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枸杞多糖对高糖诱导的人视网膜色素上皮细胞中NLRP3炎症小体_细胞焦亡信号通路的影响.pdf

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1、7期第 45 卷7 期2023 年 7 月宁夏医科大学学报Journal of Ningxia Medical University文章编号:1674-6309(2023)07-0649-06论著收稿日期:2023-01-16基金项目:教育部“春晖计划”合作科研项目(Z2016056);宁夏回族自治区重点研发项目(一般项目)(2020BEG03033)作者简介:梁念孩(1991),男,在读硕士研究生,主要从事糖尿病视网膜病变相关中医药基础研究。通信作者:摆茹(1979),博士,教授,硕士研究生导师,主要从事中医药免疫研究工作。E-mail:糖尿病视网膜病变(diabetic retinopat

2、hy,DR)是常见的糖尿病微血管并发症,是 20耀75 岁糖尿病患者视力下降或失明的重要原因1-5。DR 发病机制复杂,目前尚未完全明确。视网膜色素上皮细胞不具有再生能力,但具有支持作用,可为视网膜提供营养6,细胞死亡后由相邻细胞补充空余位置。高糖刺激可使视网膜色素上皮细胞损伤并失去正常生理功能,长期高血糖可导致视网膜发生特征性病理改变,如视网膜微血管内膜增厚、血管通透性增加和新生血管化,最终导致视网膜病变,而视网膜色素上皮细胞屏障的破坏在DR 的发展中起着重要作用7-10。NLRP3 炎症小体是组织细胞调控炎性反应的重要信号分子,主要由 NOD 样受体热蛋白结构域相关蛋白 3(NOD-lik

3、e receptor protein 3,NL原RP3)、凋亡相关斑点样蛋白(apoptosis-associatedspeck-like protein containing a CARD,ASC)及半胱氨酸蛋白酶-1(Caspase-1)组成11。NLRP3 炎症小体激活后,可诱导 Caspase-1 前体裂解和活化,活化的 Caspase-1 能裂解消皮素 D(gasderminD,GSDMD)并释放其 N 端结构域,该结构域转移到细胞膜并形成孔,介导细胞内容物的释放,包括炎性细胞因子白细胞介素(interleukin,IL)-1茁和IL-18,激活焦亡途径,诱导细胞焦亡12-14。研究

4、15-16发现,NLRP3 炎症小体/细胞焦亡信号通路的激活参与 DR 的发生与发展,高糖刺激 NL原RP3-Caspase-1-GSDMD 信号轴,可诱导人视网膜细胞以浓度和时间依赖性的方式在质膜中产生孔隙并分泌 IL-1茁 和 IL-18。枸杞多糖(lycium barbarum polysaccharide,LBP)是枸杞子的主要活性成分,具有抗氧化、调节免疫、抗肿瘤等多种生物活性,还具有抗衰老、细胞保护、神经保护和减缓炎性反应的作用17-19。枸杞多糖对高糖诱导的人视网膜色素上皮细胞中NLRP3 炎症小体/细胞焦亡信号通路的影响梁念孩1,2,杜丽君1,马燕1,夏会东1,窦凯凯1,姚青1

5、,摆茹1(1.宁夏医科大学基础医学院,银川750004;2.宁夏回族自治区第五人民医院,石嘴山753000)摘要:目的观察枸杞多糖(LBP)对高糖诱导的人视网膜色素上皮细胞(ARPE-19)中 NOD 样受体热蛋白结构域相关蛋白 3(NLRP3)炎症小体/细胞焦亡信号通路的影响。方法将体外培养的 ARPE-19 细胞,随机分为 5 组,即正常组(5.5 mmol L-1葡萄糖)、高糖组(55.5 mmol L-1葡萄糖)、LBP 低浓度组(55.5 mmolL-1葡萄糖+100 滋g mL-1LBP)、LBP 中浓度组(55.5 mmol L-1葡萄糖+200 滋g mL-1LBP)和LBP

6、高浓度组(55.5 mmol L-1葡萄糖+400 滋g mL-1LBP)。采用免疫荧光观察各组细胞中 NLRP3 蛋白的表达,Western blot 检测炎症小体NLRP3、半胱氨酸蛋白酶-1(Caspase-1)、凋亡相关斑点样蛋白(ASC)和其下游细胞焦亡蛋白消皮素 阅(GSD原MD)的相对表达量,ELISA 检测细胞上清液中白细胞介素(interleukm,IL)-1茁 和 IL-18 的表达水平。结果免疫荧光结果显示,NLRP3 蛋白主要在视网膜色素上皮细胞胞质中表达,且与正常组相比,高糖组 NLRP3 蛋白的表达水平升高(P约0.05);而与高糖组相比,LBP 中、高浓度组 NL

7、RP3 蛋白的表达水平降低(P约0.01)。West原ern blot 结果显示,与正常组相比,高糖组细胞中 NLRP3、Caspase-1、ASC、GSDMD 蛋白的相对表达量升高(P均约0.05);与高糖组相比,LBP 中、高浓度组中 NLRP3、Caspase-1、ASC、GSDMD 蛋白的相对表达量降低(P均约0.05)。ELISA 结果显示,与正常组相比,高糖组细胞中 IL-1茁 和 IL-18 表达水平均升高(P均约0.05);与高糖组相比,LBP 中、高浓度组中 IL-1茁、IL-18 表达水平均降低(P均约0.05)。结论LBP 可通过抑制 NLRP3 炎症小体/细胞焦亡信号通

8、路的激活,从而对高糖环境下的人视网膜色素上皮细胞产生保护作用。关键词:枸杞多糖;人视网膜色素上皮细胞;NLRP3 炎症小体;细胞焦亡;白细胞介素中图分类号:R285.5文献标识码:ADOI院10.16050/ki.issn1674-6309.2023.07.001649窑窑宁夏医科大学学报4缘卷研究20发现,LBP 能够抑制糖尿病小鼠视网膜内的血管新生、氧化应激和炎性反应。本研究通过观察 LBP 对高糖诱导的人视网膜色素上皮细胞中 NLRP3 炎症小体/细胞焦亡信号通路的影响,进一步探讨 LBP 对糖尿病视网膜色素上皮细胞产生保护作用的分子机制。1材料与方法1.1主要试剂人视网膜色素上皮细胞系

9、 ARPE-19(北京协和细胞资源中心)、LBP(宁夏沃福百瑞枸杞产业股份有限公司,LBP 含量为 53.14%)、DMEM低糖培养基、胎牛血清(美国 Hyclone 公司)、0.25%胰蛋白酶、青链霉素混合液(北京索莱宝科技有限公司)、全蛋白提取试剂盒(江苏凯基生物股份有限公司)、兔抗 NLRP3 抗体、兔抗 ASC 抗体、兔抗 Caspase-1 抗体、兔抗 GSDMD 抗体(美国 Pro原teintech Group 公司)、兔抗 茁-actin 抗体、羊抗兔IgG(北京博奥森生物技术有限公司)、IL-1茁 和IL-18 ELISA 检测试剂盒(上海江莱生物科技有限公司)、超敏 ECL

10、化学发光试剂盒(苏州新赛美生物科技有限公司)、甘氨酸(北京百奥莱博科技有限公司)、1伊无蛋白快速封闭液、10伊电泳液、抗体稀释液、快速配胶试剂盒(上海雅酶生物医药科技有限公司)。1.2仪器二氧化碳培养箱(上海力申科学仪器有限公司)、相差显微镜(宁波舜宇仪器有限公司)、低速冷冻离心机(安徽中科中佳科学仪器有限公司)、电泳仪(美国 Bio-Rad 公司)、超净工作台(苏州安泰空气技术有限公司)、超净水仪(四川优普超纯科技有限公司)、1510 型多功能酶标仪(美国 Thermo 公司)。1.3方法1.3.1ARPE-19 细胞培养和分组ARPE-19 细胞 培 养 于 含 10%胎 牛 血 清、1%

11、青 链 霉 素 的DMEM 低糖培养液(5.5 mmol L-1葡萄糖)中,接种于 6 孔板,每孔 1.5伊105个细胞。随机分为正常组(5.5 mmol L-1葡萄糖)、高糖组(55.5 mmol L-1葡萄糖)、LBP 低浓度组(55.5 mmol L-1葡萄糖+100 滋g mL-1LBP)、LBP中浓度组(55.5mmol L-1葡萄糖+200滋g mL-1LBP)和 LBP高浓度组(55.5mmol L-1葡萄糖+400 滋g mL-1LBP)。正常组和高糖组细胞分别使用含 5.5 mmol L-1和 55.5 mmol L-1葡萄糖的 DMEM 完全培养液进行培养。LBP 低、中、

12、高浓度组细胞在含 55.5 mmol L-1葡萄糖的 DMEM完全培养液中分别加入100、200、400滋g mL-1LBP 进行培养。作用 72 h 后,收集细胞和上清液进行后续实验。1.3.2免疫荧光检测细胞中 NLRP3 蛋白的表达取对数生长期细胞接种于 6 孔板,每孔 1.5伊105个细胞,按照细胞分组,分别进行干预,培养72 h 后取出细胞爬片,4%的多聚甲醛室温固定30 min,PBS 洗 3 次,0.2%TritonX-100 室温破膜20 min 后,山羊血清封闭 30 min。配制 NLRP3 一抗室温孵育 1 h,羊抗兔 IgG 二抗室温避光孵育1 h。DAPI 染核 5

13、min,封片。荧光显微镜下观察并采图。使用 Image J 软件进行平均荧光强度分析。1.3.3Western blot 检测细胞中 NLRP3/细胞焦亡信号通路相关蛋白的表达收集好 72 h 干预过的各组细胞,按照全蛋白提取试剂盒说明,提取蛋白并定量后,加入 Loading Buffer,变性 10 min备用。取 30 滋g 蛋白上样,10%的胶电泳后进行转膜(PVDF 膜、湿转、220 mA)。用无蛋白快速封闭液封闭 30 min 后,加入 NLRP3(1颐3 000)、ASC(1颐1 000)、Caspase-1(1颐1 000)、GSDMD(1颐5 000)、茁-actin(1颐1

14、000)一抗 4 益孵育过夜。二抗(1颐5 000)室温孵育 2 h,随后配制 ECL 发光液(A 液颐B 液=1颐1)进行曝光,采图并数据处理。使用 Image J 软件进行条带灰度值分析。1.3.4ELISA 检测细胞上清液中 IL-1茁 和 IL-18的表达水平收集好 72 h 干预过的各组细胞上清液,12 000 r min-1,4 益离心 10 min,取上清,分别设置标准品孔、空白孔和样品孔。各孔中加入相应试剂或样品,按 IL-1茁 和 IL-18 ELISA试剂盒说明书进行操作。酶标仪 450 nm 处测各孔吸光度 A。绘制标准曲线,并计算 IL-1茁 和 IL-18 浓度。1.

15、4统计学方法用 SPSS 26.0 软件对数据进行统计学分析,符合正态分布和方差齐性的计量资料用均数依标准差(x依s)表示,两样本均数比较采用 t 检验,多样本均数比较采用单因素方差分析。P臆0.05 为差异有统计学意义。2结果2.1LBP 抑制高糖诱导的人视网膜色素上皮细胞中 NLRP3 蛋白的表达免疫荧光图中可以看到,NLRP3 蛋白主要在视网膜色素上皮细胞胞质中表达,且与正常组相比,高糖组 NLRP3 蛋白的表达水平升高(P约0.05);650窑窑7期2.3LBP 对高糖诱导的人视网膜色素上皮细胞中 GSDMD 蛋白表达的影响与正常组相比,高糖组人视网膜色素上皮细胞中焦亡蛋白 GSDMD

16、 的表达上升(P约0.05)。与高糖组相比,LBP 中、高浓度组细胞中 GSDMD 蛋白的表达均下降(P 均约0.05),见图 3。2.4LBP 下调高糖诱导的人视网膜色素上皮细胞上清液中 IL-1茁、IL-18 炎性因子的表达ELISA 检测结果显示,与正常组比较,高糖组人视网膜色素上皮细胞中 IL-1茁 和 IL-18 的A.NLRP3 炎症小体各蛋白条带图;B、C、D.NLRP3、Caspase-1、ASC 蛋白定量分析结果;与正常组相比*P0.05;与高糖组相比#P0.05。图 2Western blot 检测 LBP 对高糖诱导的人视网膜色素上皮细胞中 NLRP3、ASC、Caspa

17、se-1 表达的影响而与高糖组相比,LBP 中、高浓度组 NLRP3 蛋白的表达水平均降低(P 均约0.01),而 LBP 低浓度组中 NLRP3 蛋白的表达水平差异无统计学意义,见图 1。A.NLRP3 蛋白表达荧光图;B.NLRP3 蛋白半定量分析结果;与正常组相比*P0.05;与高糖组相比#P0.01,#P0.001。图 1免疫荧光检测 LBP 对高糖诱导的人视网膜色素上皮细胞中 NLRP3 蛋白表达的影响梁念孩,等.枸杞多糖对高糖诱导的人视网膜色素上皮细胞中NLRP3 炎症小体/细胞焦亡信号通路的影响2.2LBP 降低高糖诱导的人视网膜色素上皮细胞中 NLRP3、ASC、Caspase

18、-1 蛋白的表达Western blot 结果显示,与正常组相比,高糖刺激后,人视网膜色素上皮细胞中 NLRP3、Cas原pase-1、ASC 蛋白的表达均上升(P 均约0.05)。与高糖组相比,LBP 中、高浓度组细胞中 NLRP3、Caspase-1、ASC 蛋白的表达均降低(P 均约0.05),而 LBP 低浓度组中各蛋白的表达差异无统计学意义,见图 2。ABNLRP3DAPIMerge*#100806040200ABNLRP3Caspase-1ASC茁-actin*#CD118 kDa45 kDa22 kDa43 kDa1.51.00.50.01.51.00.50.0*#1.51.00

19、.50.0651窑窑宁夏医科大学学报4缘卷A.GSDMD 蛋白条带图;B.GSDMD 蛋白定量分析结果;与正常组相比*P0.05;与高糖组相比#P0.05,#P0.001。图 3Western blot 检测 LBP 对高糖诱导的人视网膜色素上皮细胞中 GSDMD 蛋白表达的影响3讨论NLRP3 炎症小体的激活参与 DR 的发生与发展,抑制其活化,可发挥对视网膜的保护作用21。在糖尿病兔模型中,NLRP3 炎症小体识别激活信号后,活化 IL-1茁 和 IL-18,三者共同参与糖尿病诱发的非感染性炎性反应22。而下调 NLRP3/Cas原pase-1 通路表达,可抑制高糖诱导的视网膜组织炎症,减

20、轻过氧化损伤,发挥对视网膜的保护作用,从而改善 DR 症状23-25。NLRP3 过度活化可导致细胞焦亡,经典的细胞焦亡通路特点包括 Caspase-1 依赖、DNA 片段化、细胞膜完整性的快速丧失和炎性细胞因子释放,而 GSDMD 蛋白是 Caspase-1 的主要底物,是细胞焦亡的最终执行者24,26。NLRP3 炎症小体在糖尿病大鼠视网膜病变模型中被过度激活,NL原RP3、ASC、Caspase-1 和 GSDMD 等蛋白的表达显著上调27-28。张敏等29也证实了 Caspase-1 依赖性的细胞焦亡促进了人视网膜色素上皮细胞的死亡。这表明 NLRP3 炎症小体诱导的细胞焦亡促进了 D

21、R 的进展。本研究结果显示,与正常组比较,在高糖刺激的人视网膜色素上皮细胞中,NLRP3 炎症小体被过度激活,GSDMD 蛋白表达水平上升,也证实了 NLRP3 炎症小体/细胞焦亡信号通路的过度活化在 DR 的发病过程中具有重要作用。LBP 具有多种生物活性,对视网膜色素上皮细胞具有保护作用。Liang 等30研究表明,LBP 可能通过调节 H2O2诱导的视网膜色素上皮细胞凋亡途径中所涉及的蛋白质的表达,并激活核因子红细胞2 相关因子 2(Nrf2)信号通路,减少氧化损伤和抑制细胞凋亡,从而对视网膜色素上皮细胞起到保护作用。本研究使用 LBP 对高糖诱导的人视网膜色素上皮细胞进行干预,与高糖组

22、比较,LBP 中、高浓度组中 NLRP3、ASC、Caspase-1 及GSDMD 蛋白的表达下降,细胞上清液中 IL-1茁 和IL-18 的产生减少,表明 LBP 对高糖诱导的人视网膜色素上皮细胞的损伤具有保护作用。但低浓度 LBP 未显示其保护作用,可能与 LBP 浓度过低有关。也有研究31报道,LBP 在较低浓度时对人视网膜色素上皮细胞的生长无显著影响。综上所述,适当浓度的 LBP 可对高糖刺激的人视网膜色素上皮细胞产生保护作用,其分子机与正常组相比*P0.05,与高糖组相比#P0.05,#P0.05),见图 4。ABGSDMD茁-actin50 kDa43 kDa*#0.60.40.2

23、0.0*#1 5001 00050006004002000652窑窑7期制可能为 LBP 通过抑制 NLRP3 炎症小体的活化,下调 GSDMD 而减轻细胞焦亡,同时抑制炎症因子 IL-1茁 和 IL-18 的释放。本研究为进一步深入研究 LBP 在 DR 中的作用及其分子机制奠定了理论基础。但本研究仅通过细胞实验进行体外单层次验证,存在一定的局限性。参考文献:1Hao Y,Gao XF.Diosgenin protects retinal pigmentepithelial cells from inflammatory damage and oxida原tive stress induce

24、d by high glucose by activating AMPK/Nrf2/HO-1 pathway J.Immun Inflamm Dis,2022,10(12):698.2 Tang XY,Li XY,Zhang DY,et al.Astragaloside-郁alleviates high glucose-induced ferroptosis in retinalpigment epithelial cells by disrupting the expression ofmiR-138-5p/Sirt1/Nrf2 J.Bioengineered,2022,13(4):8240

25、-8254.3 李秀,罗蓉,李健,等.小胶质细胞在糖尿病视网膜病变中的作用 J.中华糖尿病杂志,2021,13(3):277-281.4 姬向东,刘文韬.双丹明目胶囊联合羟苯磺酸钙分散片治疗糖尿病视网膜病变的安全性和有效性 J.临床医学研究与实践,2022,7(11):85-87.5 柴桂芳,张峻,张同华,等.糖尿病促进癌症发生的流行病学和病理生理学 J.中国老年学杂志,2021,41(20):4597-4601.6 Chen YS,Lian YZ,Chen WC,et al.Lycium barbarumpolysaccharides and capsaicin inhibit oxidat

26、ive stress,inflammatory responses,and pain signaling in ratswith dextran sulfate sodium-induced colitis J.Int JMol Sci,2022,23(5):2423.7 范姜砾,关艳玲,李蓉,等.迷迭香酸对高糖诱导人视网膜微血管内皮细胞血管形成及 NLRP3 炎症小体通路活化的抑制作用 J.中华实验眼科杂志,2021,39(11):940-948.8 Liang GH,Luo YN,Wei RZ,et al.CircZNF532 knock原down protects retinal pig

27、ment epithelial cells againsthigh glucose-induced apoptosis and pyroptosis by reg原ulating the miR-20b-5p/STAT3 axis J.J DiabetesInvestig,2022,13(5):781-795.9 Meng CR,Gu CF,He S,et al.Pyroptosis in the retinalneurovascular unit:new insights into diabetic retinopa原thy J.Front Immunol,2021,12:763092.10

28、 Louie HH,Shome A,Kuo CY,et al.Connexin43hemichannel block inhibits NLRP3 inflammasome ac原tivation in a human retinal explant model of diabeticretinopathy J.Exp Eye Res,2021,202:108384.11 王文颜,张学东.NLRP3 炎症小体在糖尿病视网膜病变中的作用 J.眼科新进展,2018,38(6):587-591.12 Louvrier C,Assrawi E,El Khouri E,et al.NLRP3-assoc

29、iated autoinflammatory diseases:Phenotypic andmolecular characteristics of germline versus somaticmutations J.J Allergy Clin Immunol,2020,145(4):1254-1261.13 Coll RC,Schroder K,Pelegr侏n P.NLRP3 and pyrop原tosis blockers for treating inflammatory diseases J.Trends Pharmacol Sci,2022,43(8):653-668.14Qi

30、u Z,He YH,Ming H,et al.Lipopolysaccharide(LPS)aggravates high glucose-and hypoxia/reoxygena原tion-induced injury through activating ROS-depen原dent NLRP3 inflammasome-mediated pyroptosis inH9C2 cardiomyocytes J.J Diabetes Res,2019,2019:8151836.15 Al Mamun A,Mimi AA,Zaeem M,et al.Role of py原roptosis in

31、 diabetic retinopathy and its therapeuticimplications J.Eur J Pharmacol,2021,904:174166.16 Gan JH,Huang MM,Lan GY,et al.High glucose in原duces the loss of retinal pericytes partly via NLRP3-caspase-1-GSDMD-mediated pyroptosis J.BiomedRes Int,2020:4510628.17 Tian XJ,Liang TS,Liu YL,et al.Extraction,st

32、ructuralcharacterization,and biological functions of Lyciumbarbarum polysaccharides:a review J.Biomolecules,2019,9(9):389.18 苏保洲.枸杞子活性成分药理作用研究进展 J.江苏中医药,2022,54(3):78-81.19 汪明金,龙玲.枸杞多糖的提取、纯化、结构鉴定及药理作用研究进展 J.食品与发酵科技,2022,58(1):131-135,146.20 郑雅琴,陈继东,曾明星,等.糖尿病视网膜病变炎症机制与中药提取物干预的研究进展 J.现代中西医结合杂志,2022,31

33、(14):2029-2035.21 苗晋鑫,彭孟凡,任伟宏,等.NLRP3 炎症小体在糖尿病及并发症的作用及中药经 NLRP3 对其影响研究进展 J.中国实验方剂学杂志,2022,28(16):254-260.22 吴小寒.NLRP3 炎症小体/Caspase-1/Galectin-3 信号通路参与糖尿病兔心房重构的上游机制研究D.天津:天津医科大学,2020.23 王彤彤,庄天微,谢伟,等.葡萄籽原花青素调控NLRP3/Caspase-1 通路介导的焦亡途径对糖尿病视网膜病变大鼠的保护作用 J.眼科新进展,2021,41(12):1127-1132.24 宋兆威,李志坚,王晓慧,等.NLRP

34、3 参与的细胞焦亡在眼科疾病的研究进展 J.国际眼科杂志,2020,20(8):1347-1350.25Huang Y,Xu W,Zhou RB.NLRP3 inflammasome梁念孩,等.枸杞多糖对高糖诱导的人视网膜色素上皮细胞中NLRP3 炎症小体/细胞焦亡信号通路的影响653窑窑宁夏医科大学学报4缘卷The Effect of Lycium Barbarum Polysaccharides on NLRP3Inflammasome/Pyroptosis Pathway in High Glucose-induced HumanRetinal Pigment Epithelial Ce

35、llsLIANG Nianhai1,2,DU Lijun1,MA Yan1,XIA Huidong1,DOU Kaikai1,YAO Qing1,BAI Ru1(1.School of Basic Medical Sciences,Ningxia Medical University,Yinchuan750004,China;2.The FifthPeople s Hospital of Ningxia Hui Autonomous Region,Shizuishan753000,China)Abstract:ObjectiveTo explore the effect of lycium b

36、arbarum polysaccharide(LBP)on the NOD-like recep-tor thermal protein domain associated protein3(NLRP3)inflammasome/pyroptosis pathway in high glucose-in-duced human retinal pigment epithelial cells(ARPE-19).MethodsARPE-19 cells were cultured and randomlydivided into 5 groups.Normal and high glucose

37、group were cells cultured with medium containing 5.5 mmol L-1and 55.5 mmol L-1glucose respectively.LBP groups were cells cultured in 55.5 mmol L-1glucose medium andseparately treated with 100,200 and 400 滋g mL-1LBP.Immunofluorescence was used to detect the expressionof NLRP3 in each group.The protei

38、ns of NLRP3 inflammasome including NLRP3,Caspase-1,apoptosis-asso-ciated speck-like protein containing CARD(ASC)and gasdermin D(GSDMD)protein were determined byWestern blot.The level of interleukin IL-1茁 and IL-18 was measured by enzyme chain immunosorbentassay(ELISA).ResultsImmunofluorescence resul

39、ts showed that NLRP3 protein was mainly expressed in the cyto-plasm of retinal pigment epithelial cells,and compared with the normal group,the expression level of NLRP3protein was increased in high glucose group(P0.05);Compared with the high glucose group,the expressionlevel of NLRP3 protein was sig

40、nificantly decreased in LBP medium and high concentration groups(P0.01).Western blot results showed that compared with the normal group,the relative expression levels of NLRP3,Cas-pase-1,ASC and GSDMD were increased in the high glucose group(P all0.05);Compared with the highglucose group,the relativ

41、e expression levels of NLRP3,Caspase-1,ASC and GSDMD were decreased in LBPmedium and high concentration groups(P all0.05).ELISA results showed that compared with normal group,the expression levels of IL-1茁 and IL-18 were increased in high glucose group(P all0.05);Compared with thehigh glucose group,

42、the expression levels of IL-1茁 and IL-18 were decreased in LBP medium and high concen-tration groups(Pall0.05).ConclusionLBP protect human retinal pigment epithelial cells with high glu-cose by inhibiting the activation of NLRP3 inflammasome/pyroptosis pathway.Key words:lycium barbarum polysaccharid

43、e;human retinal pigment epithelial cells;NLRP3 inflammasome;pyroptosis;interleukinactivationandcelldeath J .CellMolImmunol,2021,18(9):2114-2127.26 刘可欣,李志坚,刘翔宇.GSDMD 介导的细胞焦亡在眼科疾病中的研究进展 J.眼科新进展,2021,41(11):1085-1088,1096.27 崔家霖,邢俊艳,王莺洁,等.糖眼宁调控 Nod 样受体蛋白 3 炎症小体通路对糖尿病大鼠视网膜细胞焦亡的影响 J.广州中医药大学学报,2022,39(3):

44、605-611.28 左玲凤,郭志新.GSDMD 介导的细胞焦亡在糖尿病慢性并发症中的作用研究进展 J.中国临床研究,2022,35(7):952-956.29 张敏,李志坚,王亚敏.细胞焦亡在眼部疾病中的研究进展 J.眼科新进展,2019,39(1):82-85.30Liang R,Zhao Q,Zhu Q,et al.Lycium barbarumpolysaccharide protects ARPE 19 cells against H2O2induced oxidative stress via the Nrf2/HO-1 pathwayJ.Mol Med Rep,2021,24(5):769.31 曹茜.枸杞多糖对 H2O2诱导的人视网膜色素上皮细胞自噬的影响 D.南京:南京中医药大学,2018.(责任编辑:王秀玉)654窑窑

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