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定量PCR加样操作流程.doc

1、QPS—201加样流程和Step One Plus仪器的仪器操作 要准备的东西: 1. 八排管和盖子 2. 96孔细胞培养板 3. 移液器:10ul,20ul,100ul,200ul。 4. 枪头10ul,20ul,100ul,200ul或者300ul. 5. 200ul和600ul的PCR管. 6. 试剂:QPk—201,上下游引物,cDNA,去RNA酶的PCR水 7. 注意事项: A。引物的储存浓度100nm,工作浓度:5—10nmol,引物要过量,上下游引物要先混匀在一起,然后再加.内参actin和目标基因的引物都要混匀.混匀后的引物可用半个月,用时要反复混匀,水样的东

2、西混20下,油状的(酶)东西至少要混30下. B.试剂配总管用,cDNA和酶mix配一管,引物和水配一管。混匀之后,再分别加到管子里。为什么试剂要配总管呢?cDNA模板量很少,所以加多加少对实验影响很大,酶加10ul,样多,少量的东西要想混匀,必须放在大量的东西里这样再去混匀,就可以使每个管子里的样品都能保证是一致的。 C。内参和目标基因都要跑3个复孔,取平均值,差异CT值要在0。5之内,如果Ct值>0.5,结果就不可信,要重新再做. (一) QPk-201加样流程: 用QPk—201做样品体系是20ul的. cDNA :2ul PCR水:6ul 上下游引物共:2ul 酶MIX

3、10ul 一共是20ul体系。 把cDNA :2ul和酶mix:10ul共12ul配一管. 把引物:2ul和水6ul共8ul配一管。 以下以样品为例,加样流程如下: 目标基因STOB1,样品六个,编号:1,2,3,C5,C6,C7 内参基因actin 样品 1 2 3 C5 C6 C7 目标基因STOB1       STOB1 ‚ ‚ ‚ ‚ ‚ ‚ STOB1 ƒ ƒ ƒ ƒ ƒ ƒ 内参Action       Action ‚ ‚ ‚ ‚ ‚ ‚ Action

4、ƒ ƒ ƒ ƒ ƒ ƒ 如何计算是关键: 6个样品,每个样品配一管,再分6次加,但是要考虑都损失,所以要多加10%的量,以避免最后没得加了。 cDNA和酶配一管: cDNA:2×6×1。1=13.2ul 酶Mix:10×6×1。1=66ul,在总管里吹打30次混匀,取12ul。 引物和水配一管‚: 引物:2×18×1.1=39。6ul PCR水:6×18×1。1=118。8ul,在总管里吹打20次混匀,取8ul。 配完之后要混匀. 剩下的就是加样,贴在一侧的壁上,加样时,先吹打,再吸,贴壁打到底,按着不松,把移液器收回来。加一个样品,就换一个枪头。 加另一管的时候,把管子反过来,再在这一侧壁上加管‚,的就不用换枪头了。 这个加样的步骤一般是在碎冰上操作的,试剂一定要放在冰上的。 加完之后,轻轻的盖上盖子,放在离心机里离心,让试剂都落到管子底部去。 离心完之后,就可以放到定量PCR仪的黑色的96孔板子上了,然后打开机器,放进去,开始设置了。

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