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必修一
一、检测生物组织中还原糖、脂肪和蛋白质
材料选择：提取液呈浅色或近无色
1、斐林试剂鉴定还原糖时，溶液的颜色变化为：砖红色(沉淀)。斐林试剂只能检验生物组织中还原糖存在与否，而不能鉴定非还原性糖。葡萄糖、麦芽糖、果糖是还原糖（等量混和，现配现用，加热砖红色）
2、双缩脲试剂的成分是质量浓度为0.1 g／mL的氢氧化钠溶液（Ａ液）和质量浓度为0.01 g／mL（Ｂ液）的硫酸铜溶液。蛋白质可与双缩脲试剂产生紫色反应。（先Ａ后Ｂ，Ａ多Ｂ少，振荡显紫色）
3、苏丹Ⅲ染液遇脂肪的颜色反应为橘黄色，苏丹Ⅳ染液遇脂肪的颜色反应为红色。
（制片—染色—洗去浮色—盖盖玻片—观看）
二、观看植物细胞的质壁分别和复原
试验原理:成熟的植物细胞有一大液泡。当细胞液的浓度小于外界溶液的浓度时（外因），细胞液中的水分就透过原生质层进入到外界溶液中，由于原生质层比细胞壁的伸缩性大（内因），当细胞不断失水时，液泡渐渐缩小，原生质层就会与细胞壁渐渐分别开来，既发生了质壁分别。当细胞液的浓度大于外界溶液的浓度时，外界溶液中的水分就透过原生质层进入到细胞液中，液泡渐渐变大，整个原生质层就会渐渐地恢复成原来的状态，既发生了质壁分别复原。
材料用具 紫色的洋葱鳞片叶；刀片，镊子，滴管，载玻片，盖玻片，吸水纸，显微镜；蔗糖的质量浓度为0.3g/mL的溶液，清水。
方法步骤 1、制作洋葱鳞片叶表皮的临时装片。
2、观看植物细胞的质壁分别与复原现象（低倍镜即可）。
（1）观看洋葱表皮细胞
（2）观看洋葱表皮细胞的质壁分别（引流的方法）
（3）观看洋葱表皮细胞的质壁分别复原
三、探究影响酶活性的因素
温度对酶活性的影响
1、试验原理：
酶的催化作用受温度的影响很大，通常温度每上升10℃，反应速度加快一倍左右，最终反应速度达到最大值。另一方面酶的化学本质是蛋白质，温度过高可引起蛋白质变性，导致酶的失活。因此，反应速度达到最大值以后，随着温度的上升，反应速度反而渐渐下降，以至完全停止反应。反应速度达到最大值时的温度称为某种酶作用的最适温度。
2、方法步骤：
①、取3支试管，编号后各加入淀粉溶液2毫升。
②、将第l、2号试管放入37℃恒温水浴中保温，第3号试管放入冰水中冷却
③、5分钟后，向第l号试管中加人煮沸5一15分钟的稀释唾液l毫升；向第2、3号试管加稀释唾液各l毫升。摇匀，
④、20分钟后取出3支试管，各加碘化钾-碘溶液2滴，混匀，比较各管溶液的颜色。推断淀粉被唾液酶水解的程度，井说明温度对唾液酶活性的影响。
PH对酶活性的影响
1、试验原理
酶催化反应需要适宜的PH值，过酸或过碱都能使酶变性失活
2、 试验步骤：
①在1～5号试管中分别加入5％的过氧化氢液2mL。
②加完过氧化氢液后，向各试管中加入相应的缓冲液3．00mL，使各试管中反应液的pH值依次稳定在5．00．6．20．6．80.7．40．8．00。
③分别向1～5号试管中加入0．5％过氧化氢酶液1mL，然后进行37℃恒温水浴。
④反应过程中，观看每个试管释放氧气的速度，记录结果。
3、但是高于或低于最适PH时将毁灭不同程度的减慢。说明酶的作用有一个最适PH值。
四、叶绿体中色素的提取和分别
试验原理：
叶绿体中的色素都能溶解于有机溶剂中，如：丙酮（无水乙醇）等。所以可以用丙酮提取叶绿体中的色素。
材料用具：
新颖的绿色叶片（如菠菜叶片）；干燥的定性滤纸，烧杯（100mL），研钵，小玻璃漏斗，尼龙布，毛细吸管，剪刀，小试管，培育皿盖，药勺，量筒（10mL），天平；丙酮，层析液，二氧化硅，碳酸钙。
方法步骤：
1、取绿色叶片中的色素：称量、剪碎、研磨（加二氧化硅？碳酸钙？）、过滤
2、分别叶绿体中的色素
（1）制备滤纸条：干燥、剪角、标记线
（2）画滤液细线：细、直、干后重复２－３次
（3）分别色素：滤液细线不能没入层析液
留意：不能让滤液细线触到层析液。用培育皿盖盖上烧杯。
五、探究酵母菌的呼吸方式
1、试验原理： 酵母菌是单细胞真菌，在有氧和无氧的条件下都能生存，属于间性厌氧菌
用具： 锥形瓶、葡萄糖、橡皮球、NaOH、石灰水
2、步骤：
1) 酵母菌培育液的配置(活化？)
2) 检测co2的产生（用何物质？）
3) 检测酒精的产生（用何物质？）
4) 试验结果的分析（依据是？）
酵母菌是兼性厌氧菌（如何设置有氧和无氧的条件？）
六、观看植物细胞的有丝分裂
1、 试验原理：有丝分裂是真核生物进行细胞分裂的主要方式。依据各个时期细胞内染色体（或染色质）的变化状况，识别该细胞处于有丝分裂的哪个时期。细胞核内的染色质（染色体）简洁被碱性染料（如龙胆紫溶液）染成深色
2、材料用具洋葱（可以用蒜、葱、蚕豆代替）。显微镜，载玻片，盖玻片，玻璃皿，剪刀，镊子。氯化氢的质量分数为15%的盐酸，酒精的体积分数为95%的溶液，龙胆紫（的质量分数为0.01g/mL的或0.02g/mL的溶液（或醋酸洋红液）。
3、步骤
a解离：剪取根尖2—3mm（最好在每天的10—14点取根，因此时间是洋葱根尖有丝分裂高峰期），马上放入盛有质量分数为15%的氯化氢溶液和体积分数为95%的酒精溶液的混合液（1：1）的玻璃皿中，在室温下解离3—5min。
b漂洗：待根尖酥松后，用镊子取出，放入盛有清水的玻璃皿中漂洗约10min。
c染色：把洋葱根尖放进盛有质量浓度为0.01g/mL或0.02g/mL的龙胆紫溶液（或醋酸洋红液）的培育皿中，染色3—5min。
d制片：取一洁净载玻片，在中心滴一滴清水，将染色的根尖用镊子取出，放入载玻片的水滴中，并且用镊子尖把根尖弄碎，盖上盖玻片，在盖玻片再加一载玻片。然后，用拇指轻轻地压载玻片。取下后加上的载玻片，既制成装片。
4 洋葱根尖有丝分裂的观看
①、低倍镜观看把制成的洋葱根尖装片先放在低倍镜下观看，要求找到分生区的细胞，它的特点是：细胞呈正方形，排列紧密，有的细胞正处于分裂状态。
②、高倍镜观看找到分生区的细胞后，把低倍镜移走，直接换上高倍镜，用细准焦螺旋和反光镜把视野调整的既清楚又较亮，直到看清细胞物象为止。认真观看，找处处于有丝分裂的前期、中期、后期、末期和间期的细胞。
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