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单击此处编辑母版标题样式,单击此处编辑母版文本样式,第二级,第三级,第四级,第五级,*,第一节 细胞形态结构的观察方法,一、光学显微镜,二、电子显微镜,三、扫描隧道显微镜,一、光学显微镜技术,基本构造:,光学放大系统,、,照明系统,、,机械和支架系统,普通光学显微镜成像,原理,物镜,得到物体放大的实像;,目镜,把物镜成的像进一步放大。,(一)普通复式光学显微镜,分辨率,指区分开两个质点间的最小距离。,两个质点之间的距离取决于光源波长,,物镜镜口角a和介质折射率N,D=0.61,/Nsin(a/2),空气(N=1.0)、水(N=1.33)、香柏油(N=1.52),显微镜的种类及原理,普通光学显微镜,光学显微镜一般配置的最大放大倍数是多少?为什么?,如何实现光学显微镜一般配置的最大放大倍数?其原理?,目镜:10 15;物镜:100;总放大倍数10001500;,使用油镜,即在100物镜和载玻片之间滴加香柏油;,普通光学显微镜,分辨率与所用,波长成反比!,用浸没油取代空气的作用?,介质折射率提高,分辨率得到提高,改变光折射角度,增加照明亮度,很多原来由于在透镜及载片表面的反射和折射而损失的光线可以进入物镜,使,照明亮度提高,,,改善观察效果,。,浸没油与玻璃的折射率相近,Making tissue sections.,How an embedded tissue is sectioned with a microtome in preparation for examination in the light microscope.,普通光镜的观察,取材固定脱水包埋切片脱蜡复水染色脱水透明封片观察,步 骤:,观察结果,(二)荧光显微镜技术,是光镜水平对特异蛋白质等生物大分子定性定位的最有力的工具。,主要是用于检测细胞上的,特异荧光材料,;,与普通光学显微镜不同的是增加了两套滤光片。,第一套称为,激发光滤片,,装在光源和样品之间,只有那些能激发荧光材料发光的特定波长的光才能通过。,第二套称为,阻断滤片,,装在物镜和目镜之间,只让燃料所发出的荧光通过。在黑暗背景的衬托下,发出荧光的样品很容易被观察。,The optical system of a modern fluorescence microscope.,A filter set consists of two barrier filters(1 and 3)and a dichroic(beam-splitting)mirror(2).In this example the filter set for detection of the fluorescent molecule fluorescein is shown.,荧光显微镜的光路图,Fluorescent dyes.,The structures of fluorescein and tetramethylrhodamine,two dyes that are commonly used for fluorescence microscopy.Fluorescein emits green light,whereas the rhodamine dye emits red light.,荧光染料分子,荧光显微镜,的应用,B,:不同荧光素所需激发波长与所产生的荧光波长比较,C,:,细胞,有丝分裂中期的观察,。,荧光显微镜观察真菌的细胞核,MDFA/4 d/DAPI stain(400),WT,cdc15,CM,由于荧光显微镜的暗视野为荧光信号提供了强反差背景,非常微弱的荧光信号亦可得以分辨。,(三)激光共焦点扫描显微镜,特点:,排除焦平面以外光的干扰,增强图像反差和提高分辨率,(1.4-1.7),,可重构样品的三维结构,主要用来研究细胞亚结构。,激光共聚焦扫描显微镜(Confocal laser scanning microscope,CLSM):,用激光作扫描光源,逐点、逐行、逐面快速扫描成像,扫描的激光与荧光收集共用一个物镜,物镜的焦点即扫描激光的聚焦点,也是瞬时成像的物点。,激光扫描共焦显微镜的原理图,原理,:,激光束经双色镜反射后,通过物镜聚集到样品某一焦点;,从焦点发射的荧光经透镜汇聚成像,被检测出,;其他部位发射的荧光不聚焦成像,不能检测到。,荧光显微镜(A)和激光扫描共焦显微镜(B)所观察图像的比较,小鼠肾小球的厚切片,Figure 3-14.,Comparison of conventional and confocal fluorescence microscopy.,These two micrographs are of the same intact,gastrula-stage,Drosophila,embryo,that has been stained with a fluorescent probe for actin filaments.The conventional,unprocessed image(A)is blurred by the presence of fluorescent structures above and below the plane of focus.In the confocal image(B),this out-of-focus information is removed,which results in a crisp optical section of the cell in the embryo.,相差显微镜,(phase-contrast microscope),一种将相位差转变成振幅差(明暗差)的显微镜,可观察不染色的活细胞。,利用样品的不同位点的密度差,形成肉眼可见的明暗区别。,微分干涉显微镜(differential-interference microscope),一种将样品厚度上的微小区别转化成明暗区别相差显微镜。,录像增差显微镜技术(video-enhance microscopy),(四)其它光学显微镜,相差显微镜观察真菌菌丝,2 d,WT,cdc15,CM,3 d,两种不同类型的光学显微镜所拍摄的图像比较,体外培养的MDCK细胞的图像,A:普通显微镜所拍,B:相差显微镜所拍,二、电子显微镜,(一)、电子显微镜的基本知识,1.电子显微镜与光学显微镜的基本区别,2.电子显微镜的分辨本领与有效放大倍数,3.电子显微镜的基本构造,(二)、主要电镜制样技术,1.超薄切片技术,2.负染色技术,3.冷冻蚀刻技术,4.电镜三维重构与低温电镜技术,5.扫描电镜技术,二、电子显微镜技术,电子显微镜的基本结构(A)和成像原理(B),电子显微镜与光学显微镜的区别,显微镜,分辨本领,光源,透镜,真空,成像原理,LM,TEM,200 nm,100 nm,0.1 nm,可见光(400-700),紫外光,(约200 nm),电子束,(0.01-0.9),玻璃透镜,玻璃透镜,电磁透镜,不要求真空,不要求真空,要求真空,1.33x10,-5,1.33x10,-3,Pa,利用样品对光的吸收形成明暗反差和颜色变化,利用样品对电子的散射和透射形成明暗反差,主要区别,(1),光源不同,光镜为可见光或紫外线;电镜为电子束,(2),透镜不同,光镜为玻璃;电镜为电磁透镜,(3),真空系统,(4),显示记录系统,超薄切片技术,固定、脱水、包埋、切片、染色。,基本要求:,细胞精细结构保存良好,不产生明显的物质凝聚、丢失或添加人工效应等;,切片厚度在,500,埃左右,最大不超过,1000,埃(,1mm,厚的样品切成,20000,片;一个一般大小的细胞要切成,300,片),切片应耐受电子束的轰击,包埋介质不发生变形;,切片应具有良好的反差;,切片需均匀,没有皱褶、刀痕及染色剂沉淀等缺陷。,Specimen Preparation for Electron Microscopy,Thin Sectioning for TEM,The wax sections:3-10um;,The Plastic ultrathin-sections for TEM:40-50n,m,Sections of LM:,5um;,Sections of TEM:,100nm,电镜超薄切片样本制备示意图,Figure 3-20.,Electron micrograph of a root-tip cell stained with osmium and other heavy metal ions.,The cell wall,nucleus,vacuoles,mitochondria,endoplasmic reticulum,Golgi apparatus,and ribosomes are easily seen.,超薄切片技术显示的动物细胞超微结构,家蚕细小病毒,负染色,电镜照片(病毒直径20nm),II.Scanning electron microscope(SEM),Images of surfaces can be obtained by SEM;,Critical-point drying;,Range:15,150,000 X.Resolution:5nm,Figure 3-23.,Scanning electron microscopy.,Scanning electron micrograph of the stereocilia projecting from a hair cell in the inner ear of a bullfrog(A).For comparison,the same structure is shown by differential-interference-contrast light microscopy(B)and by thin-section electron microscopy(C).,Figure 3-32.,Cells in culture.,Scanning electron micrograph of rat fibroblasts growing on the plastic surface of a tissue-culture dish.,扫描电镜原理示意图(A),扫描电镜下可清晰地显示原生动物四膜虫表面的纤毛和口器(B),三、隧道扫描显微镜,原理,:扫描探针与样品接触或达到很近距离时,即,产生彼此间相互作用力,如量子力学中的隧道效应(隧道电流)、,原子间作用力、磁力、摩擦力等,并在计算机显示出来,从而反映出样品表面形貌信息、电特性或磁特性等。,特点,:(1)可对晶体或非晶体成像,无需复杂计算,且分辨本领高。(,侧分辨率为0.10.2nm,纵分辨率可达0.01nm,);,(2)可实时得到样品表面三维图象,可,测量厚度信息,;,(3)可在真空、大气、液体等多种条件下工作;非破坏性测量;,(4)可连续成像,进行动态观察。,用途,:纳米生物学研究领域中的重要工具,在原子水平上揭示样本表面的结构。,几种显微镜可观察的样品大小(箭头之间的范围)及其分辨能力(右侧箭头所指位置),分辨率:,能区分开两个质点间的最小距离,眼睛、光学显微镜和电子显微镜的分辨率分别为:,0.2mm,、,0.2,m,和,0.2nm。,第二节 细胞及其组分的分析方法,一、用超离心技术分离细胞组分,二、细胞成分的细胞化学显示方法,三、特异蛋白抗原的定位与定性,四、细胞内特异核酸的定位与定性,五、定量细胞化学分析与细胞分选技术,一、用超离心技术分离细胞组分,用差速离心法分离细胞匀浆中的各种细胞组分,用密度梯度离心分离细胞组分示意图,用一定的介质在离心管内形成一连续或不连续的密度梯度,将细胞混悬液或匀浆置于介质的顶部,通过重力或离心力场的作用使细胞分层、分离。,二、细胞成分的细胞化学显示方法,为了测定,蛋白质、核酸、多糖,和,脂质,等细胞组分,通常利用一些,显色剂与所检测物质中一些特殊基团特异性结合(反应),的特征,通过显色剂在细胞中的定位及颜色的深浅来判断某种物质在细胞中的分布和相对含量。,A:直接免疫荧光标记技术:,利用偶联荧光分子的抗体与细胞或细胞切片进行孵育,使抗体和相应抗原结合,在荧光显微镜下对抗原进行定位的技术。,B:间接免疫荧光标记技术,:即不带荧光标记的第一抗体与相应抗原孵育形成复合物后,再用荧光标记的第二抗体识别第一抗体,从而显示抗原所在位置。,三、特异蛋白抗原的定位与定性,免疫胶体金电镜原位杂交技术的基本原理与应用(膀胱上皮细胞膜蛋白的分布:箭头所指),四、细胞内特异核酸的定位与定性,原位杂交,(in situ hybridization):通过单链RNA或DNA探针对细胞或组织中的基因或mRNA进行定位的技术。,用原位杂交技术显示,Z13,基因在受精后1d的斑马鱼胚胎的体节、眼和松果体中的表达(箭头所指),五、定量细胞化学分析与细胞分选技术,流式细胞术:,一种用于核酸、蛋白质、染色体和细胞等的定量、分离和分选的技术。,流式细胞仪的工作原理,第三节 细胞培养与细胞工程,一、细胞培养,二、细胞工程,一、细胞培养,原代培养,:用直接从生物体获得的细胞所进行的培养的过程。,传代培养,:对原代培养的细胞进行分割,重新接种进行再培养的过程。,细胞系,:来源于动物或植物细胞,能够在体外培养过程中连续增殖的细胞群体。,动物细胞培养,A:正在生长分裂的HeLe(宫颈瘤)细胞,B:长满单层的CHO(中国仓鼠卵巢)原代细胞,植物细胞培养,单倍体细胞培养,原生质体培养,二、细胞工程,细胞融合,:两个细胞通过质膜的接触并相互融合形成一个细胞的过程。融合后的细胞只有一个连续的细胞质膜。,单克隆抗体,:,单个细胞克隆,所,合成针对,一种,抗原决定簇,的抗,体,。,杂交瘤技术,:由一个正常的产生抗体的,B,淋巴细胞与一个恶性骨髓瘤细胞融合产生的杂种细胞系。具有无限增殖和产生单克隆抗体的特性。,细胞拆合,:即先把细胞核与细胞质分离开来,然后把不同来源的核体和胞质体相互融合,形成核,-,质杂交细胞。,单克隆抗体制备过程,体外培养,应用显微注射技术进行细胞核移植,细胞拆合,第四节 细胞及生物大分子的动态变化,一、荧光漂白恢复技术,二、单分子技术与细胞生命活动的研究,三、酵母双杂交技术,四、荧光共振能量转移技术,五、放射自显影技术,一、荧光漂白恢复技术,荧光漂白恢复技术,:,一种研究膜组分流动性的技术。通过膜组分与荧光染料连接,用激光不可逆地漂白膜上的某一荧光区域,然后根据漂白区荧光恢复的速度,研究膜的流动性。,荧光漂白恢复技术原理示意图,二、酵母双杂交技术,酵母双杂交技术,:一种利用酵母基因表达系统在体内分析蛋白质-蛋白质相互作用的技术。,三、其他技术,单分子技术,:一种在细胞内实时观测单一生物分子运动规律的技术,可在纳米空间尺度和毫秒时间尺度上精确测量单分子的距离、位置、指向、分布、结构以及各种动态过程。,荧光共振能量转移技术:,一种用来检测活细胞内两种蛋白质分子是否直接相互作用的技术。,放射自显影技术:,第五节 模式生物与功能基因组的研究,一、细胞生物学研究常用的模式生物,二、突变体制备技术,三、蛋白质组学技术,一、细胞生物学研究常用的模式生物,(一)大肠杆菌,(二)酵母,(三)线虫,(四)果蝇,(五)斑马鱼,(六)小鼠,(七)拟南芥,特点,个体较小,容易培养,操作简单,繁殖迅速,二、突变体制备技术,RNA干扰(RNAi):,一种把双链小分子(或单链反义)RNA 导入细胞或模式生物体中使某mRNA降解或抑制其翻译活性的技术。,基因敲除:,一种同源替代技术。,RNAi原理的示意图,三、蛋白质组学技术,(一)双向凝胶电泳,(二)色谱技术,(三)质谱,(四)蛋白质芯片,(五)生物信息学,细胞生命活动,突变体分析,突变体分析,蛋白修饰分析,基因表达,多肽定性分析,生物信息学,序列测定,双向电泳分析,DNA分离与克隆,机器人技术,(robotics),功能基因组学,蛋白质分离与制备,蛋白质组学,细胞生物学研究的基本思路,THE END!,
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