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资源描述

1、ICS 65.020 B 16 DB37 山东省地方标准 DB 37/T 37712019 枣疯病综合防控技术规程 Technical regulation for integrated management of jujube witches-broom 2019-12-05 发布 2020-01-05 实施 山东省市场监督管理局 发 布 前 言 本标准按照GB/T 1.12009给出的规则起草。本标准由山东省农业农村厅提出并组织实施。本标准由山东农业标准化技术委员会归口。本标准起草单位:山东省果树研究所、山东省农业科学院植物保护研究所。本标准主要起草人:高瑞、王洁、周广芳、路兴波、杨淑珂、

2、孙红炜、艾呈祥、张琼、王中堂、余贤美。枣疯病综合防控技术规程 1 范围 本标准规定了枣疯病发病规律、发病症状、普查、鉴定及综合防治措施。本标准适用于山东省枣产区枣疯病综合防治。2 规范性引用文件 下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,仅注日期的版本适用于本文件。凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。GB/T 8321(所有部分)农药合理使用准则 NY/T 393 绿色食品 农药使用准则 NY/T 1276 农药安全使用规范总则 3 术语与定义 下列术语和定义适用于本文件。3.1 植原体 Phytoplasma 一类无细胞壁、不能人工培养的单细

3、胞原核生物、专性寄生于寄主植物韧皮部筛管组织和传播介体昆虫的肠道、淋巴、唾腺等组织,对四环素类抗生素敏感。侵染植物后常引起叶片黄化、丛枝、矮化、茎杆带化及花器绿变等症状。3.2 枣疯病 Jujube witches-broom 由枣疯病植原体(Jujube witches-broom phytoplasma)侵染引起的一种枣树致死性、维管束系统性病害。3.3 枣疯病双抗夹心酶联免疫吸附(DAS-ELISA)检测 利用枣疯病植原体免疫膜蛋白抗体(来源于兔)及碱性磷酸酯酶标记的羊抗兔进行ELISA检测样品的吸光值(I)与健康植株(H)的吸光值。根据I/H的比值来判断枣疯植原体的存在与否。4 发病规

4、律 4.1 传播途径 枣疯病植原体主要通过媒介昆虫、嫁接和带病苗木进行传播。4.2 发病特点 枣疯病潜伏期及危害情况与品种、生态环境和管理条件等因子有关。在冷凉地区发病较轻,管理粗放的枣树发病较重。品种间枣疯病发生情况差异很大,一般从局部枝条先发病,逐渐蔓延,一般感病枣树发病后,小树1年2年,大树5年6年全树即死亡。5 发病症状 5.1 根部症状 初期表皮呈褐色,萌生的根蘖呈丛枝状,后期形成点发性溃疡斑,继而枯死。5.2 枝条症状 病株枝条的主芽、隐芽和副芽多次萌发,形成节间缩短的细弱丛生状枝条,伴随叶片变小黄化,休眠期不脱落。5.3 花器症状 花器退化返祖,花梗延长至正常花梗的3倍6倍,有些

5、病株萼片、花瓣、雄蕊发育成小叶,呈花变叶状;有些病株萼片、花瓣变为绿色,雄蕊和雌蕊败育,呈绿瓣状。5.4 果实症状 结果少或不结果,果实小、花脸,肉质硬,口感差。6 普查与鉴定 6.1 田间普查 每年8月10月进行逐株检查,枝条节间缩短、簇生,叶片黄化变小为病害诊断主要依据,对查出的病株做好明显标记,统计发病率。6.2 室内病原鉴定 6.2.1 聚合酶链式反应(PCR)检测方法 检测方法见附录A。6.2.2 双抗夹心酶联免疫吸附(DAS-ELISA)检测方法 检测方法见附录B。7 防治措施 7.1 检疫措施 加强枣树接穗、砧木等繁殖材料和苗木的检疫和检测,不使用来自枣疯病发生区的枣苗建园。发现

6、带病或带菌植物繁殖材料应及时销毁,防止病害扩散蔓延。7.2 建园要求 7.2.1 园地选择 新建枣园宜在没有发生枣疯病的地块建园。7.2.2 立地条件 平原、丘陵、山地均可栽培,选择地势较高,土质疏松,耕作层深厚,排水良好的沙壤土或壤土种植。盐碱土壤地区,应选5 cm60 cm土层,总盐量低于0.3%的地块。7.2.3 品种及苗木选择 建园时优先选用耐病品种的苗木、砧木或接穗。推广应用脱毒苗,在网室内建立优良品种无毒采穗圃。7.3 栽培管理措施 7.3.1 肥水管理 因地制宜,秋季施基肥,适时追肥,合理施用叶面肥。土壤水分保持在田间土壤相对含水量60%70%为最佳,根据土壤墒情、不同生长时期适

7、时灌水,并应设置排水沟,雨季及时排水防涝。7.3.2 合理修剪 适度修剪,合理整形,提高树体通透性和光照强度。7.4 病株的处理与更新 7.4.1 销毁补栽 新建园应首先对传病媒介等进行一次防治,然后将病株连根挖除并销毁,经土壤消毒、充分晾晒树坑后再进行补栽。7.4.2 输液治疗 在进行疯枝清理后,可辅助树干输液(滴注)延缓病情发展,最佳治疗时期为枣树展叶期。输液治疗方法见附录C。7.5 防治媒介昆虫 主要传毒媒介为中华拟菱纹叶蝉(Hishimonoides chinensis A.)、凹缘菱纹叶蝉(Hishimonus selltus U.)、片突菱纹叶蝉(Hishimonus lamell

8、atus C.)和红闪小叶蝉(Typhlocyba sp.)等。可选用内吸性、触杀性的杀虫剂,使用方法按照GB/T 8321、NY/T 393和NY/T 1276执行。A A 附 录 A(规范性附录)枣疯病病原聚合酶链式反应(PCR)检测方法 A.1 感病和健康枣树总DNA提取方法 采取症状明显的和健康的枣树幼嫩枝条、叶片或者花样本,样本短时间(1周内)可于4 冰箱保存,长时间需于-80 冰箱保存。用商品化植物基因组DNA快速提取试剂盒提取。A.2 PCR扩增引物、反应体系及程序 A.2.1.1 以植原体16S rRNA基因通用引物R16mF2(5-CAT GCA AGT CGA ACG GA

9、-3)/R16mR1(5-CTT AAC CCC AAT CAT CGA C-3)进行PCR扩增。并设置健康枣树组织DNA为阴性对照,清水为空白对照。A.2.1.2 PCR 反应体系:PCR反应体系参照Taq 酶说明书。扩增程序:预变性温度94,3 min;然后94变性 45 s,60 退火1 min,72 延伸2 min,35个循环。最后72 延伸10 min。A.3 电泳检测 PCR产物于1.0%琼脂糖凝胶电泳检测。阳性材料直接PCR扩增片段大小约1.4 kb,阴性对照及空白对照均应无扩增片段。A.4 序列测定及分析 PCR产物直接送测序公司测序。将所得DNA序列输入GenBank(htt

10、p:/www.ncbi.nlm.nih.gov)进行Blast检索,初步确定病原种类。B B 附 录 B(规范性附录)枣疯病植原体双抗夹心酶联免疫吸附(DAS-ELISA)检测方法 B.1 样品处理 将疑似病样按照1:10或1:100的比例加入抗原包被缓冲液,研磨后取上清备用。B.2 样品包被 取150 L稀释的检测样品液加入96孔酶标板中,以枣疯植原体阳性标准品为阳性对照,以健康枣树标准品为阴性对照,在4 条件下孵育过夜或37 孵育1 h2 h。B.3 洗板 将酶联板迅速反扣,弃去孔中液体,每孔加入PBST液200 L,静置3 min5 min后迅速弃去孔中液体,并在吸水纸上扣打几下以尽量除

11、去孔中液体,重复3次。B.4 封闭 去除酶标板中的PBST缓冲液,每孔加入150 L的封闭缓冲液,37 恒温箱孵育1.5 h。B.5 洗板 同步骤C.3。B.6 加一抗 用PBST稀释枣疯植原体免疫膜蛋白抗体(来源于兔)至合适的工作浓度(1:1 000),每孔样品加150 L,37 恒温箱孵育2 h。B.7 洗板 同步骤C.3。B.8 加酶标抗体 每孔加入150 L PBST稀释的碱性磷酸酯酶标记的羊抗兔(1:5 000),37 恒温箱孵育2 h。B.9 洗板 同步骤C.3。B.10 底物显色 每孔加底物溶液150 L;室温避光显色30 min60 min;酶联仪在405 nm下读数。B.11

12、 结果判定 I/H=(待测样品读数空白读数)/(阴性样品的读数空白读数)3判断为阳性反应;反之则为阴性。C C 附 录 C(规范性附录)药剂防治枣疯病的方法 药剂防治枣疯病的方法见表C.1。表C.1 药剂防治枣疯病的方法 药剂选择 四环素类农用抗生素 使用时间 枣树展叶期,5 月上旬 使用方法 配药 药液需随用随配。按照药剂使用说明,用适量的干净清水溶解药后,用 4 层6 层纱布或滤纸过滤,减少沉淀。每瓶装药液 500 mL。打孔 对应疯枝方向在主干距地面 20 cm 处,向下倾斜 45 钻深达木质部 2 cm3 cm,孔径 0.45 cm的注药孔。若多侧均有疯枝时,打孔数量依据树干直径决定,

13、树干直径10 cm,只需打对应最严重的疯枝方向打 1 个孔,树干直径10 cm,打 2 个孔,树干直径每增加 10 cm,就多增加 1个孔,1 棵树最多打 4 个孔。孔与孔之间沿树干水平均匀分布,垂直有 10 cm 落差。注意注药孔附近不能有树洞和裂缝,避免造成漏液。输液 输液瓶悬挂在距地面至少 1.5 m 的位置。清理干净孔中的碎木屑避免堵塞针头。不漏液且能正常滴液后,放到最大输液速度处输液。输完液后用泥巴涂抹好孔口,以防药液挥发。使用药量 树干直径 10 cm15 cm,一次使用 2 瓶;15 cm20 cm,一次使用 4 瓶;20 cm25 cm,一次使用 6 瓶,25 cm30 cm 使用 8 瓶。30 cm 以上每增加 1 cm 多使用 0.5 瓶药液。使用次数 一般 1 月 1 次,连续输液 23 个月,可延缓病害发生。_

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