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川陈皮素自组装前体脂质体的制备及其大鼠体内药动学研究
林 薇 ，姚 静， 周建平*通讯作者: 　Tel: 86 - 25 - 83271272, Fax: 86 - 25 - 83301606
E-mail: zhoujianp60@163. com

（中国药科大学 药剂教研室， 江苏 南京 210009）

摘要： 本文研制川陈皮素自组装前体脂质体，并以混悬剂为对照考察其经大鼠灌胃给药后的药代动力学行为。采用一种新型前体脂质体法制备川陈皮素前体脂质体，考察其水合后粒径、包封率、稳定性等理化性质；大鼠分别灌胃给予川陈皮素混悬剂和水合后的脂质体后，以尼莫地平为内标，采用HPLC法测定血浆中药物浓度，用Kinatica4.4程序计算药动学参数。制得的脂质体包封率可达80%以上,平均粒径为212.1 nm，稳定性好；药代动力学研究显示,与混悬剂相比川陈皮素脂质体在体内吸收较快, 相对生物利用度264.3%，MRT增加。 结果表明，液态前体脂质体制备工艺简单，可行性高；川陈皮素制成前体脂质体后，大鼠口服吸收显著增加，并具有一定的缓释作用。
关键词：川陈皮素；自组装前体脂质体；药代动力学

Preparation of self-assemble nobiletin proliposomes and its pharmacokinetics in rats
LIN Wei, YAO Jing，ZHOU Jian-ping﹡
(Department of Pharmaceutics , China Pharmaceutical University, Nanjing 210009, China)
Abstract： To prepare self-assemble nobiletin proliposomes and study the pharmacokinetic behavior of nobiletin in rats after ig administration of nobiletin pro- liposomes and nobiletin suspension . Nobiletin proliposomes were prepared by a new kind of proliposome preparation method, the tests of physicochemical properties including encapsulation efficiency, particle size and stability of formed liposome were determined .Nobiletin suspension and nobiletin proliposmes were administrated to rats by ig administration, respectively. Plasma concentration of nobiletin was determined by HPLC taking nimodipine as internal standard. The pharmacokinetic parameters were calculated by Kinetica 4.4 software. The encapsulation efficiency of nobiletin liposomes was more than 80% , with an average particle size of 212.1 nm and very good stability. Compared to nobiletin suspension, nobiletin proliposomes possessed higher absorptive rate and longer MRT, and the relative bioavailability was 264.3% in rat. It could be concluded that nobiletin proliposomes was a simple and feasible preparation, and showed greater absorption and sustained-release characteristics compared with that of nobiletin.
Key words: nobiletin; self-assemble proliposome; pharmacokinetics

川陈皮素(nobiletin，NOB)是从橘柑类植物中提取的多甲氧基黄酮类化合物，具有抗炎[1]、抗癌[2]等多种药理作用，抗癌作用表现为抗癌谱广，能预防癌症发生，防止肿瘤转移、复发，增强免疫力[2，3]等。目前国内外对川陈皮素的研究主要集中在药理方面，制剂学研究仅见有微乳报道[4]。川陈皮素脂溶性差且难溶于水，口服生物利用度低，脂质体作为新型的载体给药系统，具有生物膜特性和药物传输能力,将难溶性药物包裹在脂质双分子层中,使其具有较强的两亲性,可以显著提高药物的口服跨膜吸收及体内生物利用度[5]。本研究将川陈皮素制成口服给药的液态川陈皮素前体脂质体（nobiletin proliposomes，NOB-PLP），克服了普通脂质体在贮存期间易发生聚集、融合及药物渗漏，磷脂易氧化、水解等稳定性问题。该液态前体脂质体制备工艺简单，易于扩大化生产，省去了粉体状前体脂质体除去有机溶剂的步骤，解决了其水合过程中客观存在的水合速度较慢，局部溶解不完全、分散不均匀等问题。同时，本文对其在大鼠体内的药代动力学进行了研究，考察了脂质体对川陈皮素口服生物利用度的影响。

材料与方法
试剂 川陈皮素（南京神州佳美药物研究公司，97.12%）；尼莫地平（中国药品生物制品检定所，批号100270－200002）；大豆磷脂（上海太伟制药）；甲醇、乙腈为色谱纯；其他试剂均为分析纯。
仪器 LC-2010型高效液相色谱仪(日本Shimadzu岛津制作所)；日立 H-7650透射电镜（日本日立公司）；Zetasizer 3000激光粒子测定仪（英国马尔文公司）；分析天平（赛多利斯科学仪器有限公司）；XW-80A涡旋混合器（上海医科大学仪器厂）；80-2B型低速离心机（上海安亭科学仪器厂）；TGL-16B型高速台式离心机（上海安亭科学仪器厂）。
动物 健康SD大鼠，雄性，体重（200±20）g，由中国药科大学实验动物部提供。
川陈皮素前体脂质体的制备 将川陈皮素直接溶解在含有大豆磷脂、修饰剂A（含聚乙二醇亲水基的两亲性化合物）的乙醇溶液中，0.22μm微孔滤膜过滤除菌，灌封于充氮容器中，即制成液体型含药前体脂质体。将该液体型前体脂质体直接注入适宜的水合介质中，即可快速自组装成纳米级含药脂质体混悬液。
含量测定方法的建立 （1）检测波长的选择：分别称取NOB和空白辅料适量，溶于乙醇中，在200-400nm波长范围内进行扫描，确定最大吸收波长。结果表明川陈皮素在332nm处有最大吸收，且辅料无干扰。（2）标准曲线：精密称取干燥至恒重的NOB药物适量于容量瓶中，经乙醇定容后稀释到浓度为100μg·mL-1的储备液。精密吸取储备液适量至10mL容量瓶中，分别用无水乙醇稀释至刻度，摇匀即得2、4、6、8、10、12μg·mL-1的NOB溶液，以无水乙醇空白作对照，分别于332nm处测定吸收值，以吸收值（A）对浓度（C）做线性回归得标准方程。得川陈皮素含量的线性回归方程为：A= 0.0643C + 0.0063，r = 0.9999,线性范围2～12μg·mL-1。高、中、低三个浓度的平均回收率为99.92%，99.54%及9959%，日内及日间精密度RSD均<2%，均符合要求。
包封率的测定 先将0.5mL前体脂质体溶液注入9.5mL水合介质中，精密移取水合后的脂质体200μL于10mL量瓶中,用乙醇定容, 332nm处测定吸光度值，所得吸光度值代入标准曲线计算浓度(A) ,同时另取重组后的脂质体过0.45μm的微孔滤膜，取滤液200μL置10mL量瓶中,用乙醇定容, 332nm处测定吸光度值，所得吸光度值代入标准曲线计算浓度(B)。按EE% =B/A计算包封率(EE) , A 代表总的川陈皮素含量,B代表脂质体中川陈皮素含量。
川陈皮素脂质体的理化性质 （1）脂质体粒径及分布的测定：取脂质体混悬液适量,稀释若干倍后,采用马尔文激光粒度测定仪测定重组后得到的脂质体混悬液的粒径及其分布。（2）脂质体形态的观察：将脂质体混悬液点样于铜网上,用1%磷钨酸负染后,滤纸吸干染液,然后用日立H-7650透射电境观察。
脂质体稳定性考察 （1）离心加速实验[6]　将水合后的脂质体进行离心加速试验(10000 r·min-1 ,30 min) ,用分光光度法测定脂质体离心前后500 nm处吸收度的变化。根据公式Ke = ( A0 - A) / A0 计算稳定性参数, (式中A0为离心前脂质体的吸收度值,A为离心后脂质体的吸收度值）。（2）加速稳定性　将制得的前体脂质体密封后,放置于40 ℃及相对湿度75%条件下,于0，1，2，3个月取样，测定水合后脂质体的含量、粒径和包封率，考察川陈皮素前体脂质体的稳定性。
血浆中川陈皮素的测定方法 （1）色谱条件：色谱柱：Shimadzu ODS(4.6 mm×250 mm)；流动相：甲醇-水（体积比，70︰30）; 流速：0.8mL·min-1; 紫外检测波长：332nm; 柱温：28℃；进样体积：20μL，尼莫地平为内标。（2）方法专属性考察：取空白大鼠血浆100μL,按“血浆样品处理”项下依法操作，分别进样空白血浆、空白血浆外加内标和药物及大鼠灌胃给药后的血浆样品。（3）标准曲线的制备：取带塞离心管，精密加入不同浓度的NOB标准品溶液25μL及10μg·mL-1的尼莫地平内标液20μL，40℃水浴下N2 挥干，加入大鼠空白血浆100μL，使血浆中NOB的浓度分别为10，20，50，100，200， 500，1000，2000ng·mL-1，随后按“血浆样品处理”项下操作，以血浆中样品的浓度（C）为横坐标，样品峰面积与内标峰的比值（Ai/As）为纵坐标作线性回归，得拟生物样品标准曲线方程。（4）回收率及精密度：配制川陈皮素浓度为20，200，2000ng·mL-1 3种不同浓度的血浆样品,按“血浆样品处理”项方法操作后进行分析,考察回收率及精密度。（5）定量限：以信噪比为10∶1 时样品溶液浓度作为定量限。
血浆样品处理 取10μg·mL-1的尼莫地平内标液20μL于离心管中，40℃水浴下N2挥干，加入大鼠血浆100μL，涡旋振荡1min，加入0.5mL乙腈，涡旋振荡30s，再加入1.5mL乙酸乙酯，涡旋振荡5min，3000r·min-1离心10min，取上清液1.5mL移至挥干管中，在40℃水浴下N2挥干。然后用100μL流动相复溶，涡旋振荡2min后转移至子弹头中，10000 r·min-1离心10min，取上清液20μL进样，用内标法进行色谱分析。
给药方案及样品采集 取大鼠10只禁食12 h后随机均分为两组，以10.8mg·kg- 1分别大鼠灌胃给予水合后的脂质体及5%CMC-Na混悬剂，于给药后0.083，0.167，0.25，0.333，0.5, 1，1.5，2，3，4，6，8，12h毛细管眼底取血，分离血浆后按“血浆样品处理”项下操作，将所得到样品峰面积与内标峰的比值（Ai/As）代入标准曲线方程求算样品血浆浓度。
数据处理 血浓-时间数据用Kinetica4.4药动学程序对血药浓度数据进行药动学解析，并对两种制剂的主要药动学参数进行t检验。

结果
1 川陈皮素脂质体的理化性质
经测定川陈皮素脂质体包封率为(84.1±2.1) %。马尔文激光粒度测定仪测定结果显示,川陈皮素前体脂质体水合后,脂质体的平均粒径为212.1nm,多分散指数为0.23。在透射电镜下可以观察到,水合后的脂质体基本上呈类球形（图1）。

Figure 1　Transmission electron micrograph of nobletin liposomes
2 稳定性试验
通过离心加速实验, 测得: A0 = 0.261 , A =0.247 ,计算得Ke =0.054 。可见,离心前后吸光度变化很小。样品放置3个月后,未发现沉淀,仍为淡黄色澄明溶液。0，1，2，3个月取样的前体脂质体水合后测得药物含量分别为94.6%、95.3%、93.1%、92.7%，平均粒径分别为194.2、209.9、214.3、216.0nm，包封率分别为86.0%、84.3%、82.4%、83.2%，结果表明川陈皮素前体脂质体具有良好的稳定性。
3 大鼠体内药物浓度测定方法的建立
3.1 方法专属性考察
图2为本实验色谱条件下所得色谱图。结果表明血浆中的内源性杂质不干扰川陈皮素和尼莫地平的测定，且内标与药物分离完全，峰形良好。川陈皮素和尼莫地平保留时间分别为12.2min和16.2min。
3.2 标准曲线的制备及最低定量限
川陈皮素的标准曲线为Ai/As=0.0022C－0.0024 r=0.9999， 线性范围为10～2000ng·mL-1；信噪比S/ N =10 时定量限为10ng·mL-1 。
3.3 回收率与精密度
血浆中20, 200和2000ng·mL -1 3种不同浓度的川陈皮素的回收率分别为(104.28±5.96)% , (98.70±1.71) %和(93.81±3.13) %。日内RSD分别为4.28%,1.83%和2.52%;日间RSD分别为7.85% , 3.73%和2.35%，均符合生物样品测定要求。
4 血药浓度经时曲线及药动学参数
大鼠灌胃给予川陈皮素混悬剂和脂质体后的平均血药浓度-时间曲线见图3，用Kinetica 4.4 软件对其进行房室模型拟合,以AIC为判据，表明川陈皮素及其前体脂质体在大鼠体内的药动学过程均符合一室模型,主要药动学参数见表1。
与混悬剂相比，脂质体在大鼠体内的峰浓度Cmax、药-时曲线下面积AUC0-t及AUC0-∞均有显著提高，达峰时间tmax显著缩短，吸收速度ka显著增加（p<0.05），相对生物利用度为264.3%。川陈皮素脂质体在体内的CL下降,说明脂质体可以延缓川陈皮素口服后的体内清除率, 平均滞留时间( MRT)是混悬剂的1.63倍,可能具有延缓吸收的作用。
结果表明，将难溶性药物川陈皮素制成前体脂质体，可显著加快药物的吸收，增加吸收量，提高生物利用度，并有缓释效果。
Figure 2　HPLC chromatograms of blank plasma (A) ; blank plasma with 500ng·mL-1 nobiletin and internal standard (nimodipine) were added (B ) ; a plasma sample (C) Peak 1: nobiletin; Peak 2: nimodipine

◆—◆ nobiletin suspension; ■—■ nobiletin proliposmes
Figure 3 　Mean plasma concentration-time curve of nobiletin in rats after oral administration of nobiletin suspension and nobiletin proliposmes at single dose

Table 1 　Pharmacokinetic parameters of nobiletin suspension and nobiletin proliposmes ( n = 5)
Parameter
NOB suspension
NOB-PLP
Cmax / ng·mL-1
297±133
806±354＊
Tmax / h
1
0.5＊
Ka/h-1
1.12±0.13
1.86±0.56＊
CL/mL·h-1
5585±3525
1800±766
AUC0-t h / ng·h·mL-1
562±317
1454±564＊
AUC0-∞ / ng·h·mL-1
569±325
1504±544＊
MRT/h
1.60±0.23
2.61±0.81＊
＊P < 0.05 vs nobiletin suspension
讨论
川陈皮素的亲脂性和亲水性均不佳，采用常规的脂质体制备方法如薄膜分散法、乙醇注入法、逆相蒸发法等均存在去除有机溶剂后药物大量析出的问题，包封率低（约10%）。故本文采用液晶前体脂质体法[7]，即将脂质体膜材和药物以一定比例溶于分散介质中得澄明溶液，加水或缓冲液稀释至一定程度后自发形成脂质体混悬液，不除去有机溶剂，解决了析出的问题，并简化了制备过程。所得前体脂质体水合后包封率高，粒径分布均匀。此制备方法不需专门设备，只需稀释过程即可制成前体脂质体，十分简便，且该前体脂质体在贮存过程中为无水状态的澄明液体，是一种动力学稳定体系，有效解决了脂质体的稳定性问题。
川陈皮素生物利用低的可能原因是水溶性和脂溶性均不佳，与肠壁的亲和性不好，包裹于脂质体后不但改善了其两亲性，且因纳米级脂质体的粘附性,增加了药物与肠壁的接触面积和接触时间,因而,吸收较快,达峰时间提前,最高血浓大大提高。川陈皮素口服跨膜吸收的增加还得利于磷脂本身具有促进黄酮类药物的肠道吸收的能力[8]，修饰剂的加入又增加了脂质体的可变形性，使药物更易穿过细胞屏障[9]。此外，磷脂对黄酮类药物的主要代谢酶细胞色素P450有抑制作用[10，11]，这可能是川陈皮素制成脂质体后，生物利用度显著增加，平均滞留时间明显延长的另一原因。
本文成功的制备了稳定的、包封率较高的川陈皮素前体脂质体,且制备工艺简单,易于工业生产；川陈皮素脂质体大鼠灌胃给药后,不仅加快了吸收，而且具有缓释作用,大大提高了川陈皮素口服生物利用度。

References
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