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两种提取家蝇幼虫血淋巴方法的比较.docx

1、两种提取家蝇幼虫血淋巴方法的比较 【摘要】   目的: 对剪头法和瞬时破壁法提取的家蝇幼虫血淋巴粗提液进行蛋白浓度和SDS-PAGE分析比较。方法: 分别采用剪头法和瞬时破壁法提取家蝇幼虫血淋巴粗提液,同时设立未诱导组和热诱导组,测定各组的蛋白浓度进行比较分析,并对各组血淋巴粗提液进行SDS-PAGE的分析比较。结果: 剪头法热诱导组的血淋巴粗提液蛋白浓度高于未诱导组,瞬时破壁法提取的血淋巴粗提液蛋白浓度高于剪头法;经SDS-PAGE分析,瞬时破壁法提取的血淋巴粗提液蛋白条带明显多于剪头法。结论: 瞬时破壁法提取家蝇幼虫血淋巴简便易行,所提取的血淋巴蛋白成分多于剪头法。 【关键词】 家蝇;

2、 幼虫; 血淋巴   [Abstract] Objective: To compare two methods for collecting hemolymph of housefly larvae. Methods: Two methods, beheading and transient bodywall breaking down (TBB), were compared by comparing the total hemolymph volume, protein concentration and protein bands on SDS-PAGE jell of collect

3、ions respectively by the two methods. Housefly larvae in two states: heat induced and non-induced were used in each method experiment. Results: The hemolymph protein concentration of heat-induced larvae collected by beheading was higher than that of non-induced larvae; The hemolymph protein concentr

4、ation collected by TBB method was higher than that collected by beheading method; The bands on SDS-PAGE jell of hemolymph collected by TBB method were more than those collected by beheading method. Conclusion: TBB method is more simple and convenient for collecting the housefly larvae hemolymph, and

5、 the hemolymph protein ingredients are richer than those collected by beheading method.   [Key words] houseflies; larvae ; hemolymph   家蝇是一种重要的医学昆虫,在人工大规模高密度饲养条件下,也很少集体染病,具有较高地免疫防御机制,国内外学者已从家蝇幼虫的血淋巴中分离到多种抗细菌肽和抗真菌肽等活性肽类物质[1~5]。目前对家蝇幼虫血淋巴的提取收集主要有剪头法、研磨法、匀浆法等,后两种方法提取的成分更近似于家蝇幼虫的匀浆液。本研究采用沸水瞬时处死幼虫后

6、再瞬时离心,即瞬时破壁法,提取液更接近血淋巴成分,操作也比剪头法简便易行。为探讨瞬时破壁法提取血淋巴的优缺点,采用剪头法和瞬时破壁法提取家蝇幼虫血淋巴,并设立未诱导组和热诱导组,对所提取制备的的血淋巴粗提液进行分析比较,报告如下。1 材料与方法   家蝇来源及饲养驯化家蝇由本院寄生虫学教研室2000年建立种群,由本实验室饲养传代,幼虫按常规方法饲养至3龄备用。   试剂   BCA蛋白检测试剂盒是美国Pierce公司产品,丙烯酰胺、甲叉双丙烯酰胺、Tris、Tricine、过硫酸铵是AMRESCO公司产品,TEMED是Sigma公司产品,SDS是Sino-American Biotech

7、nology公司产品,肽类分子量标准是安玛西亚公司产品,蛋白质分子量标准由上海生物化学研究所生产,其他试剂均为国产分析纯。实验用水均为Millipore超纯水。   仪器   Milli-Q超纯水仪,电泳仪、电泳槽,5415 R冷冻离心机。   方法   家蝇幼虫的准备   分为未诱导组和热诱导组。未诱导组即3龄家蝇幼虫;热诱导组取3龄家蝇幼虫置于65 ℃电热恒温箱中1 min,再于室温下静置5 min,重复3次;最后置于65 ℃诱导5 min,取出后将幼虫放入饲料中继续饲养24 h后备用。   家蝇幼虫血淋巴粗提液的制备   剪头法:取准备好的家蝇幼虫洗净后,用滤纸将体表水分蘸

8、干,剪掉头部,收集血淋巴原液于冰浴中的Eppendorf管中;用4 ℃ Millipore超纯水将血淋巴原液稀释10倍,沸水浴5 min,冷却后于冷冻离心机4 ℃ 12 000 r/min离心30 min,取上清液作为血淋巴粗提液。瞬时破壁法:取30 g家蝇幼虫洗净后,用沸水瞬时处死幼虫,滤纸蘸干体表水分;将幼虫与50 ml 4 ℃ Millipore超纯水混合,倒入搅拌机中搅拌5 s,于冷冻离心机4 ℃ 12 000 r/min离心30 min,取上清液沸水浴10 min,再次离心取上清作为血淋巴粗提液。   家蝇幼虫血淋巴粗提液蛋白浓度测定   取制备的各组家蝇幼虫血淋巴粗提液25 μ

9、l,加入200 μl BCA蛋白检测试剂盒工作液,37 ℃培养30 min后测定OD值,从标准曲线计算蛋白质浓度。   SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳   采用Tris-Tricine SDS-PAGE体系,样品胶浓度为10%,成层胶浓度为4%,分离胶浓度为16%。分别取各组家蝇幼虫血淋巴粗提液20 μl与20 μl样品缓冲液均匀混合后,沸水浴5 min,冷却至室温后上样,90 V恒压电泳至指示剂进入分离胶后,120 V恒压电泳至胶底时结束电泳,考马斯亮蓝R-250染色。   数据统计与分析   使用统计学软件,各组数据以(x±s)表示,两组均数的比较采用t检验。   2 结果   两

10、种提取方法工作效率剪头法提取家蝇幼虫血淋巴并制备为粗提液,平均约需处理30只幼虫可制得1 ml血淋巴粗提液,工作4 h约可处理300只幼虫,制得血淋巴粗提液10 ml;瞬时破壁法,工作4 h可处理30 g幼虫,制得血淋巴粗提液43 ml。   蛋白浓度剪头法提取的家蝇幼虫血淋巴粗提液,热诱导组的蛋白浓度明显增高,与未诱导组相比差异具有统计学意义。瞬时破壁法提取的家蝇幼虫血淋巴粗提液,热诱导组的蛋白浓度与未诱导组相比没有增高,两者相比差异没有统计学意义。瞬时破壁法提取的家蝇幼虫血淋巴粗提液蛋白浓度明显高于剪头法提取的粗提液蛋白浓度,各组相比差异具有统计学意义。见表1。表1 家蝇幼虫血淋巴粗提液

11、的蛋白浓度注:(1)与剪头法未诱导组比较,P<,(2)与剪头法热诱导组比较,P<。   SDS-PAGE结果剪头法提取的家蝇幼虫血淋巴粗提液,经SDS-PAGE分析,在 kDa和 kDa间有部分蛋白条带,主要蛋白组分集中在 kDa与 kDa之间。未诱导组与热诱导组的血淋巴粗提液显示的条带数基本相同,尚不能从图中观察到两组间的明显差异。瞬时破壁法提取的家蝇幼虫血淋巴粗提液,经SDS-PAGE分析,主要蛋白组分集中在 kDa以下,蛋白条带数明显多于剪头法,未诱导组与热诱导组的血淋巴粗提液显示的条带数基本相同,并不能从图中观察到两组间的明显差异。见图1。   3 讨论   目前,国内外学者已从

12、家蝇幼虫的血淋巴中分离到多种抗菌肽并进行后续的研究,同时,亦努力从其血淋巴中分离到   [1]Moreira CK,Calvo E. The musca domestica larval hexamerin is camposed of multiple,similar polypeptides[J]. Insect Biochem MolBiol, 2003(4): 389-395.   赵飞.家蝇抗菌活性物质研究进展[J].山西农业科学,2007(9):23-26.   Mota J,Acosta M ,Argotte R.Induction of protective anti

13、bodies against dengue virus by tetravalent DNA immunization of mice with domain Ⅲ of the envelope protein[J].Vaccine, 2005 (26):3469-3476.   Moreno-Altamirano,,Sanchez-Garcia.,et Fc receptor -mediated infection of human macrophages by dengue virus serotype 2[J].J Gen Virol,2002:1123-1130.   Jan JH

14、Meng TH,Ming J Y, et external loop region of domain III of dengue virus type 2 envelope protein is involved insero type 2 specific binding to mosquito but not mammalian cells[J].J Virol,2004(1):382-388.   Screaton G,Mongkolsapaya J. T cell responses and dengue haemorrhagic fever[J]. Novartis Found

15、 Symp,2006:164-171.   Jaiswal S,Khanna N,Swaminathan S.High-level expression and one step purification of recombinant dengue virus type 2 envelope domain Ill protein in Escherichia coli[J].Protein Expr Purif,2004:80-91.   Guy B, Chanthavanich P, Gimenez S, et al. Evaluation by filow cytometry of a

16、ntibody-dependent enhancement (ADE) of dengue infection by sera from Thai children immunized with a live-auenuaed tetravalent dengue vaccine[J].Vaccine,2004(27-28): 3563-3574.   Roehrig JT,Volpe KE,Squires J.Contribution of disulfide bridging to epltope expression of the dengue type 2 virus envelope glycoprotein[J].J Virol,2004:2648-2652.   [10]Kelly EP,Greene JJ,King dengue 2 virus envelopegly coprotein aggregates produced by bacμlovirus are immunogenic in mice〔J〕.Vaccine,2000:2549-2559.

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