含100 mL/L灭活胎牛血清的DMEM中37℃, 50 mL/L CO2条件下培养,细胞长满单层后,RSV接种HEp2细胞,继续在含20 mL/L灭活胎牛血清的DMEM的维持液中培养,待细胞病变达100%时收获病毒,并冻存于-80℃冰箱中,反复冻融、离心后,留上清备用. 参照文献[4]的方法采用空斑形成试验测定病毒滴度,取滴度为×106空斑形成单位RSV备用.
方法
实验分组和动物模型 Balb/c小鼠50只随机分成5组,每组10只,分别为磷酸盐缓冲液对照组;卵白蛋白(OVA)组;OVA/RSV模型组;CD8mAb治疗组;IgG2αmAb治疗对照组. 动物分别于第1,14日腹腔注射致敏液 mL,第15日起将小鼠置于透明密闭容器中以10 g/L OVA溶液10 mL雾化吸入,每次20 min,隔日1次,连续5 wk,并分别于第21, 35, 49日用滴度为×106 PFu/mL的RSV 50 μL鼻腔滴入,每日观察小鼠症状,于最后1次RSV滴入4 d后测气道反应性. CD8mAb治疗组和IgG2αmAb治疗对照组分别于RSV应用6 h后按1 mg/kg ip CD8mAb和IgG2αmAb对照抗体.
气道反应性测定小鼠经腹腔麻醉、气管切开后,置密闭体描箱中,吸气管、呼气管、测压管按指示连接,小鼠按频率90次/min、潮气量5~6 mL/kg机械通气,调节呼气末压为-8 cmH2O,记录经肺压、流速、潮气容积变化. 气道反应性用ACH激发后以肺阻力(RL)表示,将ACH分别按浓度、容积为35 μL/次尾静脉注射激发,经肺压和潮气容积曲线回到基线后,将浓度增加3倍,每次应用ACH后记录至少10次峰反应的肺变量.
肺泡灌洗液(
BALF)细胞分类计数以 mL PBS进行肺泡灌洗,反复2次,1200 r/min离心5 min,上清保存在-20℃冰箱中待测定细胞因子. 沉淀细胞用 mLHanks液重悬,取 mL进行细胞计数,其余沉淀细胞经涂片,瑞氏吉姆莎染色,按细胞形态进行分类计数(至少计数200个细胞).
细胞因子测定将BALF上清放入真空冻干机内-70℃冻干后,加入200 μL生理盐水重融,按ELISA试剂说明书检测其中IFNγ, IL14, IL5含量.
三色光流式细胞分析取气管旁淋巴结(PBLN)3~4枚,眼科剪仔细剪碎,经300目尼龙膜过筛获单细胞悬液,1200 r/min离心5 min, 将沉淀细胞置于RPMI1640培养液中,调整细胞密度为×105/L,按参考文献[5]的方法进行流式细胞检测.
肺组织病理学变化取右肺中叶进行乙醇脱水,石蜡包埋连续切片,常规苏木素伊红染色观察大体组织病变和炎症细胞浸润情况.
统计学处理: 实验数据以x±s表示,用统计软件进行分析,气道反应性变化采用析因设计方差分析,其余指标组间比较采用单因素方差分析,相关性采用Spearman等级相关分析,以为差异有统计学意义.
2结果
2.1气道反应性变化当ACH分别按5, 15 和45 g/L浓度激发时,OVA组RL分别为,(±)和(±)cmH2o/(mL・s);与OVA/RSV模型组,(±)和(±)cmH2o/(mL・s)比较,两组差异具有统计学意义;与OVA/RSV模型组比较,应用CD8mAb后,(±) 和(±)cmH2o/(mL・s),气道反应性明显下降. vs OVA 组; vs OVA/RSV模型组. OVA:卵白蛋白; RSV: 呼吸道合胞病毒; ACH: 乙酰胆碱.图1各组动物气道反应性变化细胞分类计数及上清细胞因子表达与OVA组比较,OVA/RSV模型组嗜酸性粒细胞及细胞因子IFNγ, IL4, IL5明显升高. 应用CD8mAb后嗜酸性粒细胞及细胞因子IFNγ, IL4, IL5明显下降. 表1各组BLAF中细胞分类计数
中CD4+, CD8+T细胞及胞内细胞因子表达与OVA组比较,OVA/RSV模型组CD8+T细胞百分比及Tc2/Tc1比值明显升高. 应用CD8mAb后CD8+T细胞百分比、Tc2/Tc1比值下降.表2各组PBLN中CD4+, CD8+T细胞及胞内细胞因子表达变化
肺组织病理学变化OVA/RSV模型组气道上皮增厚、破坏,管腔狭窄,有支气管收缩征象,管壁周围大量炎症细胞浸润. CD8mAb治疗后气道上皮增厚,管腔狭窄,管壁周围炎症细胞浸润较模型组减轻. 治疗对照组与模型组比较无明显变化. OVA组气道上皮增厚,管壁周围炎症细胞浸润程度亦较模型组减轻. PBS组未见明显病理变化.
相关性分析经Spearman 等级相关分析, PBLN中CD8+T细胞百分比与BALF中IFNγ, IL4, IL5细胞因子含量呈显着正相关(分别rs=, ; rs=, ; rs=, ).
3讨论
本研究观察到,与OVA组比较,OVA/RSV模型组小鼠气道炎症、肺阻力明显增加,提示OVA致敏后RSV感染可显着加重哮喘,这与大部分的研究结果相同[6]. 采用流式细胞分析进一步检测PBLN中CD4+,CD8+T细胞百分比发现,OVA/RSV模型组CD8+T细胞百分比及Tc2/Tc1比值较OVA组明显升高,且CD8+T细胞百分比与BALF中IFNγ, IL4, IL5细胞因子含量呈显着正相关,提示与OVA致敏性哮喘不同,OVA致敏条件下RSV感染后BALF中IFNγ, IL4, IL5细胞因子主要来源于CD8+T细胞,即CD8+T细胞,尤其Tc2在呼吸道病毒诱导的哮喘加重中起重要作用. 新近研究表明[7],外源性IL4能体外诱导CD8+T细胞分泌Th2型细胞因子如IL5, IL13,提示在哮喘患者IL4表达占优势的环境中,病毒感染可刺激CD8+T细胞合成Th2型细胞因子,这可能是呼吸道病毒加重哮喘的原因.
应用CD8mAb后,OVA/RSV模型组小鼠气道反应性明显下降,BALF中IL4, IL5, IFNγ含量及嗜酸性粒细胞均显着下降,气道周围炎症细胞浸润亦明显减轻,提示CD8mAb可显着抑制RSV感染相关哮喘的气道炎症和AHR. 这可能与致敏条件下在Th2型细胞因子环境中,RSV感染引起细胞毒CD8+T细胞转化为产生IL5的非细胞毒T细胞,CD8mAb对其的抑制可使Th2型细胞因子和嗜酸性粒细胞气道分泌、趋化减少有关. 当然,CD8+T细胞对气道上皮产生直接破坏以及CD8+T细胞介导嗜酸性粒细胞脱颗粒,其中释放的主要碱性蛋白(MBP)能结合气道平滑肌M2受体导致M2受体功能下降,促进AHR[8],CD8mAb对其的抑制效应可在保护气道上皮、减轻气道炎症和AHR中起一定作用.
综上所述,OVA致敏条件下RSV感染可明显增加气道炎症和气道反应性,其中CD8+T细胞表型的转化加重Th2型气道炎症并导致大量嗜酸性粒细胞气道募集可能起重要作用. 由于临床上病毒诱发的哮喘十分频繁,且与哮喘的急性加重密切相关,针对CD8+T细胞的单克隆抗体治疗有可能在减少哮喘的急性发作,减轻哮喘病情、降低死亡率探索一条新途径.
【参考文献】
[1] Teichtahl H, Buckmaster N, Pertnikovs E. The incidence of respiratory tract infection in adults requiring hospitalization for asthma[J]. Chest, 1997,112(3):591-596.
[2] OSullivan S, Cormican L, Faul JL, et al. Activated cytotoxic CD8+T lymphocytes contribute to the pathology of asthma death [J]. Am J Respir Crit Care Med, 2001,164(4):560-565.
[3] Schwarze J, Cieslewicz G, Joetham A, et al. CD8+T cells are essential in the development of respiratory syncytial virusinduced lung eosinophilia and airway hyperresponsiveness[J]. J Immunol, 1999,162(7):4207-4211.
[4] 邹毅,黄海鹭,徐军, 等. 小鼠的原发性呼吸道合胞病毒感染[J]. 中华结核和呼吸杂志, 2001,24(8):484-486.
[5] 王苹莉, 沈华浩, 王绍斌. 卡介苗对哮喘小鼠TH1/TH2平衡的影响[J]. 中华微生物和免疫学杂志,2004,24:370-372.
[6] Makela MJ, Tripp R, Dakhama A, et al. Prior airway exposure to allergen increases virusinduced airway hyperresponsiveness[J]. J Allergy Clin Immunol, 2003,112(5):861-869.
[7] Stanciu LA, Roberts K, Papadopoulos NG, et al. IL4 increases type 2, but not type 1, cytokine production in CD8+ T cells from mild atopic asthmatics [J]. Respir Res, 2005,6:67.
[8] Darryl J, Adamko, Allison D, et al. CD8+T lymphocytes in viral hyperreactivity and M2 Muscarinic receptor dysfunction[J]. Am J Respir Crit Care Med, 2003,167(4):550-556.
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