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NK细胞对人鼻咽癌细胞CNE2裸鼠皮下移植瘤的抑制作用.docx

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NK细胞对人鼻咽癌细胞CNE2裸鼠皮下移植瘤的抑制作用 【摘要】 目的 研究同种异体NK细胞对人鼻咽癌细胞裸鼠皮下移植瘤的抑制作用。方法 PCRSSP法检测CNE2细胞HLAA、B、Cw表型、NK细胞KIR表型,磁珠分离法分离NK细胞并进行体外培养扩增,LDH释放法测定NK细胞对CNE2细胞的体外杀伤活性。12只BALB/c裸鼠分为两组,每组6只,对照组裸鼠每只皮下接种1×106CNE2细胞,治疗组裸鼠每只皮下接种1×106CNE2细胞,同时每只经尾静脉注入3×107NK细胞,观察两组裸鼠成瘤时间、成瘤率、肿瘤体积变化、计算抑瘤率。结果 CNE2细胞表面HLAA、B、Cw 表型为A2,24;B18,35;Cw4,7,3例健康者均表达KIR2DL1、KIR2DL3、KIR3DL1、KIR3DL2。效靶比5∶1、10∶1、20∶1、30∶1时,NK细胞对CNE2细胞的杀伤活性分别为(±)%、(±)%、(±)% and (±)%。对照组和NK细胞治疗组肿瘤出现时间分别为(±)d、(±)d,(P),成瘤率分别为100%、%,对照组和NK细胞治疗组裸鼠的瘤重分别为(±)g、(±)g,(P),NK治疗组的抑瘤率为%。肿瘤组织石蜡切片病理学鉴定为低分化鳞状上皮细胞癌,NK细胞治疗组可见角化肿瘤细胞,较多的淋巴细胞浸润和大量细胞坏死区。结论 NK细胞对鼻咽癌裸鼠皮下移植瘤有明显的抑制作用,有希望成为治疗鼻咽癌的新方法。 【关键词】 鼻咽癌;自然杀伤细胞;裸鼠;移植瘤;杀伤细胞免疫球蛋白样受体;细胞治疗 鼻咽癌是我国南方常见的恶性肿瘤,早期患者采用放射治疗常能取得较好的治疗效果,晚期患者放射治疗联合化学治疗虽能提高局部控制率,但未能提高总体生存率[1]。异基因骨髓移植中供受者之间杀伤细胞免疫球蛋白样受体配体错配(KIR配体错配)引发的同种异体反应性NK细胞活性可以防止白血病细胞复发,使NK细胞的抗肿瘤治疗作用日益得到医学研究者的重视。此前我们的体外实验表明同种异体NK细胞对CNE2细胞具有较强的杀伤活性。本研究以同种异体NK细胞为效应细胞,观察其对人鼻咽癌细胞裸鼠皮下移植瘤生长的影响,为鼻咽癌的治疗探索一种新的方法。 1 材料和方法  材料 分离NK细胞用的缓冲液(磷酸盐缓冲液,,加入%BSA,2mmol/lEDTA,Miltenyi Biotec公司产品),CD56 MicroBeads (Miltenyi Biotec公司产品),RPMI 1640(Gibco公司产品),淋巴细胞分离液(上海试剂二厂产品),rhIL2、PHA (Sigma公司产品),人鼻咽癌细胞株CNE2购于军事医学科学院。  方法  NK细胞的分离纯化 采用常规密度梯度离心法分离3例健康人外周血单个核细胞,PBS洗涤2次,计数细胞,CD56 MicroBeads作MACS细胞阳性分选,获得CD3-CD56+细胞即为NK细胞。  细胞培养 细胞培养基为含10%胎牛血清、100U/ml青霉素和100μg/ml链霉素的RPMI 1640。培养NK细胞时加入1 000U/ml rhIL2,PHA 10μg/ml。  CNE2细胞表面HLAA、B、Cw基因分型 采用PCRSSP法,按PCRSSPA、B、Cw特异性引物试剂盒说明操作。  KIR基因分型 采用PCRSSP法,按KIR基因分型试剂盒说明操作。  动物实验  裸鼠 选取体重15~20g的4~6周BALB/c裸鼠12只,分2组,每组6只,雌雄各半,在第一军医大学SPF动物实验中心饲养。  裸鼠接种 对数生长期的CNE2细胞经胰酶消化、离心收集、计数后重悬于无血清RPMI 1640培养基中,配制成每含1×106个肿瘤细胞的悬液,用1ml注射器将细胞悬液注射于BALB/c裸鼠背部皮下,NK细胞治疗组,NK细胞悬于无血清RPMI1640培养基中计数,配制成每含3×107个细胞的悬液,用1ml注射器将细胞悬液经尾静脉注射于BALB/c裸鼠体内(每例健康者的NK细胞分别注射2只BALB/c裸鼠),尾静脉注射NK细胞与皮下注射CNE2细胞同一天进行。  肿瘤生长情况监测及肿瘤的病理变化观察 自细胞注射之日起,观察两组裸鼠成瘤时间、成瘤率,待肿瘤出现后用游标卡尺测量肿瘤块2个方向的直径,分别记为a、b,肿瘤体积计算公式:V=1/2ab2。肿瘤出现后3周处死裸鼠,测肿瘤重量,计算肿瘤生长抑制率:肿瘤生长抑制率=(1-处理组肿瘤重量/ 对照组肿瘤重量)×100% 。肿瘤标本称重后,常规福尔马林固定,石蜡包埋,5μm连续切片,分别行HE染色,观察病理变化。  统计学方法 应用软件进行数据处理,数据以±s表示,采用独立样本t检验。   2 结果  NK细胞的纯度 流式细胞仪检测CD3-CD16+CD56+细胞的纯度为(±)%。  CNE2细胞表面HLAA、B、Cw基因分型结果 CNE2细胞表面HLAA、B、Cw表型为A2, 24;B18,35;Cw4, 7。  KIR基因分型 3例健康人均表达KIR2DL1、KIR2DL3、KIR3DL1、KIR3DL2。  NK细胞对CNE2细胞的体外杀伤活性 效靶比5∶1、10∶1、20∶1、30∶1时,NK细胞对CNE2细胞的杀伤活性分虽为%。  肿瘤的生长情况 单纯接种CNE2细胞组和CNE2+NK细胞治疗组,肿瘤出现时间分别为(±)d、(±)d,(P),NK细胞治疗组成瘤时间较CNE2细胞组明显延长。  NK 细胞抑制CNE2移植瘤的生长 实验结果表明NK细胞能有效抑制肿瘤细胞生长, 生长曲线显示NK细胞能明显减缓CNE2细胞BALB/c裸鼠体内移植肿瘤的生长速度,见图1。 图1 NK细胞对CNE2移植肿瘤生长的影响  各组裸鼠瘤重、抑瘤率 CNE2细胞组和CNE2+NK治疗组裸鼠的肿瘤重量分别为(±)g、(±)g ,(P)。NK细胞治疗组肿瘤抑制率为%。  肿瘤组织病理改变 成瘤组织经HE病理切片鉴定为低分化鳞状上皮细胞癌,细胞呈多边形,细胞核卵圆形或不规则形,核仁较明显,核分离相多见。NK细胞治疗组可见角化肿瘤细胞,较多的炎性细胞浸润和大量细胞坏死区,见图2。 3 讨 论 NK细胞是机体内重要的淋巴细胞亚群, 在肿瘤免疫中NK细胞构成了第一道杀伤防线。NK细胞表面的抑制性杀伤细胞免疫球蛋白样受体(iKIR)与靶细胞表面特定的HLA I 类分子结合抑制NK细胞的活性,靶细胞缺乏iKIR特定的配体(KIR配体错配)将激发NK细胞对靶细胞的杀伤活性。不同的iKIR分子识别并结合不同的HLA I 类分子。KIR2DL1识别HLACw2、Cw4、Cw5、Cw6;KIR2DL2/2DL3识别HLACw1、Cw3、Cw7、Cw8;KIR3DL1识别HLABw4;KIR3DL2识别HLAA3,A11;其余的KIR配体尚未明确。KIR2DL1、KIR2DL2/2DL3、KIR3DL1、KIR3DL2是目前已知的影响NK细胞同种异体反应性的主要抑制性受体。 本研究表明CNE2细胞表面HLAA、B、Cw表型为A2,24、B18,35、Cw4,7,不表达Bw4、A3、A11分子,因此3例健康个体体内表达KIR3DL1、KIR3DL2的NK细胞与CNE2细胞之间存在KIR配体错配现象。KIR3DL2为NK细胞的框架基因,任意个体的NK细胞均表达KIR3DL2,因此任意个体的NK细胞均与CNE2细胞之间存在着KIR配体错配现象。 NKG2D是介导NK细胞杀伤活性的主要活化性受体,表达在所有NK细胞上,靶细胞表面的MICA/MICB分子是NKG2D的主要活化性配体,MICA/ MICB与受体NKG2D结合后可以激活NK细胞对表达MICA/MICB分子的肿瘤细胞的杀伤。 我们的研究表明,CNE2细胞表面表达NK细胞活化性受体NK2D的配体MICA/MICB等,结合KIR检测结果表明,任意个体的NK细胞均存在杀伤CNE2细胞的分子基础,体外杀伤实验显示NK细胞对CNE2细胞的杀伤活性在效靶比30∶1时为(±)%。 本研究中动物实验表明, NK细胞治疗组成瘤时间较CNE2细胞组明显延长,治疗组肿瘤体积较对照组明显减小,NK细胞治疗组肿瘤抑制率为%,成瘤组织病理学证实两组均为低分化鳞状上皮细胞癌,NK细胞治疗组较对照组可见角化肿瘤细胞,有明显的淋巴细胞浸润和肿瘤坏死区,表明NK细胞能有效抑制CNE2移植瘤的生长。 本研究提示NK细胞能有效抑制CNE2裸鼠移植瘤的生长,为鼻咽癌的治疗提供了另一种方法,但尚需大规模的体内实验,为临床应用提供充分的依据。 【参考文献】 [1] Chua DT, Sham JS , Au GK, et al. Concomitant chemoirradiation for stage ⅢⅣ nasopharyngeal carcinoma in Chinese patients : results of a matched cohort analysis“[J“].Int J Radiat Oncol Biol Phys, 2002, 53(2): 334343. “[2“] Hsu KC, KeeverTaylor CA, Wilton A, et al. Improved outcome in HLAidentical sibling hematopoietic stemcell transplantation for acute myelogenous leukemia predicted by KIR and HLA genotypes “[J“]. Blood, 2005, 105(12): 48784884. “[3“] 梅家转,郭坤元,魏红梅,等. NKG2D介导NK细胞对鼻咽癌细胞杀伤作用的体外研究“[J“]. 肿瘤防治研究,2007,34:233236. “[4“] Vanhaesebroeck B, Mareel M, Van Roy F, et al. Expression of the tumor necrosis factor gene in tumor cells correlates with reduced tumorigenicity and reduced invasiveness in vivo“[J“]. Cancer Res,1991,51: 22292238. “[5“] Mivechi NF, Dewey WC. DNA polymerase alpha and beta activities during the cell cycle and their role in heat radiosensitization in Chinese hamster ovary cells “[J“]. Radiat Res, 1985, 103(3): 337350. “[6“] Ruggeri L, Capanni M, Mancusi A, et al. Alloreactive natural killer cells in mismatched hematopoietic stem cell transplantation “[J“]. Blood Cells Mol Dis, 2004, 33(3): 216221. “[7“] Pende D, Rivera P, Marcenaro S, et al. Major Histocompatibility Complex Class Irelated Chain A and UL16Binding Protein Expression on Tumor Cell Lines of Different Histotypes: Analysis of Tumor Susceptibility to NKG2Ddependent Natural Killer Cell Cytotoxicity“[J“]. Cancer Res, 2002, 62(21):61786186.
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