1、
安全性评价实验
实验材料及动物
受试物:五味消毒饮分散片
实验动物:清洁级昆明小鼠100只
急性毒性试验方法
取小鼠100 只,随机分为10 组,每组10 只,雌雄各半,禁食12 h 后分别称重。根据改进寇氏法设9个剂量组,由低到高的组间剂量比为0175 :1 ,第Ⅰ～ Ⅸ组的给药剂量分别以28.88 ,38.51 , 51.34 , 68.46 , 91.28 , 121.70 , 162.27 , 216.36, 和288.48 g·kg- 1 ,以0.75 稀释等级系数,第Ⅰ～ Ⅷ组用蒸馏水稀释成相等的容量2.4 mL 灌胃, Ⅸ组为五味解毒水煎剂原液2.4 mL
灌胃
2、第Ⅰ～ Ⅸ组的药物配制浓度分别0.24 ,0.32 ,0.43 ,0.57 ,0.76 ,1.01,1.35 ,1.80 ,2.40 g·mL- 10.每次灌胃体积均为20 mL·kg- 1 ,每次间隔4 h ;第Ⅹ为对照组,灌服等量蒸馏水。每天观察记录动物的毒性反应及死亡情况,对死亡动物及时剖检、记录病理变化,连续观察7 d。根据各组小鼠死亡数,再计算LD50。
亚慢性毒性试验方法
动物分组处理 取小鼠80只,随机分为4 组,每组20只,雌雄各半。Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ组为药物的高、中、低剂量组,分别以LD50的四分之一，十分一，二十五分之一剂量灌胃,每次灌胃体积均为20 mL·kg - 1 ;
3、Ⅳ组为对照组,每日定时灌胃等量蒸馏水。各组连续灌胃14 d ,停药后再持续观察
14 d。
观察指标 临床表现 每天观察小鼠的一般状况,每周测定体重变化情况,死亡小鼠及时剖检。
血常规变化 于停药后第1天和第14 天,各组随机抽取10 只采血,
EDTA 二钾盐抗凝,立即用AC·Tdiff2 型全自动血细胞计数分析仪测定红细胞数、白细胞总数、血小板数和血红蛋白含量。
血清生化值变化 于停药后第1 天和14 天,每组随机抽取10 只采血,分离血清,用Vitalab Selecctra E自动生化分析仪测定谷丙转氨酶、谷草转氨酶、碱性磷酸酶、尿素氮、肌酐、总蛋白、白蛋白的含
4、量。
病理学变化 于停药后第1 天每组随机抽取3只,停药后第14 天对剩余所有小鼠剖检,采集心、肝、脾、肺、肾、胃和肠,固定,石蜡切片,HE 染色,显微镜下观察病理变化。
通过急性毒性实验，得出五味消毒饮分散片在相应的剂量中，未引起小鼠的死亡，可以认为五味消毒饮分散片在剂量范围内未引起毒性反应。
亚慢性毒性实验期间，观察各组小鼠生长发育是否良好，各种体征表现是否正常。五味消毒饮分散片提取物对动物体重、脏器重量、血液谷丙转氨酶(ALT)、谷草转氨酶(AST)、尿素氮(BUN)、肌醉(Cr)、血清白蛋白(Alb)和血糖(Glu)均有无显著影响。
长期毒性试验
受试物
六个月喂
5、养实验周期较长，采用灌胃的方式给予受试物会对动物造成较大损伤，因此考虑将五味解毒分散片加入饲料，由动物在摄食时摄入受试物。低、中、高3个剂量组分别在基础饲料粉中添加4%、8%和16%的五味解毒分散片，做成含黄连解毒汤提取物的饲料。
动物分组及剂量设计
取80只清洁级昆明小鼠，雌雄各半，随机分为4组(正常对照组、低剂量组、中剂量组和高剂量组)。每组雌雄各10只，分笼喂养。低、中、高三个剂量组分别按5g/Kg·Bw、10g/xg·Bw和20g/Kg·Bw给予受试物。实验处理每周称量一次动物体重，根据体重及给予受试物剂量，精确计算应给予的饲料量，每天定量给予，保证所给予的饲料各组动物均能吃完。实验开始后，每天观察并记录动物的一般表现、行为、中毒表现和死亡情况。于实验开始后的第六个月最后一天傍晚禁食，不禁水，次日早上眼眶取血，分离血清，测定谷丙转氨酶(ALI，)、
谷草转氨酶(AST)、尿素氮(BUN)、肌配(Cr)、血清白蛋白(Alb)和血糖(Glu)。处死动物后，分离器官，测定肝、肾、脾和胸腺的重量。
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