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外源性VEGF诱导的大鼠视网膜血管病变.docx

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外源性VEGF诱导的大鼠视网膜血管病变 【摘要】 目的:探讨外源性VEGF诱导的大鼠视网膜血管病变的特点。方法:大鼠120只随机分为正常对照组、 rrVEGF164低、高浓度组。不同时间行荧光素眼底血管造影、视网膜电图振荡电位、组织学检查。结果:高浓度组注射rrVEGF164眼从注射后10d表现为眼底后极部视网膜动脉局限性高荧光,2wk时表现为单个视网膜内核层毛细血管管腔窄小,内皮细胞肥大,管腔面积和细胞面积分别与自身对照眼、4,6wk比较,差异有显着性。视网膜电图OPs总波幅2,6wk降低,分别与自身对照眼、4wk比较,差异有显着性。结论:高浓度高频率注射rrVEGF164 诱导的大鼠视网膜血管病变主要表现有视网膜水肿,大血管扩张,内核层毛细血管管腔变窄、接近闭塞,内皮细胞肥大、增生,周边部玻璃体视网膜纤维血管样膜。 【关键词】 视网膜毛细血管 0引言 VEGF是最重要的促血管形成因子,组织缺血、缺氧是VEGF的启动因素。缺血性眼病的视网膜、视网膜下新生血管膜等均有VEGF的表达,眼内VEGF浓度明显升高[1]。目前有关VEGF的研究大多是离体拮抗外源性VEGF或在体拮抗内源性VEGF的药物抑制实验,而单独应用外源性VEGF进行动物实验,探讨VEGF诱导的视网膜血管病变的特点,国内外研究甚少。我们探讨外源性VEGF诱导的视网膜血管病变的特点,为进一步研究药物拮抗VEGF打下基础。 1材料和方法 材料 Sprague-Daweley大鼠120只随机分为3组:正常对照组36只,不作眼内注射。VEGF低浓度组36只,实验眼每次注射浓度为10mg/L 的rrVEGF164 4μL,自身对照眼注射等量的/L PBS。两眼均为隔天1次,共2次。VEGF高浓度组48只,实验眼每次注射浓度为100mg/L的 rrVEGF164 4μL,自身对照眼注射等量的/L PBS。两眼均为隔天1次,共4次。分别于2,4,6wk时均作眼底检查后各随机选取6只作眼底荧光血管造影、6只作视网膜电图振荡电位检查,再各随机抽取6只处死作组织学切片、6只处死作透射电子显微镜观察。VEGF高浓度组剩余12只于12wk时处死,随机选取各6只行组织学切片、透射电子显微镜检查。 Topcon眼底照相机,视觉电生理诊断仪,正方测试格,玻璃毛细管,重组大鼠血管内皮生长因子, FITC-Dextran。 方法 大鼠充分散瞳后,30g/L戊巴比妥钠溶液ip麻醉。结膜囊表面麻醉,眼科手术显微镜下用30#B-D针头于背侧角膜缘后1mm处刺穿眼球壁后立即出针,角膜缘行前房穿刺,消毒剪刀将自制玻璃体腔微量注射针针尖剪去,暴露开口。10μL加样移液器抽取rrVEGF164 或PBS 4μL注于消毒的点样纸上。自制玻璃体腔微量注射针立即吸取。沿预先穿刺好的针孔处以45~50°的角度进入眼内并缓慢注射,停留约15s后拔针。术眼涂眼膏,术后3d用3g/L诺氟沙星滴眼液滴眼,2次/d。注射rrVEGF164或PBS前、后,出现玻璃体出血者不纳入实验对象。散瞳后,ip麻醉大鼠,结膜囊表面麻醉。暗适应30min,暗红光下安放3个电极,小号银针柄端连接于电极线末端后,角膜电极插于上方周边部角膜基质层,参考电极置于两眼连线的中点皮下,地电极置于同侧耳根皮下,黑色胶纸遮盖未检查眼。根据国际临床视觉电生理学会制定的视觉电生理标准化方案,设定刺激参数,双眼分别记录视网膜电图振荡电位(electroretinographic oscillatory potentials, ERG-OPs)。散瞳后眼底荧光血管造影,鼠尾静脉注射50g/L FITC-Dextran ,固定动物,注射造影剂后5s,各个方位眼底照相,每次拍片间隔5~10s,持续3min,选择性拍片直至注射造影剂50min。剥离视网膜,常规电镜制片,每只大鼠每眼随机观察2个铜网,每个铜网随机照相2张。同一组、同一眼别的样本分散,使各组样本容量达24张。对视网膜内核层单个毛细血管管腔面积、血管内皮细胞面积进行形态计量,采用正方测试格计数法测量视网膜内核层单个毛细血管管腔面积、血管内皮细胞的面积。 统计学处理:所有数据均用均数±标准差表示,采用SPSS for Windows 统计软件处理。资料正态检验,方差齐性检验后,单因素方差分析,两因素方差分析,P<为统计学差异有显着性。 2结果 直接眼底镜观察 注射rrVEGF164眼低浓度组在注射后1d表现为玻璃体腔轻度混浊,随后逐渐减轻,至3d恢复透明。高浓度组在注射后1d表现玻璃体中度混浊,5~6d后玻璃体腔恢复透明。约10d表现为眼底后极部大血管轻度结节样扩张,周围视网膜轻度水肿,2wk时重度扩张,4wk时有所加重。6wk时与4wk时相比无明显变化。 12wk时玻璃体腔出现纤维组织增生,眼底模糊不清。注射PBS眼无玻璃体混浊,低浓度组和注射PBS眼未出现结节样扩张和视网膜水肿。 眼底荧光血管造影 高浓度组注射rrVEGF164眼视网膜中央动脉约11s开始充盈,灌注时间较正常组延长。注射rrVEGF164后10d表现为眼底后极部视网膜动脉局限性高荧光,荧光素从中央区开始消退。2wk时呈结节样扩张,随时间延长而明显,6wk时与4wk时比较无明显加重。未见视网膜前新生血管渗漏征象。3mo时玻璃体腔纤维血管样组织增生,眼底观察困难,未行造影检查。 组织学观察 光镜下低浓度组可见视网膜水肿,各个层次厚度无明显变化。未见突破视网膜内界膜的血管内皮细胞。高浓度组10d时轻度视网膜水肿,2wk时视网膜水肿加重,6wk时视网膜内界膜不完整,视网膜前纤维组织样增生,12wk时在眼底周边部玻璃体视网膜纤维血管样组织增生。透射电镜显示正常大鼠视网膜内核层毛细血管内皮细胞呈扁长形,细胞核较大,突入毛细血管管腔内。胞质稀少,含有高尔基体、线粒体、粗面内质网等超微结构。高浓度组实验眼2wk时表现为视网膜内核层单个毛细血管内皮细胞肥大、管腔面积变窄,4wk与6wk时血管管腔、细胞面积恢复正常, 但是6wk时血管内皮细胞增生明显。12wk血管内皮细胞增生,毛细血管接近闭塞。内核层单个视网膜毛细血管管腔面积和单个视网膜毛细血管内皮细胞面积经配伍设计两因素方差分析,注射rrVEGF164眼同一浓度不同时间各组间比较:100mg/L组差异有显着性,单个视网膜毛细血管管腔面积F=,P=。进一步用多个样本均数q检验,4wk与6wk组差异无显着性,P=,2wk组与4wk组,2wk组与6wk组差异有显着性。单个视网膜毛细血管内皮细胞面积 F=,P=。进一步用多个样本均数q检验,4wk组与6wk组比较差异无显着性,P=,2wk组与4wk组,2wk组与6wk组差异有显着性(表1)。 视网膜电图振荡电位总波幅 经配伍设计两因素方差分析,同一浓度不同时间各组间比较:100mg/L组差异有显着性,F=,P=。进一步用多个样本均数q检验,2wk组与6wk组比较,差异无显着性,P=。2wk组与4wk组,6wk组与4wk组差异有显着性。   3讨论 玻璃体腔注射的量过低,玻璃体腔药物浓度、药物在玻璃体内的弥散受影响。Dureau等研究发现注射量为3μL或者5μL具有丢失量少、可重复性等优点。而Hayashi等的经验是:对200~250g的白化病大鼠注射玻璃体的液体量的原则是最大量不超过玻璃体容积的10%。综合考虑,本实验选择大鼠玻璃体腔内注射rrVEGF164的体积为4μL,前房穿刺可防止注射后眼压升高。高分子量右旋糖苷标记的荧光素不会从血管内漏出,背景荧光很低。为了比较清晰的显示视网膜血管病变,不遗漏可能出现的早期新生血管,我们选择50g/L FITC-dextran 1mL鼠尾静脉注射眼底血管造影,大鼠视网膜血管系统显示清晰。正常大鼠眼底荧光血管造影与人眼比较,具有灌注时间短、荧光素完全消退时间延长等特点。我们推测可能与大鼠体表面积少、高分子量的右旋糖苷标记物使荧光素衰减慢有关。 研究糖尿病视网膜病变时最常用的指标是振荡电位各子波波幅的总和。实验中我们诱导的早期视网膜血管病变在一定程度上类似于糖尿病性视网膜病变的早期改变,但未发现明显的视网膜缺血无灌注区域。可能有如下原因:VEGF的浓度和刺激时间不足;极周边部视网膜即使出现上述病变,造影时的角度、动物麻醉时的眼位固定状态也可能影响造影时观察,难以发现。实验结果显示高浓度组2wk时视网膜内核层血管内皮细胞肥大,血管管腔面积减少。我们推测这种改变影响组织的血液供应,导致视网膜的缺血。因此可能引起的OPs改变先于a,b波的改变。因此我们选择OPs的总波幅作为观察指标。结果显示高浓度组2wk时SAOPs降低,说明血管内皮细胞肥大,毛细血管管腔变窄导致了视网膜缺血。 VEGF作为一种重要的促进新生血管形成因子,已被人们所认识。VEGF的明胶微球置于猕猴的视网膜下后,视网膜下新生血管的形成率为92%。Alikcacem等将VEGF缓释装置置入兔的玻璃体腔,诱导的视网膜病变与增殖性糖尿病视网膜病变类似。Tolentino等认为VEGF诱导的猕猴视网膜出血、水肿、静脉串珠、毛细血管闭塞、微血管瘤、视网膜内血管组织增生等视网膜病变类似于糖尿病性视网膜病变和其他缺血性视网膜病变。采用ADPase染色的方法,证明周边部眼底存在视网膜前新生血管。VEGF诱导猴视网膜血管内皮细胞肥大亦有报道。本研究显示:低浓度作用,玻璃体视网膜血管病变不明显。高浓度短时间作用可以诱导视网膜内核层毛细血管内皮细胞肥大,管腔面积减少。高浓度较长时间可以诱导血管内皮细胞增生。高浓度长时间作用可以出现视网膜内血管内皮细胞增生,管腔面积接近闭塞,玻璃体视网膜纤维血管样组织。但是,在高浓度作用4wk时,诱导的病变仅限于视网膜血管曲张,视网膜内核层的毛细血管管腔、血管内皮细胞未出现变化。我们推测在rrVEGF164作用2wk至6wk之间,也就是血管内皮细胞从肥大到增生的演变过程中,存在某种更替机制。可能在2wk时外源性的rrVEGF164对血管内皮细胞处于作用阶段,表现为细胞代偿性肥大。在4wk时玻璃体腔外源性的rrVEGF164的浓度不足以再起刺激作用。在6wk或更晚期阶段,在先期阶段外源性的rrVEGF164作用下,内源性的机制被启动,而表现为血管内皮细胞增生,甚至玻璃体视网膜纤维血管样组织增生。 产生视网膜前新生血管,必须要有足够强度的刺激因素,而且要具备足够的刺激时间。视网膜层间的血管内皮细胞增殖可以认为是视网膜内新生血管形成的征象,但是这种新生血管因为相对静止,不会产生渗漏等改变,因此不同于视网膜前、视网膜下的新生血管,它的临床意义不大。我们推测早期的血管内皮细胞肥大,血管管腔面积减少,影响视网膜局部血液供应,视网膜水肿,局限性缺血、缺氧,导致视网膜功能发生改变,视网膜电图振荡电位总波幅降低。但是rrVEGF诱导的这种视网膜血管内皮细胞肥大的确切原因、病理意义,视网膜血管内皮细胞形态、数目的动态变化有待更深层次的研究。 【参考文献】 1 Burgons R, Simo k, Andi L, Mateo C, Mesal J, Garcia-Ramirez M, Carrascosa A. Vitreous levels of vascular endothelial growth factor are not influenced by its serum concentrations in diabetic retinopathy. Diabetologia ,1997;40(9):1107-1109 2 Dureau P, Bonnel S, Menasche M, Dufier JL, Abitbol M. Quantitative analysis of intravitreal injections in the rat. Curr Eye Res ,2001;22(1):74-77 3 Hayashi A, Kim HC, de Juan E Jr. Alterations in protein tyrosine kinase pathway following retinal vein occlusion in the rat. Curr Eye Res ,1999;18(3): 231-239 4 D‘Amato R, Wesolowski E, Smith LE. Microscopic visualization of the retina by angiography with high-molecular-weight fluorescein-labeled dextrans in the mouse. Microvasc Res ,1993;46(2):135-142 5 Bresnick GH, Palta M. Oscillatory potential amplitudes. Relation to severity of diabetic retinopathy. Arch Ophthalmol ,1987;105(7):929-933 6 Alikacem N, Yoshizawa T, Nelson KD, Wilson CA. Quantitative MR imaging study of intravitreal sustained release of VEGF in rabbits. Invest Ophthalmol Vis Sci ,2000;41(6):1561-1569 7 Tolentino MJ, Miller JW, Gragoudas ES, Jakobiec FA, Flynn E, Chatzistefanou K, Ferrara N, Adamis AP. Intravitreous injections of vascular endothelial growth factor produce retinal ischemia and microangiopathy in an adult primate. Ophthalmology ,1996;103(11):1820-1828 8 Tolentino MJ, Mcleod DS, Tanomoto M, Otsuji T, Adamis AP, Lutty GA. Pathologic features of vascular endothelial growth factor-induced retinopathy in the Nohuman primate. Am J Ophthalmol ,2002;133(3):373-385 9 Hofman P, van Blijswijk BC, Gaillard PJ, Vrensen GF, Schlingemann RO. Endothelial cell hypertrophy induced by vascular endothelial growth factor in the retina. Arch Ophthalmol ,2001;119:861-866
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