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成骨细胞骨形成机制研究

　　骨不断地进行着重建，骨重建过程包括破骨细胞贴附在旧骨区域，分泌酸性物
质溶解矿物质，分泌蛋白酶消化骨基质，形成骨吸收陷窝；其后，成骨细胞移行至
被吸收部位，分泌骨基质，骨基质矿化而形成新骨。破骨与成骨过程的平衡是维持
正常骨量的关键。成骨细胞是骨形成的主要功能细胞，负责骨基质的合成、分泌和
矿化。目前，随着研究的不断深入，在骨形成过程中，成骨细胞发展及其调控的分
子机制也逐渐得以揭示。
　　1　成骨细胞的起源
　　成骨细胞起源于多能的骨髓基质的间质细胞，除成骨细胞外，基质细胞还可分
化成软骨细胞，成纤维细胞，脂肪细胞或肌细胞。成骨细胞来源谱系有以下几种：
(1)骨髓克隆形成单位(成纤维细胞集落形成单位，CFU-F)；(2)骨祖细胞，可分化
成前成骨细胞和前软骨细胞谱系，常位于骨髓腔中，有很强的自身增殖能力；(3)
前成骨细胞，即最近的成骨前体，能定向分化成成骨细胞，具有合成和增殖能力［
1，2］。成骨细胞由多能的间质干细胞在体内的各种调控因素的调节下发展而来，
调控因素主要有BMP-2，BMP-2能诱导基质细胞向成骨细胞分化，具体就是诱导间质
干细胞分化形成骨祖细胞进而形成前成骨细胞［3］。
　　2　成骨细胞发展阶段及骨形成机制
　　成骨细胞在骨形成过程中要经历成骨细胞增殖，细胞外基质成熟、细胞外基质
矿化和成骨细胞凋亡四个阶段。很多因素可调节这几个阶段，从而最终调控骨形成
。
　　成骨细胞增殖期成骨细胞数量增加，以形成多层细胞，并合成、分泌Ⅰ型胶原
以便最终可以矿化形成骨结节。对成骨细胞增殖的调控具体说来即是对细胞周期的
调控，后者包括细胞在有丝分裂原作用下复制DNA和细胞分裂的调节机制，典型的
成骨细胞细胞周期时间为20～24小时［4］。抑制与细胞周期调节相关的基因会导
致增殖的停止。与增殖激活有关的基因有c-myc、c-fos、c-jun；与细胞周期有关
的基因有组蛋白、细胞周期素基因。在颅盖骨分骨细胞培养中观察到细胞从颅盖骨
中分离后很快即出现最高水平的c-fos mRNA表达，比c-myc和H4组蛋白基因表达早
许多。c-myc mRNA常在1天后表达达到高峰，H4组蛋白基因表达伴随细胞内DNA合成
，与增殖密切相关［5］。c-fos、c-jun基因表达在增殖晚期明显下调，同时伴随
成骨细胞增殖减慢，细胞由增殖期进入分化期。c-fos对成骨细胞增殖的作用在体
内实验中也得到证实，如在人的长骨与胚胎骨生长旺盛的区域c-fos原癌基因高表
达。另有报道，c-fos高表达的小鼠中骨形成也会增加，这些均证明c-fos与成骨细
胞增殖有关。而且c-fos与c-jun编码的蛋白质c-fos,C-jun能形成异二聚体，作为
转录因子结合到基因启动子区的AP-1位点，已观察到在增殖的成骨细胞中有很高的
AP-1结合活性，而在增殖下调后，这种高活性也明显改变，这说明原癌基因可能通
过c-fos/c-jun复合物来调节细胞增殖［2］。在成骨细胞增殖期，同时还能表达的
基因有表皮生长因子(FGF)、胰岛素样生长因子(IGF)、转化生长因子β(TGFβ)、
Ⅰ型胶原、纤维连接素(fibronectin)等基因［6］。
　　在细胞增殖晚期，与细胞周期与细胞增殖相关的基因表达下降，而编码细胞外
基质成熟的蛋白的基因开始表达，在分化早期主要是碱性磷酸酶表达，因此碱性磷
酸酶被认为是细胞外基质成熟的早期标志，AKP mRNA表达此时可增加10倍以上。有
学者用羟基脲抑制成骨细胞增殖，加入羟基脲1小时后观察到DNA合成和H4组蛋白m
RNA下降90%，与此同时，AKP mRNA增加4倍，证明增殖下调可提前诱导AKPmRNA表达
［5，7］。成骨细胞分泌AKP和钙盐结晶体至细胞外基质中，AKP使局部磷酸含量增
高，促使基质矿化。在细胞外基质成熟期，胶原继续合成并相互交联、成熟。
　　在成骨细胞分化晚期，当培养细胞进入矿化期，细胞内的AKP活性下降，而与
细胞外基质中羟磷灰石沉积相关的基因表达达到高峰，如骨桥蛋白(osteopontin)
、骨钙素、骨唾液酸蛋白(bone sialoprotein)基因。骨钙素等非胶原蛋白分泌至
　　细胞外基质中，与钙、磷结合，然后，沿胶原分子的长轴，钙和磷结合到胶原分子
的侧链的胶原氨基酸残基上，形成羟磷灰石结晶。在用羟基脲抑制增殖的实验中同
时可观察到，与AKP不同，骨钙素，骨桥蛋白的mRNA表达不因增殖抑制而增加，证
明它们与增殖无关而可能与矿化基质中成骨细胞分化有关。Owen在体外实验中进一
步观察β-磷酸甘油(β-GP)对骨钙素产生的影响，β-GP是羟磷灰石形成的原料，
能被AKP迅速水解，释放出无机磷。如果培养中没有β-GP时，即使细胞通过细胞外
基质成熟期进入矿化阶段，骨钙素基因也不能表达，说明在没有矿物质沉积时不能
表达矿化阶段的基因［5］。
　　体外培养的成骨细胞在骨矿化期骨钙素高度增加，此后，骨钙素逐渐降低，与
此同时，可观察到胶原酶增加，成骨细胞开始凋亡，并出现代偿性细胞增殖和胶原
合成［8］。
　　3　成骨细胞性骨形成的调控机制
　　成骨细胞在产生、发展的各个阶段均需借助于精细的调控，以最终完成正常的
骨形成。已知很多全身激素和骨组织局部调节因子都对成骨细胞发挥作用并影响成
骨细胞发展的各个阶段，调节成骨细胞功能。已知的全身激素如甲状旁腺激素(PT
H)、甲状旁腺激素相关肽(PTHrp)、1，25-二羟维生素D3［1，25(OH)2D3］、降钙
素(CT)、糖皮质激素、生长激素、甲状腺激素、性激素等对骨形成均有影响。而近
年来，骨组织局部调节因子对骨形成所起的作用尤受重视。
　　胰岛素样生长因子(IGFs)
　　IGFs是骨细胞中含量最丰富的生长因子，对成骨细胞功能起重要的调节作用，
目前已知的IGF主要为IGF-Ⅰ和IGF-Ⅱ，IGF-Ⅰ、IGF-Ⅱ由骨细胞生成并储存于骨
中，在骨吸收时从骨中释放出来；成骨细胞在骨吸收时也能分泌增加量的IGFs，以
自分泌方式发挥作用，刺激成骨细胞增殖和分化；另外由破骨细胞产生的IGFs以旁
分泌方式作用于成骨细胞。因为IGF对骨形成有很强的促进作用，因此IGFs在骨吸
收时大量增加介导了骨吸收和骨形成之间的偶联作用，使骨吸收后骨形成增加［9
］，有利于骨重建的正常进行。IGF-Ⅰ、IGF-Ⅱ对成骨细胞的作用基本相似，但I
GF-Ⅱ作用较IGF-Ⅰ弱。IGF-Ⅰ、Ⅱ在成骨细胞培养中均可刺激成骨细胞的增殖和
Ⅰ型胶原的生成，且与剂量有相关性，同时IGFs还可刺激碱性磷酸酶活性以及骨钙
素的产生［10］。离体实验显示IGF-Ⅰ、IGF-Ⅱ促进鼠成骨细胞原癌基因c-fos的
表达，后者可能在诱导成骨细胞增殖中起重要作用。不仅如此，IGFs还能介导全身
激素如糖皮质激素、PTH、1，25(OH)2D3、雌激素及机械压力对成骨细胞增殖和分
化的作用。另外IGFs与其他生长因子产生协同作用，共同刺激成骨细胞增殖和分化
。骨组织中IGF受其自身合成IGF受体数目及其亲和力、IGFBPs等调节［9，11］
。TGFβ也能调节IGF-Ⅰ表达，TGFβ增加人成骨细胞IGF-Ⅰ表达，而抑制鼠成骨细
胞的IGF-Ⅰ表达。
　　IGFs为小蛋白，在血循环中半衰期很短，IGFs在体内与胰岛素样生长因子结合
蛋白(IGFBPs)结合后半衰期延长很多。骨组织中共存在6种结构相关的IGFBPs，IG
FBPs可调节IGF作用。骨中IGFBP1-6除IGFBP-1外，其余均由成骨细胞产生，IGFBP
-3、IGFBP-5可促进IGF对成骨细胞的刺激作用。而其他IGFBPs尤其是IGFBP-4阻止
IGFs结合到胰岛素样生长因子受体(IGFR)上，抑制IGF活性。很多因素可调节IGFB
Ps产生，从而影响骨形成。骨细胞中，IGFs能调节IGFBps水平，使IGFBP-4减少而
IGFBP-5增加。TGFβ减少IGFBP-4mRNA表达，同时显着增加IGFBP-4蛋白分解。在S
aOS-2细胞系中，PTH增强IGFBP-4的结合活性及抑制IGFBP-4蛋白酶活性，从而对成
骨细胞产生抑制作用，而雌二醇可以消除PTH的这些作用。此外，皮质激素能抑制
IGFBP-5表达而1，25(OH)2D3刺激IGFBP-4表达从而二者均抑制成骨细胞增殖［9，
12］。
　　转化生长因子(TGFβ)
　　TGFβ超家族包括TGFβs，骨形态蛋白2-7(BMPs2-7)，肌动蛋白(actin)，抑制
　　素(inhibitin)。TGFβ合成初期是一种无活性的大分子复合物。骨基质中有大量的
无活性TGFβ，当pH降低或纤溶酶及组织蛋白酶激活时，可使无活性的TGFβ活化。
骨组织中骨吸收区pH值较低，可使TGFβ活化，因为TGFβ对成骨细胞骨形成产生重
要影响，因此TGFβ可以调节骨吸收区新骨的形成。TGFβ对骨形成作用很复杂。在
体外培养中TGFβ可以抑制或刺激成骨细胞增殖。这些矛盾的结果部分由于各个实
验中所使用的TGFβ浓度，细胞密度，细胞来源不同［13］。TGFβ刺激非转化的成
骨细胞DNA合成及细胞增殖，同时，TGFβ诱导c-fos原癌基因表达，而用c-fos反义
mRNA能阻断TGFβ的致有丝分裂作用，证明c-fos表达在TGFβ诱导的成骨细胞增殖
中有重要意义。目前，对TGFβ对成骨细胞分化功能的影响存在不同的结论，有报
道，在原代成骨细胞培养中，TGFβ抑制AKP和骨钙素的合成。但另有学者报道，T
GFβ可以明显促进细胞外基质的合成，刺激胶原、骨连接素(osteonectin)和骨桥
蛋白合成，增加骨基质沉积率［14］。另外，TGFβ1减少胶原酶转录并加速胶原酶
mRNA降解，这有利于维持骨中的胶原基质。在体实验中，实验动物接受TGFβ2系统
性治疗能使其小梁骨的形成增加，并且在鼠股骨骨膜下注射TGFβ1和TGFβ2也能促
使骨发生［15］。这些均证明TGFβ对骨形成起重要作用。TGFβ在人骨中的量随年
龄增加而下降。体外研究中发现1，25(OH)2D3、E2可以增加鼠成骨细胞TGFβ产量
。1，25(OH)2D3并能调节TGFβ受体表达。在人成骨细胞中，睾酮和PTH同样能增加
TGFβ产量，除此之外，BMP-2也能增加TGFβ表达，而且TGFβ可自身诱导TGFβ表
达［9］。
　　骨形态蛋白(BMPs)
　　BMPs是TGFβ超家族成员，具有刺激成骨的作用。BMP可由成骨细胞产生，产生
的BMP主要与骨基质结合，很少释放到骨外。BMP的主要生物学作用是诱导未分化的
间质细胞分化形成软骨和新生骨，前面已提到，BMP-2诱导成骨细胞的前体细胞分
化成成骨细胞。在MC3T3-E1小鼠成骨样细胞培养中，BMP能增加AKP活性和胶原合成
，但对成骨细胞增殖不起作用［2］。在鼠骨肉瘤ROS17/细胞系培养中，BMP-7
抑制细胞增殖，而在人成骨细胞培养中，BMP-7刺激细胞增殖。BMPs与其他生长因
子相互作用，共同诱导新骨形成，如TGFβ、VitD可使BMP-2增加。糖皮质激素促进
BMP-2、BMP-4对成骨细胞分化的诱导作用并在分化早期促进BMP-6合成，BMP-6在成
骨细胞分化早期有重要作用，它介导糖皮质激素诱导的成骨细胞分化。BMPs对其他
生长因子的影响表现在BMP-2增加大鼠成骨细胞IGF-Ⅰ、IGF-Ⅱ，BMP-4增加单核细
胞TGFβ，而BMP-7能增加IGF-Ⅱ型受体的数量和减少IGFBP-4的产生及增加IGFBP-
3、-5的产生。BMPs通过调节这些生长因子而诱导成骨作用［9，16，17］。
　　白细胞介素1(IL-1)
　　IL-1由单核巨噬细胞和骨髓基质细胞产生，可自分泌、旁分泌发挥作用。现已
证明，它不仅对破骨细胞性骨吸收有明显促进作用，而且它还能影响成骨细胞性骨
形成。IL-1对成骨细胞增殖有促进作用，而它对成骨细胞分化的作用比较复杂，不
同的研究结果显示，IL-1可以刺激或抑制胶原合成、AKP活性和骨钙素合成。实验
结果的不同是由于实验中所采用成骨细胞培养方法、细胞密度、IL-1剂量和IL-1处
理时间、方式的不同［2］。最近，Shadman用大鼠骨髓基质细胞进行实验，观察到
IL-1短暂作用于成骨细胞时，骨结节形成增加且呈剂量依赖性；而IL-1较长时间作
用于成骨细胞时可产生双向作用，低剂量增加骨结节形成，而较高剂量对骨结节形
成不产生影响或产生抑制作用。不仅如此，IL-1对骨形成的作用也与细胞密度有关
，抑制作用只在采用最高的细胞密度接种时出现。在体实验研究表明，间断注射I
L-1导致骨吸收的短暂增加，而随后伴随较长时间的骨形成增加［2，6，18］。
　　IL-1的产生受全身激素的调控，雌激素能抑制成骨细胞分泌IL-1，而1，25(O
　　H)2D3作用于成骨细胞使其产生IL-1增加［19］。
　　肿瘤坏死因子α(TNFα)
　　TNFα是17KDa的细胞因子，由破骨细胞样细胞及成骨细胞合成。现已证明TNF
α可以直接作用于成骨细胞，对其增殖、分化产生影响。TNFα对成骨细胞的作用
较复杂，TNFα在非转化的成骨细胞系中能刺激DNA合成，而在大鼠骨肉瘤细胞系(
ROS 17/)培养中，TNFα不影响DNA合成或在低剂量时抑制DNA合成。最近，Fro
st在人成骨细胞(hOBs)培养中发现，TNFα低剂量时刺激成骨细胞增殖，而在高剂
量时抑制增殖。现在，学者们在TNFα对成骨细胞分化的作用的研究结果比较统一
，均认为TNFα抑制胶原合成、AKP活性和骨钙素合成［2，19，20］。
　　TNFα在骨组织中产生的调控也与IL-1有相似之处。E2可抑制TNFα的产生，而
1，25(OH)2D3则促进TNFα基因转录，增加TNFα形成［19］。这些全身激素常通过
调控骨组织中的细胞因子产生从而调节骨形成。
　　除以上局部因子外，其他因子如表皮生长因子(EGF)、TGFα、血小板源性生长
因子(PDGF)及一氧化氮等均对骨形成有明显作用。
参考文献
　　1　Franklin HE. Bone marrow, cytokines and bone remodeling. N Engl
Med, 1995,　332:305.
　　2 Zheng MH, Wood DJ, Papadimitrion JM. What′s new in the role of c
ytokines on osteoblast proliferation and differentiation. Pathol Res Pr
act, 1992,188:1104.
　　3 Thies RS, Bauduy M, Ashton BA, et al. Recombinant human bone morp
hogenetic protein-2 induces osteoblastic differentiation in W-20-17 str
omal cells. Endocrinology, 1992,130:1318.
　　4 McCabe LR, Last TJ, Lian JB, et al. Expression of cell growth and
bone phenotypic genes during the cell cycle of normal diploid osteobla
sts and osteosarcoma cells. J Cell Biochem, 1994,56:274.
　　5 Owen TA, Aronow M, Shalhoub V, et al. Progressive development of
the rat osteoblast phenotype in vitro: reciprocal relationships in expr
ession of genes associated with osteoblast proliferation and differenti
ation during formation of the bone extracellular matrix. J Cell Physiol
, 1990,143:420.
　　6 Jane BJ, Gary SS. Osteoblast biology. In:Robert M, Davd F, Jennif
er K. eds. Osteoporosis. San Diego, California, : Academic Press,
　　7 McCabe LR, Kundu BR, Harrison RJ, et al. Developmental expression
and activities of specific fos and jun proteins are functionally relat
ed to osteoblast maturation: role of Fra-2 and jun D during differentia
tion. Endocrinology, 1996,　137:4398.
　　8 Lynch MP, Stein GS, Stein L, et al. Apoptosis during in vitro bon
e formation. J Bone Miner Res, 1994,9:S352.
　　9 Linkhant TA, Mohan S, Baylink DJ. Growth factors for bone growth
and repair: IGF, TGFβ and BMP. Bone, 1996,19:1S.
　　10　Schmid C, Ernst M. Insulin-like growth factors. In: Maxine G, e
ds. Cytokines and bone metabolism. CRC Press,
　　11 丁桂芝.类胰岛素生长因子对骨代谢的调节作用.中国骨质疏松杂志，1995
，1：73.
　　12　Kanzaki S, Hilliker S, Baylink DJ, et al. Evidence that HBC in
culture produce IGFBP-4 and -5 proteases. Endocrinology, 1994,134:383.
　　13 Centrella M, Horowits MC, Wozney JM, et al. Transforming growth
factor-β gene family members and bone. Endocrine Rev, 1994,15:27.
　　14 Hock J, Canalis E, Centrella M. Transforming growth factor beta(
TGF-beta-1) stimulates bone matrix apposition and bone cell replication
　　in cultured fetal rat calvariae. Endocrinology, 1990,126:421.
　　15 Rosen D, Miller SC, Deleon E, et al. Systemic administration of
recombinant transforming growth factor beta 2(rTGF-β2) stimulates para
meters of cancellous bone formation in juvenile and adult rats. Bone, 1
994,15:355.
　　16 Knusten R, Honda Y, Strong DO, et al. Regulation of IGF system c
omponents by OP-1(Osteogenic Protein-1) in human bone. Endocrinology, 1
995,136:857.
　　17 Kanzaki S, Baxter RC, Knutsen R, et al. Evidence that HBC in cul
ture secrete IGF-Ⅱ and IGFBP-3, but not acid-labile subunit both under
basal and regulated conditions. J Bone Miner Res, 1995,10:854.
　　18 Shadman S. Interleukin-1α has biphasic effects on bone formatio
n by rat bone marrow stromal cells. J Bone Miner Res, 1995,10,T219.
　　19 Roodman GD. Advances in bone biology:the osteoclast. Endocr Rev,
1996,17:308.
　　20 Frost A, Jonsson KB, Nission O, et al. Inflammatory cytokines re
gulate proliferation of cultured human osteoblast. Acta Orthop Scand, 1
997,68:91.