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p16、cyclinD1在胃癌及癌前病变中表达与胃癌的关系.docx

1、p16、cyclinD1在胃癌及癌前病变中表达与胃癌的关系 【摘要】 目的 本研究通过检测p16、cyclinD1蛋白在正常胃粘膜、慢性萎缩性胃炎、胃粘膜不典型增生及胃癌中的表达,探讨p16、cyclinD1表达与胃癌发生发展的关系及作用机制。 方法 应用免疫组化S-P法检测慢性萎缩性胃炎、胃粘膜不典型增生及胃癌组织中p16、cyclinD1蛋白的表达情况。 结果 ①p16蛋白检测结果:p16蛋白在慢性萎缩性胃炎组中阳性表达率显着高于不典型增生组,不典型增生组与胃癌组之间无显着性差异。②cyclinD1蛋白检测结果:cyclinD1蛋白在慢性萎缩性胃炎组与不典型增生组之间无显着性差异,胃癌组

2、中阳性表达率显着高于不典型增生组,p16与cyclinD1蛋白表达呈负相关系。 结论 胃癌发生机制涉及p16与cyclinD1基因的异常,随着病变进展,p16蛋白表达逐渐降低,cyclinD1蛋白表达逐渐升高,提示p16、cyclinD1可能是胃癌发生过程中的早期分子事件。 【关键词】 胃癌 免疫组 p16;cyclinD1 胃癌是常见的恶性肿瘤之一,其病因及发病机制还未完全阐明。因此,深入探讨胃癌的发生发展规律,对揭示胃癌的发生机制具有重要意义。本研究利用免疫组织化学方法,对胃癌及癌前病变中p16、cyclinD1基因的表达产物进行分析研究,对揭示胃癌的发生、发展提供理论依据,为临床诊

3、断和治疗提供参考。   1 材料与方法  标本来源 收集河北省邯邢矿山管理局职工总医院病理科2000年2月~2005年8月存档胃镜咬检的石蜡包埋胃粘膜组织50例及胃癌标本36例,均有完整的病理资料。所有标本常规石蜡包埋制成4μm厚切片4张,其中一张切片HE染色进行病理形态学观察,其余3张切片用于免疫组织化学染色。  主要试剂 鼠抗人细胞周期素D1单克隆抗体;鼠抗人p16单克隆抗体;S-P试剂盒,DAB显色剂,为美国Santa Cruz公司产品,均购自北京中山生物技术有限公司。  免疫组织化学染色方法主要步骤 福尔马林固定、石蜡包埋的病理组织块切成4μm厚切片,每个蜡块各作4张切片。第

4、一张用于HE染色,第二张用%PBS代替一抗作为阴性对照,第三、四张分别行抗p16、cyclinD1抗体标记p16、cyclinD1蛋白,免疫组织化学染色用链菌素亲生物素-过氧化物酶法。  判断标准 p16参照Geradts[1] 标准,细胞核或细胞浆着棕黄色为阳性细胞。阴性表示未见阳性着色细胞,或仅有胞浆着色而每高倍镜下胞核着色细胞个数≤1;弱阳性表示着色较浅或着色细胞数≤25%者;阳性表示着色深度适中或着色细胞数占25%~50%者;强阳性表示着色较深或着色细胞数50%者;所有阳性样本必需满足每高倍镜下核着色细胞个数≥2。cyclinD1参考Betticher[2] 标准:未见阳性细胞或阳性

5、细胞表达弱,与对照组正常上皮细胞表达类似20%为阴性,中等强度的表达≥20%为阳性,≥50%为强阳性。  结果判定 首先通过HE染色显微镜下观察,确定组织标本的病理特征,然后,在光镜下阅片,选择无组织折叠、无边缘效应等影响读片结果的典型部位,随意选取5个高倍视野并计数1000个细胞,以其平均数作为最后评定。分别由2位研究者独立阅片后再进行结果判定,不一致者共同读片后确定。  统计方法 应用统计软件包,采用χ 2 检验、方差分析和Spearman等级相关分析方法。   2 结果  p16蛋白在胃粘膜各病变中的表达 p16蛋白表达定位于细胞核和细胞浆内。在正常胃粘膜、慢性萎缩性胃炎、

6、不典型增生、胃癌中的表达,见表1。在慢性萎缩性胃炎组中阳性表达率显着高于不典型增生组,不典型增生组与胃癌组之间无显着性差异,随着病变进展,其阳性表达率逐渐降低。 表1 p16蛋白在胃粘膜各病变中的表达  cyclinD1蛋白在胃粘膜各病变中的表达 cyclinD1蛋白表达定位于细胞核内。在正常胃粘膜、慢性萎缩性胃炎、不典型增生、胃癌中的表达,见表2,cyclinD1蛋白在胃癌组中阳性表达率显着高于不典型增生组,不典型增生组与慢性萎缩性胃炎组之间无显着性差异,随着病变进展,其阳性表达率逐渐升高。 表2 cyclinD1蛋白在胃粘膜各病变中的表达 类型 例数 阴性 阳性正常胃粘膜 21 16 5

7、慢性萎缩性胃炎 24 17 7不典型增生 26 18 8胃癌 36 17 19  p16与cyclinD1表达的相关性 在p16阳性表达的16例胃癌中,cyclinD1阳性表达者3例,在p16阴性表达的20例胃癌中,cyclinD1阳性表达者17例,提示P16和cyclinD1在胃癌组织中呈负相关,见表3。 表3 p16、cyclinD1蛋白在胃癌组的相关性表达   3 讨论 p16基因是由Kamb[3] 及Serrano[4] 发现的抑癌基因,定位于p21不到40kb的范围内,由三个外显子和两个内含子组成。三个外显子长度分别为126bp,307bp和11bp,编码一个16kD的蛋白,

8、即p16蛋白。p16既是正常细胞周期有效调控者,又是抑制肿瘤生长的关键成分。p16蛋白能与cyclinD1竞争性地结合CDK4和CDK6,抑制其活性,使其一系列底物保持持续去磷酸化高活性,而不能解除pRb对转录因子E2F等的抑制,从而阻止细胞G1期进入S期,直接抑制细胞增殖。相反,当p16基因发生突变、缺失时,p16蛋白不能正常表达,使细胞增殖失控,发生癌变。此外,在正常细胞中存在着一个负反馈网络[5] ,即磷酸 化pRb增加时,可引起p16基因表达增强,增加的p16与cy-clinD1竞争性地结合CDK4,从而抑制CDK4活性,抑制细胞增殖。文献报道 [6] 胃癌中p16基因表达阳性率明显低

9、于正常胃组织和非癌病变组织,本研究对胃粘膜各级病变p16蛋白的检测结果显示:各组样本中均有不同程度的p16蛋白表达,p16蛋白在慢性萎缩性胃炎组中阳性表达率显着高于不典型增生组,不典型增生组与胃癌组之间无显着性差异,随着病变从慢性萎缩性胃炎→不典型增生→癌的进展,其阳性表达率逐渐降低,提示p16基因表达缺失与胃癌发生、发展有关。与文献报道一致,同时提示p16为肿瘤抑制基因。cyclinD1基因是一种原癌基因,由351个腺嘌呤、392个胞嘧啶、376个鸟嘌呤和206个胸腺嘧啶组成。1992年Inaba等7] 报道了cyclinD1基因在11q13的位置上。1994年Hinds等8] 证实了cyc

10、linD1有致癌作用。cyclinD1是细胞周期的正性调控因子的代表,与结合并使之激活,活化的使pRb在G1-S转换期发生磷酸化,释放出E2F,进一步激活S期相关基因的转录,推动细胞从G1期进入S期[9] 。显然,cyclinD1表达异常引起的细胞周期失控是细胞异常增殖和癌变的原因,可能是胃癌发生的早期分子事件。Han[10] 认为%的胃癌有cyclinD1表达。兰斌[11] 报告cyclinD1在胃癌中的阳性表达率为%,明显高于癌旁组织,而且与胃癌的转移与分化相关。本研究显示,各组样本中均有不同程度的cyclinD1蛋白表达,cyclinD1蛋白在胃癌组中阳性表达率显着高于不典型增生组,不典

11、型增生组与慢性萎缩性胃炎组之间无显着性差异,随着病变从慢性萎缩性胃炎→不典型增生→癌的进展,其阳性表达率逐渐升高,与文献报道一致 [12] ,提示cyclinD1基因的扩增可能发生在胃粘膜上皮癌变的早期阶段,是重要的胃癌促发因素,这也意味着该基因可能作为一个潜在的胃癌早期诊断分子标志。 p16和cyclinD1蛋白表达之间的相互关系:p16、cyclinD1均为重要的细胞周期调控基因,两者都与抑癌基因Rb有密切的关系。本研究表明胃癌p16与cyclinD1表达呈负相关。p16阳性的胃癌,cyclinD1阳性表达率低;p16阴性表达者,cy-clinD1阳性表达率高。提示处于分裂增殖状态的

12、细胞p16表达减少,而cyclinD1表达增高,胃癌细胞增殖失去了p16的反馈性抑制而受到cyclinD1的促进作用,表现为无限增殖的倾向。p16失表达与cyclinD1高表达在胃癌的发生上可能具有协同作用,使肿瘤获得更大生长趋势。联合检测p16与cy-clinD1蛋白比检测单一基因产物更有价值,能为临床检测和诊断胃癌提供 1 Geradts J,Kratzke RA,Niehans GA,et detec-tion of the cyclin-dependent kinase tumor suppressor gene1product p16INK4A in archival huma

13、n solid tu-mors:correlation with retinoblastoma protein J Res,1995,55:6006-6011. 2 Betticher DC,Heighway J,Hasleton PS,et significance of CCND1overexpression in primary resected non-small-cell lung Cancer,1996,74:294-300. 3 Kamb A,Gruis NA,Weaver J,et cell cycle regulator potentially in-volved in

14、 genesis of many tumor ,1994,264:436-440.   4 Serrano M,Hannon GJ,Beach newregulatory motif in cell-cycle con-trol causing specific inhibition of cyclin ,1993,366:704-707. 5 袁玉刚.抑癌基因p16与头颈部肿瘤.国外医学,1998:22:11-13. 6 Liu F,Zhang X,Cao WD,et between the expression of p16and PCNA in grade of Fourth Mi

15、l Med Univ,1999,20:587-599. 7 Inaba T,Matsushime H,Valentine M,et organization,chro-mosomal localization,and independent expression of human cyclin D ,1992,13:565-574. 8 Hinds PW,Dowdy SF,Eation of a human cyclin geneas an Natl Acad Sci ,91:709-713. 9 Dreyling MH,Bullinger L,Ott G,et of the pathw

16、ay in mantle cell Res,1997,57:4608-4614. 10 Han S,Kim HY,Park K,et of p27Kip1and cyclin D1proteins is inversely correlated and is associated with poor clinical out-come in human gastric Oncol,1999,71:147-154. 11 Lan Bin,Xu Dongpi,Lin of cyclinD1and p53in gas- tric practical journal of cancer,2002,17:26-28. 12 Akama Y,Yasui W,Yokozaki H,et amplification of the cy-clin E gene in human gastric J Cancer Res,1995,86:617-621. 13 邹建湘,王立东,陈玉龙,等.p16、cyclinD1在胃癌发生过程中的表达.中国肿瘤临床,1999,26:98-100.

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