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党参多糖对脑缺血再灌注损伤大鼠血清S100-β及NSE水平的影响.pdf

1、第 40 卷第 5 期2023 年 10 月实验动物科学LABORATORY ANIMAL SCIENCEVol.40No.5October 2023论著收稿日期:2023-03-06基金项目:高气压致轻度认知功能障碍的机制(20AH0301)作者简介:刘飞(1992),男,硕士研究生,研究方向:人类疾病动物模型研究.E-mail:648222872 通信作者:唐瑛(1964),女,教授,研究方向:人类疾病动物模型研究.E-mail:maotou01 党参多糖对脑缺血再灌注损伤大鼠血清 S100-及NSE 水平的影响刘 飞 邹赢锌 焦 勇 唐 瑛(海军军医大学海军特色医学中心,上海200433

2、)摘要:目的观察党参多糖对缺血再灌注损伤大鼠血清 S100-蛋白(S100-)及神经特异性烯醇化酶(NSE)含量的影响。方法随机将 SD 大鼠分成 5 组:假手术组、模型组、依达拉奉组和 2 个党参多糖高、低剂量组,每组 10只。采用线栓法阻断大鼠中脑闭塞(MCAO)2 h 后再灌注 24 h 建立脑缺血再灌注模型,2 个党参多糖和依达拉奉组大鼠术前连续 14 d 给予相对应的药物,于再灌注后 24 h 取样,采用尼氏染色和 HE 染色法进行组织学观察,测量脑含水量及伊文思蓝法以评估卒中,ELISA 法分别检测各组血清中 NSE 和 S100-水平。结果与假手术组比较,模型组大鼠脑组织含水量及

3、通透性明显增加(P0.01),血清中 NSE 及 S100-蛋白含量明显增加(P0.01)。与模型组相比较,党参多糖高、低 2 个剂量组血清中 NSE 和 S100-蛋白含量明显降低(P0.01),且党参多糖高剂量组脑组织含水量及通透性明显降低(P0.01)。结论党参多糖能明显减轻大鼠脑缺血再灌注损伤的程度,降低血清中 NSE 和 S100-水平,具有良好的神经保护作用。关键词:党参多糖;脑缺血再灌注;S100-蛋白;神经元特异性烯醇化酶;大鼠中图分类号:Q95-3文献标志码:A文章编号:1006-6179(2023)05-0053-07DOI:10.3969/j.issn.1006-6179

4、.2023.05.010Effects of Codonopsis Pilosula Polysaccharide on Serum S100-and NSELevels in Rats with Cerebral Ischemia-Reperfusion InjuryLIU FeiZOU YingxinJIAO YongTANG Ying(Naval Characteristic Medical Center,Naval Medical University,Shanghai 200433,China)Abstract:ObjectiveTo observe Codonopsis pilos

5、ula polysaccharide(CPPS)on ischemia-reperfusion injury of rat serum S100-protein and neuron-specific enolase(NSE)levels.MethodSD rats were randomly divided into 5 groups,namely sham operation group,model group,Edaravone group and 2 codonopsis pilosula polysaccharide(CPPS)high-dose and low-dose group

6、s,with 10 rats in each group.By using line switch block rat middle cerebral artery occlusion(MCAO)2 h reperfusion 24 h after cerebral ischemia reperfusion model is set up,two CPPS and edaravone group rats were given corresponding drugs for 14 consecutive days before surgery,Nissl staining and HE wer

7、e used for histological observation 24 h after reperfusion.Cerebral water content was measured and Evans blue method was used to assess cerebral apoplexy.Serum NSE and S100-levels were determined by ELISA.ResultCompared with sham operation group,the water content and permeability of brain tissue in

8、model group were significantly increased(P0.01),and the contents of NSE and S100-protein in 实验动物科学40 卷serum were significantly increased(P 0.01).Compared with model group,serum NSE and S100-protein contents in CPPS high-dose and low-dose groups were significantly decreased(P0.01),and brain tissue wa

9、ter content and permeability in CPPS high-dose group were significantly decreased(P0.01).ConclusionCPPS can significantly reduce the level of NSE and S100-in serum of rats with cerebral ischemia-reperfusion injury,and have good neuroprotective effect.Key words:codonopsis pilosula polysaccharide(CPPS

10、);cerebral ischemia/reperfusion;S100-protein;neuron specific enolase(NSE);rats卒中危害公共健康,具有高死亡率和致残率的特点1。脑缺血被认为是全球范围内的主要死亡原因。该病的预后高度依赖于早期医疗干预2。国内外学者发现血液生物标志物的循环水平与神经组织损伤相关,不仅可用于缺血性卒中尤其是早期阶段(发病后 72 h 内)诊断,还可用于缺血性卒中的严重程度评估及监测梗死进展,甚至有助于早期成像结果呈阴性的有症状患者的诊断3-4。脑缺血后神经元受损、胶质细胞坏死及血脑屏障(blood-brain barrier,BBB)的损

11、伤致使 S100-蛋白及神经特异性烯醇化酶(neuron specific enolase,NSE)释放进入血液,其血清中水平的变化能够反映脑损伤程度及疾病的预后5。因此,本研究通过党参多糖(codonopsis pilosula polysaccharide,CPPS)预处理后建立大鼠中脑闭塞(middle cerebral artery occlusion,MCAO)模型,研究缺血再灌注损伤大鼠血清中 S100-蛋白和 NSE 水平的变化,探讨 CPPS 对脑缺血再灌注损伤的保护作用,为临床提供实验依据。1材料和方法1.1材料1.1.1动物分组与给药:SPF 级 雄性 SD 大鼠 130只

12、,体质量(28020)g,购自上海西普尔-必凯实验动物有限公司,生产许可证号【SCXK(沪):2018-0016】。动物饲养于海军特色医学中心动物房,许可证号【SYXK(沪)2022-0033】。饲养条件:室 温1224 ,采用 12 h/12 h 昼夜间断照明,分笼饲养,自由饮水。动物购进后在本单位动物房饲养 1周后,随机分为假手术组(Sham)、模型组、依达拉奉组 10 mg/(kgbw)、CPPS 低【1 g/(kgbw)】、高【2 g/(kg bw)】两个剂量组,每组 10 只。术前 2 个CPPS 组按实验设计每天灌胃 1 次,连续给药 14 d,给药体积为 1 mL/100 g;依

13、达拉奉组按 10 mg/(kgbw)每日尾静脉注射 1 次,连续给药 14 d;其余两组给予等体积的双蒸水。本实验分 3 批次完成。所有实验均经过海军特色医学中心动物伦理委员会授权(NMC-2021041),整个实验期间按照实验动物的护理和使用指南进行操作。1.1.2药品:党参多糖(CPPS),黄褐色粉末状,纯度 32.8%,购自西安天一生物科技有限公司;依达拉奉注射液(规格 20 mL 30 mg,国药集团国瑞药业有限公司)。1.1.3试剂与仪器:MCAO 栓线(北京沙东生物技术有限公司);神经元特异性烯醇化酶(NSE)、S100-蛋白 ELASA 检测试剂盒(上海研谨生物科技有限公 司);

14、伊 文 思 蓝(evans blue,EB)(MP Bio medicals,LCC);其余试剂均为国产分析纯。752N型紫外可见分光光度计(上海精密科学仪器有限公司)。1.2方法1.2.1动物模型制备及处理:各组大鼠末次给药1 h 后,采用改良 Longa 线栓法6,腹腔注射 1%戊巴比妥钠(0.3 mL/100 g)麻醉,取仰卧位,钝性分离出右侧颈总动脉、颈外动脉及颈内动脉。结扎颈总动脉近心端,用动脉夹暂时夹闭颈内、外动脉分叉处,将栓线通过颈总动脉小切口插入,打开动脉夹,插入深度约为 18 mm,栓线入颅至大脑前动脉,以阻断大脑中动脉所有血流来源,缝合伤口。2 h 后轻轻取线恢复血流。假手

15、术组进行了相同的手术,但不插入栓线。在手术过程中始终维持大鼠体温和保持适宜环境温度。1.2.2神经功能评分:参考经典 Zea Longa6评分标准进行神经行为学评分。按照 5 分制评分原则(0 分:无神经功能受损体征,活动正常;1 分:不能完全伸展对侧前爪;2 分:行走时向对侧转圈;3 分:向对侧倾倒;4 分:不能自发行走,意识丧失)对缺血再灌注 24 h 后的大鼠进行神经功能缺失评分。得分在 24 分,说明造模成功。45第 5 期刘飞等:党参多糖对脑缺血再灌注损伤大鼠血清 S100-及 NSE 水平的影响 1.2.3脑含水量测定:实验结束后每组各 10 只,于再灌 注 24 h 后,采 用

16、1%戊 巴 比 妥 钠【0.3 mL/(100 g bw)】腹腔麻醉安乐后取脑,在冰盒上迅速分离右侧脑组织并称重(湿重)。再将右侧脑组织在干燥箱 110 烘干 24 h 至恒重(干重)。按下式公式计算:脑组 织 含 水 量(%)=(湿 重-干 重)/湿重100%1.2.4血脑屏障通透性的检测:采用伊文思蓝染料(EB)法测定 BBB 的通透性。实验结束后每组各 10只大鼠,于再灌注 23 h 后经尾静脉注射 2%伊文思蓝【4 mL/(kgbw)】,注射 2 h 后,采用 1%戊巴比妥钠麻醉后,打开大鼠胸腔,从左心室插入注射针头,于右心耳部剪一小口,向内注入 0.9%氯化钠溶液,直至右心耳流出液体

17、变清亮,表明已将残存于血管内生物 EB 充分排出,然后开颅取脑,沿正中线称取脑损伤部位约 100 mg 脑组织,将其浸泡在 3 mL甲酰 胺 中,50 水 浴 72 h,1 500 r/min 离 心10 min,取上清液。用分光光度计(=630 nm),测定上清液 A 值,计算每克脑组织中 EB 的含量(g/g脑组织)。1.2.5血清中 NSE 及 S100-蛋白含量检测:实验结束后,将大鼠麻醉后腹主动脉取血,离心取上清,-80 下 冻 存 备 用。按 照 试 剂 盒 说 明 书,采 用ELASA 法检测血清中 NSE 及 S100-蛋白。1.2.6HE 染色:给药及建模同上,每组 5 只大

18、鼠。再灌注 24 h 后,将麻醉后大鼠用 4%多聚甲醛进行心脑灌注,然后取脑组织,将脑组织放入 10%多聚甲醛固定,常规脱水、石蜡包埋切片。将组织切片脱蜡,苏木精染色,伊红复染,水洗,脱水,透明,封片。光镜下观察拍照。1.2.7尼氏小体染色:将组织切片用甲酚紫溶液56 染色 60 min,蒸馏水洗涤 2 次,95%乙醇分化 2次,每次 2 min;切片在 100%乙醇中脱水 5 min,在二甲苯中清除 5 min。封片,在光镜下观察 Nissal 染色的细胞。正常神经元细胞内含丰富的细胞质和大的细胞体,伴有大量尼氏小体。而细胞受损时胞体萎缩,细胞核浓缩,尼氏小体减少或缺失。1.3统计学分析采用

19、 SPSS 20.0 统计软件。实验数据以均数标准差(xs)表示,组间比较采用 t 检验。2结果 2.1CPPS 对 MCAO 诱导的缺血大鼠的影响大鼠建立脑 MCAO 模型后进行神经功能缺损评分。假手术组无神经功能缺失,评分为 0 分。与假手术组相比,模型组大鼠神经功能学评分增加(3.200.79,P0.01),提示严重功能障碍(表 1)。与模型组相比,依达拉奉组大鼠神经功能评分明显降低(2.20 0.79,P 0.05),具 有 统 计 学 意 义。CPPS 高剂量组明显降低,具有统计学意义(2.200.79,P0.05),CPPS 低剂量组神经功能评分也降低但无统计学意义(2.500.8

20、5)。表 1大鼠神经功能评分Table 1Neurological function scores of rats组别神经功能评分假手术组0模型组3.200.79#依达拉奉组2.200.79CPPS 高剂量组2.200.79CPPS 低剂量组2.500.85注:与假手术组比较,#P0.01;与模型组比较,P0.05。Note:Compared with the namely sham operation group,#P 0.01;Compared with the model group,P0.05.同样,与假手术组相比,模型组大鼠脑含水量增加(79.17%0.35%,P0.01)。与模型组

21、相比,依达拉奉组大鼠脑含水量明显降低(76.95%0.67%,P0.01)。CPPS 高剂量组脑含水量明显降低,具有统计学意义(77.22%0.51%,P0.01),CPPS 低剂量组脑组织含水量降低但无统计学意义(79.07%0.67%)(图 1)。2.2CPPS 对缺血再灌注大鼠 BBB 通透性的影响与假手术组相比,模型组大鼠脑组织 EB 含量增加(302.8535.77,P0.01)。与模型组相比,依达拉奉组大鼠脑组织 EB 含量明显降低(249.9360.28,P0.05)。CPPS 高剂量组脑组织 EB 含量明显降 低,具 有 统 计 学 意 义(233.58 39.50,P 0.0

22、1),CPPS 低剂量组脑组织 EB 含量降低但无统计学意义(267.9748.35)(图 2)。2.3CPPS 对 MCAO 大鼠神经元损伤的影响采用 HE 染色对 MCAO 诱导的缺血大鼠缺血侧神经元结构进行组织病理学分析。如图 3 所示,假手术组大鼠脑组织结构完整,排列规则紧密,胞质丰55 实验动物科学40 卷注:与假手术组比较,#P0.01;与模型组比较,P0.01。Note:Compared with the namely sham operation group,#P0.01;Compared with the model group,P0.01.图 1大鼠脑含水量Fig.1The

23、 water content in rat brain注:与假手术组比较,#P0.01;与模型组比较,P0.05,P0.01。Note:Compared with the namely sham operation group,#P0.01;Compared with the model group,P0.05,P0.01.图 2大鼠脑组织 EB 含量检测Fig.2The determination of EB content in rat brain tissue注:A.假手术组;B.模型组;C.依达拉奉组;D.CPPS 低剂量组;E.CPPS 高剂量组。Note:A.Sham operat

24、ion group;B.Model group;C.Edaravone group;D.CPPS low-dose group;E.CPPS high-dose group.图 3大鼠缺血侧神经元 HE 染色结果(200)Fig.3The results of HE staining of neurons on the ischemic side of rats(200)富,细胞核清晰。与假手术组相比,模型组大鼠脑组织疏松、细胞排列紊乱,神经元出现坏死、核固缩。依达拉奉组及 2 个 CPPS 组均有明显改善。用尼氏染色法观察神经元形态。结果如图 4 所示,假手术组神经细胞结构清晰,胞质中尼氏小

25、体分布均匀,呈蓝色颗粒状;模型组脑组织水肿疏松,神经元胞质浓缩,核固缩,尼氏体染色不清;依达拉奉组及 2 个 CPPS 组有明显改善。2.4CPPS 对 缺 血 再 灌 注 大 鼠 血 清 中 NSE 及S100-水平的影响与假手术组相比,模型组大鼠血清中 S100-蛋白含量增加(0.1350.008,P0.01)。与模型组相比,依达拉奉组大鼠血清中 S100-蛋白含量明显降低(0.1160.013,P0.01)。CPPS 高剂量及低剂量组血清中 S100-蛋白含量明显降低,具有统计学意义(0.116 0.010,P 0.01)(0.112 0.012,P 0.01)(图 5)。65第 5 期

26、刘飞等:党参多糖对脑缺血再灌注损伤大鼠血清 S100-及 NSE 水平的影响 注:A.假手术组;B.模型组;C.依达拉奉组;D.CPPS 低剂量组;E.CPPS 高剂量组。Note:A.Sham operation group;B.Model group;C.Edaravone group;D.CPPS low-dose group;E.CPPS high-dose group.图 4尼氏染色法观察神经元形态(200)Fig.4Observation of neuronal morphology by Knells staining(200)注:与假手术组比较,#P0.01;与模型组比较,P0

27、.01。Note:Compared with the namely sham operation group,#P0.01;Compared with the model group,P0.01.图 5大鼠血清中 S100-蛋白含量Fig.5The content of S100-protein in serum of rats同样,与假手术组相比,模型组大鼠血清中 NSE含量增加(2.620.37,P0.01)。与模型组相比,依达拉奉组大鼠血清中 NSE 含量明显降低(2.01 0.99,P0.01)。CPPS 高剂量及低剂量组血清中NSE 含量明显降低,具有统计学意义(2.030.22,P

28、0.01)(2.140.14,P0.01)(图 6)。3讨论卒中是全球第二大死亡原因,而且卒中的流行率正在上升7。缺血性卒中是最常见的卒中形式,注:与假手术组比较,#P0.01;与模型组比较,P0.01。Note:Compared with the namely sham operation group,#P0.01;Compared with the model group,P0.01.图 6大鼠血清中 NSE 含量Fig.6The NSE content in rats serum以大脑动脉闭塞引起的脑组织损伤为特征,具有较高的发病率、死亡率、致残率和复发率8。S100 蛋白是一类相对分子

29、质量较小及具有广泛的生物学特性的钙结合酸性蛋白。S100-蛋白属于 S100 蛋白家族的亚型之一,主要位于中枢神经系统的星形胶质细胞、少突胶质细胞以及周围神经的雪旺细胞内,是神经胶质细胞的标记蛋白9。在正常 情 况 下,S100-蛋 白 不 能 通 过 血 脑 屏 障(BBB),即对自发的神经系统活性无明显影响。但患脑外伤、缺血缺氧性脑病及脑血管病时,BBB 受损,S100-蛋白既可直接经受损的 BBB,又可以经脑室内的脉络丛或蛛网膜下腔的蛛网膜颗粒进入血75 实验动物科学40 卷液,以导致血清中 S100-蛋白的含量增加。有研究证实,急性脑卒中(acute ischemic stroke,A

30、IS)患者血清 S100-浓度与梗死体积之间存在显著相关性10。因此,血清 S100-可作为卒中严重程度的有效监测指标11。神经元特异性烯醇化酶(NSE)是由 2-磷酸甘油转化成磷酸烯醇丙酮酸的限速酶,由、3 种亚基以二聚体形式组成 5 种同工酶,其中 型,即NSE 特异性地存在于神经元细胞和神经内分泌细胞中,脑胶质细胞和其他神经组织中不含这种酶,是神经元的标志酶12。烯醇化酶 是一种主要存在于神经元和神经外胚层细胞中的酶,能将厌氧葡萄糖转化为适于氧化的代谢物。健康人血清 NSE 水平低,然而,在神经组织损伤如脑损伤或卒中后,NSE 可迅速从细胞内释放并进入细胞间隙,进而释放入脑脊 液(CSF

31、)或通过血-脑 脊液屏障(blood-cerebrospinal fluid barrier,BCB)进入外周血,血液中的 NSE 水平会出现强烈的升高,从而作为脑损伤的生物标志物13。因此,NSE 是观察脑内神经元损伤的量的指标,在原发或激发的神经系统疾病患者中检测血清 NSE 水平有一定的价值。由于 NSE 和 S100-蛋白在脑内的分布存在差异性,缺血再灌注损伤后大鼠除脑血管外,神经元、髓鞘和各种胶质细胞等都有一定程度的损害,因此,将二者的变化结合分析可以较为全面的反映 I/R 后脑组织的损伤情况。对缺血性卒中具有明显治疗作用的药物成为当前研究的热点,特别是从天然来源中提取的副作用小的活

32、性成分。多糖具有安全无毒的特性受到越来越多的关注14。党参多糖(CPPS)是党参主要生物活性成分之一,具有免疫调节、抗氧化及抗肿瘤15等作用而受到广泛关注。在前期的研究中,我们发现 CPPS 预处理可减小脑梗死面积,增加抗氧化酶活性,降低氧自由基含量,减少炎性因子的分泌,并能抑制 Beclin-1 表达,党参多糖具有保护脑缺血和再灌注损伤16-17。本研究结果显示,与假手术组比较,所有 I/R 大鼠血清 NSE 和 S100-蛋白水平均有不同程度的升高,脑水肿明显,BBB 通透性增大,提示大鼠全脑缺血再灌注损伤后存在 NSE 和 S100-蛋白水平升高加重脑组织损伤,脑水肿明显,脑组织通透性增

33、加明显;与模型组相比较,给予党参多糖 2 个剂量组 NSE和 S100-蛋白水平均有不同程度降低,脑水肿程度及通透性较轻,表明党参多糖在一定程度上可以抑制 NSE 和 S100-蛋白的释放,减轻脑损伤,从而起到对脑神经保护作用。总之,本研究发现,党参多糖预处理可减轻脑缺血再灌注损伤后大鼠的脑水肿。参 考 文 献 1 AMANI H,MOSTAFAVI E,ALEBOUYEH M R,et al.Would colloidal gold nanocarriers present an effective diagnosis or treatment for ischemic stroke?J.I

34、nt J Nanomedicine,2019,14:8013-8031.2 RAN Y,WANG Y,ZHU M,et al.Higher plaque burden of middle cerebral artery is associated with recurrent ischemic stroke:a quantitative magnetic resonance imaging study J.Stroke,2020,51(2):659-662.3 MAESTRINI I,DUCROQUET A,MOULIN S,et al.Blood biomarkers in the earl

35、y stage of cerebral ischemia J.Rev Neurol(Paris),2016,172(3):198-219.4 OCONNELL G C,SMOTHERS C G,GANDHI S A.Newly-identified blood biomarkers of neurological damage are correlated with infarct volume in patients with acute ischemic strokeJ.J Clin Neurosci,2021,94:107-113.5 POLLAY M,ROBERTS P A.Blood

36、-brain barrier:a definition of normal and altered function J.Neurosurgery,1980,6(6):675-685.6 LONGA E Z,WEINSTEIN P R,CARLSON S,et al.Reversible middle cerebral artery occlusion without craniectomy in ratsJ.Stroke,1989,20(1):84-91.7 PHILIP B G.The global burden of stroke:persistent and disablingJ.La

37、ncet Neurol,2019,18(5):417-418.8 SU Z,SUN Z,ZHANG Y,et al.Regulatory effects of miR-146a/b on the function of endothelial progenitor cells in acute ischemic stroke in mice J.Kaohsiung J Med Sci,2017,33(8):369-378.9 ABRAHA H D,BUTTERWORTH R J,BATH P M W,et al.Serum S-100 protein,relationship to clini

38、cal outcome in acute strokeJ.Ann Clin Biochem,1997,34(5):546-550.10PURROY F,FARRE-RODRIGUEZ J,MAURI CAPDEVILA G,et al.Basal IL-6 and S100b levels are associated with infarct volumeJ.Acta Neurol Scand,2021,144(5):517-523.11FOERCH C,SINGER O C,NEUMANN-HAEFELIN T,et al.Evaluation of serum S100B as a su

39、rrogate marker for long-term outcome and infarct volume in acute middle cerebral artery infarctionJ.Arch Neurol,2005,62(7):1130-1134.12HAQUE A,POLCYN R,MATZELLE D,et al.New insights into the role of Neuron-specific enolase in Neuro-inflammation,neurodegeneration,and neuroprotectionJ.Brain Sci,2018,8

40、(2):33-45.85第 5 期刘飞等:党参多糖对脑缺血再灌注损伤大鼠血清 S100-及 NSE 水平的影响 13LUESCHER T,MUELLER J,ISENSCHMID C,et al.Neuron-specific enolase(NSE)improves clinical risk scores for prediction of neurological outcome and death in cardiac arrest patients:Results from a prospective trial J.Resuscitation,2019,142:50-60.14ME

41、NG H,JIN W,YU L,et al.Protective effects of polysaccharides on cerebral ischemia:a mini-review of the mechanismsJ.Int J Biol Macromol,2021,169:463-472.15YUAN-FENG Z,YAN-YUN Z,BERIT S P,et al.Prospects of Codonopsis pilosula polysaccharides:structural features and bioactivities diversityJ.Trends Food

42、 Sci Technol,2020,130(8):1-11.16陈文彬,唐瑛,刘李娜,等.党参多糖对大鼠脑缺血再灌注脑组织氧自由基和 Beclin-1 表达的影响J.华南国防医学杂志,2015,29(12):886-888.17陈文彬,唐瑛,王庆敏,等.党参多糖对脑缺血缺氧大鼠血清白细胞介素-1 及肿瘤坏死因子-水平的影响J.中华航海医学与高气压医学杂志,2016,23(4):309-311.实验动物科学征订启事实验动物科学(原实验动物科学与管理)是向国内外公开发行的专业性科技期刊,创刊于 1984 年。本刊旨在推广实验动物科研成果,传递实验动物科学信息,介绍国内外实验动物科学管理的经验及有关

43、法规条例。普及与提高并举,科研与管理并重,读者主要面向从事医学实验动物、动物实验科研及生产应用的专业技术人员和科研管理人员,医药生产研究、检验工作者。我刊于 2007 年更名为实验动物科学后,刊期变更为双月刊,国内统一连续出版物号为:CN11-5508/N。邮发代号不变。我刊继续秉承原有办刊原则,保持原有风貌,总卷目与其延续。我刊订阅可通过全国各地邮局办理,读者也可直接汇款编辑部订阅,款到即邮,连续在本编辑部订阅者可享受优惠。本刊邮发代号:18-131,定价 30 元,全年 180 元(含邮费)。地 址:北京市丰台区广安路 9 号国投财富广场 4 号楼 1706,邮编:100055;电话:010-63305401;E-mail:sydwkx ;开户行:北京农商行亚运村支行,户名:北京实验动物学学会,账号:0111 1301 0302 0000 257。95

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