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高通量测序文库质量控制技术研究进展.pdf

1、Hereditas(Beijing)2024 年 2 月,46(2):140148 收稿日期:20231023;修回日期:20231222;网络发布日期:20240105 作者简介:崔梦楠,硕士,实验师,高通量测序和数据解读。E-mail: 通讯作者:崔玉军,博士,研究员,基因组流行病学。E-mail: DOI:10.16288/j.yczz.23-262 综 述 高通量测序文库质量控制技术研究进展 崔梦楠,郭彦,武雅蓉,裴广倩,崔玉军 军事科学院军事医学研究院微生物流行病研究所,北京 100071 摘要:作为生命科学和医学领域中的关键性支撑技术,高通量测序已得到快速发展并日趋成熟。该技术工作

2、流程可分为核酸提取、文库构建、上机测序、数据分析等,其中文库构建是承上启下的关键步骤,文库构建的效果受制于上游样品质量,同时会对测序数据产出后的数据分析造成影响。对文库构建质量控制技术的选择和实施是提高结果可靠性、降低测序数据误差的重要保证。本文对文库构建质量控制技术进行深入综述,总结评价其原理、优缺点、适用范围,并对实际应用场景中相关技术的选择进行了论述,以期为科研人员、疾病预防控制人员等在选择文库质量控制技术时提供理论依据与参考,从而促进高通量测序工作的质量和效率。关键词:高通量测序文库;文库浓度;文库大小分布;质量控制;技术评价 Progress on the quality contr

3、ol technology of next generation sequencing library Mengnan Cui,Yan Guo,Yarong Wu,Guangqian Pei,Yujun Cui State Key Laboratory of Pathogen and Biosecurity,Beijing Institute of Microbiology and Epidemiology,Beijing 100071,China Abstract:As a key supporting technology in the fields of life sciences an

4、d medicine,high-throughput sequencing has developed rapidly and become increasingly mature.The workflow of this technology can be divided into nucleic acid extraction,library construction,sequencing,and data analysis.Among these,library construction is a pivotal step that bridges the previous and su

5、bsequent stages.The effectiveness of library construction is contingent on the quality of upstream samples and also impacts the data analysis following sequence data output.The selection and implementation of library construction quality control techniques are crucial for enhancing the reliability o

6、f results and reducing errors in sequencing data.This review provides an in-depth discussion of library construction quality control techniques,summarizing and evaluating their principles,advantages and disadvantages,and applicability.It also discusses the selection of relevant technologies in pract

7、ical application scenarios.The aim is to offer theoretical foundations and references for researchers,disease prevention and control personnel,and others when choosing library quality control techniques,thereby promoting the quality and efficiency of high-throughput sequencing work.Keywords:next gen

8、eration sequencing library;library concentration;size distribution of the library;quality control;technology analysis 第2期 崔梦楠等:高通量测序文库质量控制技术研究进展 141 高通量测序又称下一代测序(next generation sequencing),相较于 Sanger 测序,通量高,运行一次能读取几十万到几百万条 DNA 分子的序列,在鉴定病原、揭示病原微生物变异与进化、微生物群落组成等方面具有独特的优势13,已被广泛应用在生命科学和医学领域4。由于高通量测序仪无

9、法识别天然的 DNA 分子,所以测序前需进行文库的构建,即在 DNA 分子上连接接头序列,使之能够被测序仪捕获,进行克隆扩增反应以激发信号5。例如,Illumina 测序采取了边合成边测序,通过桥式 PCR形成簇,将文库序列与测序芯片(flow cell)连接固定。文库构建的实验流程虽然较为繁琐复杂,但意义重大。文库的质量与样品的质量具有一定的相关性,其在一定程度上可识别质量较差或浓度不足的样品,低质量的样品会影响文库的转化率、测序的深度、复杂性和均一性,同时对质量高的文库进行上机测序也是测序成功的前提。对质量不合格的文库进行上机测序会降低数据的产出,达不到有效数据量进而影响下游分析,甚至会导

10、致测序失败,无法充分发挥测序平台的功能,浪费样品、昂贵的试剂、用户时间和仪器6。此外一张芯片的理论数据量一般远远大于单个样品产生的实际测序数据量,在实际操作过程中,往往对多样品文库进行混合(pooling)7,以此来提高经济效益、时间效益和通量。当进行上机测序的文库浓度较低时,产生的有效数据量较少,增大测序成本、延长测序周期;当文库浓度较高时,影响上机测序时的捕获效率,严重时会导致测序异常;当部分文库浓度较高、部分文库浓度较低时,会造成样品的测序深度不同,较高的测序深度会加重数据处理负担,提高测序成本;较低测序深度可能会导致一些基因组区域的覆盖不足,影响特定区域的检测能力,结果可信度较差。因此

11、,对文库的质量控制是实现最优数据产量、提高实验室效率和测序通量的重要保障。文库的质量控制技术通常包括对文库浓度的评价和大小分布的评价,常用的浓度测定技术有紫外吸收技术810、荧光染料技术1113、实时荧光定量PCR(quantitative real-time PCR,qPCR)14技术和微滴数字 PCR(droplet digital PCR,ddPCR)技术15等。常用的大小分布测定技术有琼脂糖凝胶电泳技术16和微流控芯片技术17等。目前国内外领域对这些质量控制技术缺乏系统性的评价,本文从各技术的原理、优缺点、适用范围等进行分析,同时也对常见技术进行横向对比,总结了不同技术的应用场景,并展

12、望了文库质量控制技术的发展,以期为文库的评价、文库混合等提供可靠的选择依据,为获得高质量的测序数据奠定基础,进而提高测序通量、缩短测序周期、降低测序成本。1 文库浓度的质量控制技术 1.1 紫外吸收技术 紫外吸收技术是利用核酸的紫外吸收特性进行浓度定量,是较常用的技术,常用的仪器有美国赛默飞公司的 NanoDrop。NanoDrop 在测定前不需要进行额外的操作,是一种简单、快速的测定文库质量技术,但是灵敏度较低(1 ng/L)。Hussing 等18 用NanoDrop 测定扩增子文库的浓度,发现浓度被高估,原因可能是双链 DNA、单链 DNA、游离核苷酸等在 260 nm 处均有光吸收信号

13、,敏感性较差。当文库浓度越低时,NanoDrop 的测定值越不稳定,波动越大。Harris 等19对一个文库通过 NanoDrop 进行三次重复测定,评价其精确度,结果表明,变异系数较高,为 12%,变异系数越高,表明均一化程度越低。Hosomichi 等20先以 NanoDrop 定量文库后再以等摩尔比例混合上机,发现文库的覆盖度变化较大。可见,紫外吸收测量法存在着一定的弊端,究其原因:一是对 DNA、RNA、蛋白质没有选择性;二是其绝对值受其他污染物和碱基组成的影响较大;三是当DNA 浓度较低时,精确性较差21。因此,NanoDrop适用于文库的初检或者作为不具有其他高灵敏度检测技术时的替

14、代品。1.2 荧光染料技术 荧光染料技术是通过测定染料与 DNA 文库结合时发出的荧光强度来定量 DNA 文库,荧光强度与DNA 浓度成正比。荧光染料法操作便捷、快速、灵敏度较高、成本较低22。常用的定量 DNA 文库的荧光染料有 Hoechst 33258 和 PicoGreen。Hoechst 33258 染料能检测低至 10 pg/L 的 DNA,PicoGreen染料能够定量低至 25 pg/L 的 dsDNA。Qubit(美国 142 Hereditas(Beijing)2024 第 46 卷 赛默飞公司)是典型的通过荧光染料法定量 DNA 文库的仪器。与 NanoDrop 相比,Q

15、ubit 最显著的特征是能提供更可靠的定量结果,准确率高。当定量10 ng/L 的 DNA 时,NanoDrop 的测定错误率高达 5%,而 Qubit 仅为 1%23。当定量 0.5 ng/L 的DNA 时,采用 Qubit 进行 10 次重复测定,平均值为0.53 ng/L,95%置信区间为 0.470.60 ng/L24。当样品质量较差时,Qubit 定量的成功率为 80%21。采用 Qubit 定量的 DNA 文库浓度高于基于电泳定量的浓度,与 Qubit 不能区分不同长度的 DNA 有关,使得引物二聚体、接头二聚体、未连接接头的gDNA、PCR 产物等被计算在内18。有研究表明,当使

16、用 PicoGreen 染料时,定量结果受 DNA 片段大小分布的影响,浓度随片段的增加而降低25。当长度小于 23 kb 时,浓度被低估26。Qubit 定量是一个较便宜、较精确的定量平台,操作流程快速简便,但是每次只能对一个样品进行检测,当样品数量较多时,耗费时间较长。1.3 qPCR 技术 qPCR 技术是指在 PCR 反应体系中加入荧光基团,通过监测荧光信号的变化来定量浓度。由于其特异性引物的存在,qPCR 技术能够估计出文库中可扩增的目标片段的数量,具有较高的敏感性和特异性,能够准确排除单端或双端都不连接接头的不可测序文库的干扰,在准确定量在 5和 3端连接接头的分子片段时具有明显优

17、势。目前,根据荧光标记的方法不同,qPCR 分析检测技术分为基于荧光探针法(TaqMan)27和荧光染料法(SYBR-Green)28。由于SYBR-Green 法不需要设计荧光探针,方法更为灵活且便宜29。Dang 等30研究表明,TaqMan 法和SYBR 法在定量文库浓度上具有相似性。通过 qPCR技术定量的文库浓度的好坏与利用测序后得到的数据进行下游分析后的得到的总序列数多少具有相关性,这可能是因为后续的桥式 PCR 和乳浊液 PCR也是 PCR 反应31,32。PCR 反应容易受多种因素的影响,是一个较敏感的反应。增加 PCR 反应会导致文库序列异源双链的减少,从而使序列的原始比率失

18、真,影响测序质量33,并损失珍贵的样品34。当扩增过短的片段,高 GC:AT 含量和 DNA/Taq 聚合酶保真度较低时,序列的异质性可能会随着 PCR 的扩增反应而改变35。qPCR 文库定量技术不是绝对定量方法,不能区分接头二聚体,不适合接头二聚体浓度高的片段,依赖于生物分析仪对文库片段大小分布的检测28。而在复杂的文库中,引物和污染物会影响片段大小测定的准确性,最终使得加载到测序芯片上的文库的量有一定的波动。但与紫外吸收技术和荧光染料技术相比,虽然 qPCR 技术成本较高(为 612 倍),花费时间较长(为 510 倍)18。但是当对文库质量要求较高时,还应采用 qPCR 技术进行定量,

19、因为与测序试剂、重测序成本相比,qPCR 技术与其他两种定量技术在人工操作时间和价格的差距可忽略不计。1.4 ddPCR 技术 1999 年,Volgelstein 等36提出了数字 PCR(digital PCR,dPCR)。dPCR 最开始主要有以下两种模式:一是使用微孔或微流控室将反应分成许多纳升级反应室,分别进行 PCR 扩增,检测阳性液滴数量,根据泊松分布进行绝对定量。虽然微流控芯片简化了反应程序,但是难以实现大通量及规模化;二是利用 BEAMing,该模式基于乳液 PCR,即增强型 dPCR。原理是在磁珠上进行 dPCR 后,再利用荧光杂交探针标记,最终被传统的流式细胞读取,该技术

20、虽然通量高,但工作的复杂程度也较高。2011年,Hindson 等37开发出了油包水液滴的 ddPCR,即使用微流体和特定表面活性剂化学物质,将 PCR样品分成油包水液滴进行 dPCR,原理如图 1 所示。在 ddPCR 中,一个样本被分割成几十至几万份微滴至不同的反应单元,每个单元至少包含一个拷贝的目标分子(DNA 模板),目标分子能在不同的反应单元里进行 PCR 扩增,扩增反应结束后通过收集各个反应单元的荧光信号,进行统计学分析。ddPCR 的操作流程和使用试剂与 TaqMan 探针法类似。ddPCR 可以根据簇的荧光强度的不同来判定文库片段的质量。基于 ddPCR 的两端水解探针,当文库

21、两端连接 P5、P7 时,呈双阳现象;当只有接头二聚体时,PCR 扩增效率最高,荧光最强,能够明显地与前者区分开。PCR 扩增效率与接头二聚体的长度呈反比。当文库的质量较好时,往往沿着双正簇分布在 FAM/HEX 通道 2D 散点图的右上方,无其他FAM 荧光。Heredia 等15对通过 ddPCR 定量后的 第2期 崔梦楠等:高通量测序文库质量控制技术研究进展 143 图 1 ddPCR 的原理 Fig.1 The schematic diagram of ddPCR A:微滴制备。配制含样品、PCR 酶、dNTP、缓冲液、特定引物、Taqman 探针的反应体系,并将反应体系置于微滴发生器

22、中,使一样本被分割成几十至几万份微滴至不同的反应单元,每个反应单元至少包含一个拷贝的目标分子(DNA 模板)。B:微滴 PCR扩增。在每个反应单元中单独进行 PCR 反应,只有含有目标分子的微滴在 PCR 扩增后显示出高荧光。C:微滴读取和数据分析。读取每个微滴荧光值,确定阴性、阳性微滴数,并通过泊松统计分析计算原始样品中目标 DNA 模板浓度。12 个文库按等摩尔比例进行上机测序,发现每个文库对应的序列数无显著差别,该结果进一步体现了ddPCR 较强的质量控制能力。ddPCR 还能提供文库构建过程中的动态信息,如接头连接、PCR 扩增等。Aigrain 等37用 ddPCR 技术从每个文库构

23、建步骤后剩余的 DNA 含量、片段末端连接接头的比例、扩增后带有 P5/P7 的比例三个方面评价了不同文库构建方法,发现接头连接效率是文库构建过程中的关键步骤,接头连接效率较低会影响文库的复杂度。不同的文库构建方法中,连接和 PCR 产量呈相反变化趋势,这可能是因为起始 DNA 投入量低或者连接效率低,进行 PCR 反应的带有 DNA 片段的接头的量较少,也可能是因为连接效率较高或 DNA 投入量较大,大量的 DNA 进行了 PCR 反应。较高的连接率能够保证样品的多样性,缩短所需的 PCR 循环数,从而避免因 PCR 过程带来的偏差38。不同文库浓度的质量控制技术具有不同的优劣势(表 1)。

24、与前面的评价技术相比,ddPCR 是绝对定量,不依赖于具有特定大小分布的标准品,不依赖于校准物的扩增效率,避免了 qPCR 中真实样品扩增效率可能与校准物扩增效率不同的问题,是一种准确度更高、置信度和可重复性更好的评价技术。2 文库大小分布的质量控制技术 构建好的文库中可能会存在二聚体、小片段、大片段等非目的片段及片段峰过宽的问题,影响定量的准确度、精确度,从而干扰下游的生物信息学分析,因此需要对文库大小分布进行双重验证。常见的检测技术有传统的琼脂糖凝胶电泳、微流控芯片技术等。2.1 琼脂糖凝胶电泳技术 琼脂糖凝胶电泳技术基于待分离样品中各种分子带电性质的差异以及分子本身的大小、形状的不同,从

25、而在通过琼脂或琼脂糖作支持的凝胶介质时产生不同的迁移速度,来分离带电分子,是一种较经典的技术,目前仍常用于鉴定和纯化 DNA 片段。在电场作用下,DNA 片段迁移距离与碱基对的对数成反比,可通过计算待测片段的移动距离与已知大小的标准品的移动距离的比例来定量未知片段的大小。琼脂糖凝胶电泳需要配胶、加染料、制胶板、上样/制样、电泳、检测等步骤,虽然原理、操作等较简单,成本较低,但是操作时间较长,分离精度较低。Chang 等16 利用高温高压制备了充分溶解的高浓度琼脂糖凝胶,发明了一种简单易操作的灌胶塑料盒灌制黏稠的 HAG 垂直凝胶,改进了适合小分子量核酸的缓冲液条件,可有效分离在 10100 b

26、p范围内相 2 bp 或 2 nt 的 DNA 片段,解决了琼脂糖凝胶浓度较低,低分子量核酸分辨率较低的问题,并且制备过程中不涉及危险化学试剂,安全、无毒。该技术常联合采集设备来得到相应的凝胶电泳图像,对图像的精确处理和分析尤为重要。Ziraldo等39开发了基于 ImageJ 的插件,该插件可以用于分析连续型或离散型凝胶模式,在离散型模式下,基于条带的强度和宽度直接定量 DNA 分子的相对数量;在连续型模式下,通过从标准品衍生的叠加高斯电泳峰来预估 DNA 大小分布,是一种有效的且成 144 Hereditas(Beijing)2024 第 46 卷 表 1 不同文库浓度评价技术的比较 Ta

27、ble 1 The comparison of different library concentration evaluation techniques 类别 紫外吸收技术 荧光染料技术 qPCR(SYBR-Green)qPCR(TaqMan)ddPCR 典型仪器 NanoDrop Qubit ABI7500 ABI7500 qx200 投入量(L)1 120 2 2 2 定量范围 23700 ng/La 10 pg/L100 ng/Lb 0.000838.3pmol/L18 0.0686.8 pmol/L18 1105个拷贝c 单次检测量 1 1 96 96 96 单次检测时间 30 s

28、1 min 2.5 h 2.5 h 微 滴 生 成 2 min/8 个,PCR 反应时间 2 h,微滴检测 10 min/个 试剂成本/单样品(美元)0.5 0.7 3.0 5.9 79.8 优点 操作简单、检测速度快、成本低 操作简单、成本较低,可 以 特 异 性 区 分DNA、RNA,检测灵敏度高、重复性好 不 需 要 设 计 荧 光 探针,灵活,成本较低,能区分文库两端是否连接接头 需要设计荧光探针,成本较低,能区分文库两端是否连接接头 绝对定量,不依赖于具有特定片段大小的标准品,不依赖于校准物的扩增效率,准确度更高、置信度和可重复性更好 缺点 对 DNA、RNA、蛋 白 质 没 有 选

29、择性,受杂质影响大,精度差 无法区分文库两端是否连接接头 不 能 区 分 接 头 二 聚体,依赖于生物分析仪对文库片段大小的检测 不 能 区 分 接 头 二 聚体,依赖于生物分析仪对文库片段大小的检测 成本较高 a来源于官网说明,https:/ TapeStation 仪器的定量结果具有较高的一致性,且在峰较平缓时检测具有一定的优势,能够处理较低的信噪比电泳图。然而,由于传统的琼脂糖凝胶电泳分离精度较低、操作繁琐、自动化程度低,在分离鉴定大量重叠片段时存在着一定的困难,因此还需要高精度、高自动化、高效率的技术来解决该问题。2.2 微流控芯片电泳技术 微流控芯片技术最早由Manz和Widmer4

30、0于20世纪 90 年代提出,他们的研究表明了在微通道网络中以电渗流为驱动力实施进样和电泳分离的可能性。随着科学技术的发展,在芯片上构造出电泳微流通道结构,包括进样系统、分离系统、检测系统等,当给予芯片一定的电压时,样品便在芯片上的显微蚀刻管道中进行毛细管电泳。在样品流动过程中,不同 DNA 片段根据其大小被分离。微流控芯片电泳技术是集分离、检测为一体的自动化、一体化、集成化的技术。对芯片进行改进可以提高样品的通量,缩短时间,提高分选效率。Loughran 等41对芯片进行修饰,构建了 40 条平行并列的阵列电泳通道,并用二甲基丙烯酰胺-烯丙基缩水甘油醚控制电渗流,在 6 min内完成了 10

31、 个 DNA 片段的分离检测。刘科辉等42通过改变介质和嵌入式荧光标记染料,实现了无胶筛分和激光诱导荧光检测,在 75 s 内分离了 12 条DNA 片段。Sun 等17开发了一种新的荧光片段分析试剂,搭配美国珀金埃尔默公司商业化片段分析仪LabChip GX Touch 使用,该检测技术整合了样品分 第2期 崔梦楠等:高通量测序文库质量控制技术研究进展 145 离、检测、数据可视化和初步的数据分析报告,样品加载和数据获得过程是自动化的、快速化的,在96-孔板中最多可处理 48 个样品,每个样品处理时间为 1 min。目前,基于微流控芯片电泳技术的商业化平台有美国安捷伦公司的 Bioanaly

32、zer、TapeStation、Fragment Analyzer,美国珀金埃尔默公司的 GX Touch 等。他们主要由能够自动输送流体的注射泵、激发染料的 LED 芯片、监测荧光强度的变化的电荷耦合器件组成,无需进行凝胶制备、电泳、染色、脱色、成像等操作步骤,减少与有害物质的接触,所需进样量、试剂量等少,有利于保护珍贵样品,操作简单安全、数据可视化、分析自动化。此外,与传统的琼脂糖凝胶电泳技术相比,微流控芯片电泳技术准确度高、重复性好、灵敏度高。在 500 bp片段的范围内,一般商业类仪器的分辨率有 35 bp的误差。Chiappetta 等43通过计算 ROC 曲线得出Agilent 2

33、100 Bioanalyzer(美国安捷伦公司)的灵敏度为 86.7%,特异性为 92.3%。当内标与测定片段长度差异较大时,计算偏差也较大,优化内标可进一步提高重复性。王洪霞等44设计了与测序片段相近的内标用于校正片段,发现可以纠正重复性较差的缺点,具有相同 VNTR 位点数的菌株的电泳峰完全重叠。相较于传统的琼脂糖凝胶电泳技术,采用微流控芯片技术可以更好地、更精确地获得文库的大小及片段分布,且灵敏度更高,浓度低的片段也能被检测到,检测过程简单方便、高效,是一种化学品消耗少、分析时间短、分离效率高的文库大小分布定量技术,但是芯片价格较昂贵,当实验室经费紧张时,价格低廉的琼脂糖凝胶电泳技术更受

34、到青睐(表 2)。3 文库质量控制技术的选择 不同的文库质量控制技术各有优缺点,在选择时,应根据实际需求和应用场景,对成本、准确度、精确度、时间、操作自动化、操作复杂度、投入量等进行综合考量。一般来说,成本和准确度、精确度、操作复杂度成正比,和操作自动化成反比。当成本较宽松,但准确度要求较高时,如临床和法医 DNA 实验室,应选择 qPCR 分析技术对文库进行浓度质量控制。qPCR 分析是一种灵敏度较高的定量技术,其定量值的大小与下游测序数据分析后的文库覆盖度具有较好的相关性;同时,该技术还能用于评估文库中扩增的目标分子的数量。虽然qPCR 分析技术的成本较高,但与浓度质量控制技术间的价格差异

35、相比,因质量控制不准确而导致的测序失败引起的测序试剂成本、重测序时间成本更高。因此,当对文库覆盖度的均一性要求较高,且不计成本时,应选择准确度、精确度较高的 qPCR 质量控制技术。虽然 ddPCR 能够对文库进行绝对定量,并且能够定量相对文库大小分布、文库构建过程中产生的接头二聚体的数量等,但因 ddPCR 操作较复杂,如微滴形成和 PCR 扩增、监测需在不同的仪器中完成,在实际应用中较少。在需要压缩成本,且能接受文库覆盖度的差异性波动时,可以选择相对便宜、快速、简单的荧光 表 2 不同文库大小分布评价技术的比较 Table 2 The comparison of different lib

36、rary size distribution evaluation techniques 类别 琼脂糖凝胶电泳技术 微流控芯片电泳技术 典型仪器 Agilent 2100 Bioanalyzer 投入量 1 L 分离片段范围 与琼脂糖凝胶配制浓度相关 25 bp12 kb 灵敏度 与作为 DNA 分子量标准有关 0.1 ng DNA 单次检测量 与制胶时的孔容量有关 12 单次检测时间 3 min 优点 原理、操作方法等较简单,成本较低 所需进样量、试剂量等少、人工操作时间短、操作安全、数据可视化、分析自动化、准确度高、重复性好、灵敏度高 缺点 分离精度较低、操作繁琐、自动化程度低 试剂、芯片

37、价格较昂贵 146 Hereditas(Beijing)2024 第 46 卷 染料分析技术,如 Qubit。Qubit 分析技术准确度较高,当用其测定已知浓度的双链 DNA 寡核苷酸时,浓度测定值与理论值较接近,且当浓度较低时(2040 pg/L),也能被精确测定45。但是紫外吸收技术因其对 DNA、RNA、蛋白质没有选择性,准确性、灵敏度都较差,在不具备其他高灵敏度检测装置时可用作文库质量控制的初检。当有其他技术选择时,不推荐用于文库浓度的测定。值得注意的是,Qubit 分析技术不能区分不同长度的 DNA,当文库中存在引物二聚体、接头二聚体、未连接接头的小片段、大片段时,会使文库的实际浓度

38、被高估。文库浓度的质量控制技术通常需要和文库大小分布的质量控制技术协同应用,因为 qPCR 分析技术、Qubit 分析技术均对不同长度的 DNA 没有选择性。在考虑成本因素时,可选择传统的琼脂糖凝胶电泳技术。不计成本时,可选择基于微流控芯片电泳 技 术 的 商 用 化 平 台,如 美 国 安 捷 伦 公 司 的Bioanalyzer、TapeStation、Fragment Analyzer、美国珀金埃尔默公司的 GX Touch 等。其中,Bioanalyzer和 TapeStation 操作简便,但是同一批次运行的样品量少,在这四种商业化仪器中,Bioanalyzer 成本最高。Fragm

39、ent Analyzer 通量高,操作复杂,在无人值守的情况下,每 24 h可分析上千个文库。GX Touch虽然能够提供可重复使用的芯片,但是清洗流程复杂,且在进行文库大小分布测定前需对文库浓度进行测定或估计,浓度过高会破坏芯片。此外,基于毛细管电泳技术的光鼎公司的 Qsep 也可实现对文库大小分布的测定,其所需投入量低,仅为 0.5 ng/L,分离片段范围可达 15 bp15 kb,运行一次可实现对96 个文库的检测,单个文库检测时间大约为 5 min。与基于微流控芯片电泳技术的商用化平台相比,成本较低。极端特殊情况时,在保证规范操作和下游数据谨慎分析的前提下,可忽略文库的质量控制结果。如

40、样本非常重要且难以或没时间重新获取时,即使文库构建结果不满足质量控制要求,也可尝试进行下一步测序操作。2019 年底新冠肺炎疫情爆发时,Chen 等1从两名感染异常肺炎的患者肺泡灌洗液样本中提取总 RNA,通过 Qubit 对提取后的浓度进行测定,发现浓度低于 0.5 ng/L(当加入 1L 样品时,Qubit 的 检 测 下 限),后 采 取 靶 向 目 标 的 Trio RNA-Seq 试剂盒(瑞士帝肯公司)构建文库,应用Illumina Miseq 平台进行双端测序。经生物信息学分析,鉴定出一种新型的冠状病毒,为疫情防控奠定了基础。4 结语与展望 高通量测序技术已经从专业实验室走向常规分

41、子生物学实验室和检测诊断实验室。随着其应用范围的不断扩展,整个测序流程的质量控制变得日益关键。文库构建作为高通量测序中的核心环节之一,其质量控制对于确保获得准确和有用的测序数据至关重要。目前高通量测序文库质量控制技术可选择性较多,但各自存在局限性,例如,一些准确度较高的技术操作复杂,难以自动化;而成本低、操作简便的技术,则可能在文库浓度和片段大小的准确测定方面有所不足。因此,应根据不同的实验条件和目的,灵活选择合适的文库构建质量控制技术。随着生物技术的不断进步,特别是高通量测序平台技术的高速发展,我们有理由相信文库构建质量控制技术将持续得到改进和完善,未来的技术发展将趋向智能化、简便化和低成本

42、化,而这将进一步简化操作流程,降低对专业人员和实验室条件的依赖。这些进步将使高通量测序技术在生命科学研究、诊断与个性化医疗、公共卫生监测等领域发挥更大作用,为社会带来更加显著的应用价值。参考文献(References):1 Chen LJ,Liu WY,Zhang Q,Xu K,Ye GM,Wu WC,Sun ZY,Liu F,Wu KL,Zhong B,Mei Y,Zhang WX,Chen Y,Li YR,Shi M,Lan K,Liu YL.RNA based mNGS approach identifies a novel human coronavirus from two indi

43、vidual pneumonia cases in 2019 Wuhan outbreak.Emerg Microbes Infect,2020,9(1):313319.2 Zheng HY,Yan L,Yang C,Wu YR,Qin JL,Hao TY,Yang DJ,Guo YC,Pei XY,Zhao TY,Cui YJ.Population genomics study of Vibrio alginolyticus.Hereditas(Beijing),2021,43(4):350361.郑宏源,闫琳,杨超,武雅蓉,秦婧靓,郝彤宇,杨大进,郭云昌,裴晓燕,赵彤言,崔玉军.溶藻弧菌群

44、体基因组学研究.遗传,2021,43(4):350361.第2期 崔梦楠等:高通量测序文库质量控制技术研究进展 147 3 Wang GZ,Long J,Zhuang Y,Leng X,Zhang YQ,Liu LBX,Fu JW,Chen Y,Li CQ,Zhou Y,Huang B,Feng CC.Application of metagenomic next-generation sequencing in the detection of pathogens in spinal infections.Spine J,2023,23(6):859867.4 Brsting C,Morli

45、ng N.Next generation sequencing and its applications in forensic genetics.Forensic Sci Int Genet,2015,18:7889.5 Liu YL,Xu C,Sun YZ,Chen X,Dong WP,Yang XY,Zhou SL.Method for quick DNA barcode reference library construction.Ecol Evol,2021,11(17):1162711638.6 Laurie MT,Bertout JA,Taylor SD,Burton JN,Sh

46、endure JA,Bielas JH.Simultaneous digital quantification and fluorescence-based size characterization of massively parallel sequencing libraries.Biotechniques,2013,55(2):6167.7 Modi A,Vai S,Caramelli D,Lari M.The Illumina sequencing protocol and the NovaSeq 6000 system.Methods Mol Biol,2021,2242:1542

47、.8 Glasel JA.Validity of nucleic acid purities monitored by 260nm/280nm absorbance ratios.Biotechniques,1995,18(1):6263.9 Huberman JA.Importance of measuring nucleic acid absorbance at 240 nm as well as at 260 and 280 nm.BioTechniques,1995,18(4):636.10 Manchester KL.Value of A260/A280 ratios for mea

48、surement of purity of nucleic acids.Biotechniques,1995,19(2):208210.11 Singer VL,Jones LJ,Yue ST,Haugland RP.Characterization of picoGreen reagent and development of a fluorescence-based solution assay for double-stranded dna quantitation.Anal Biochem,1997,249(2):228238.12 Le Pecq JB,Paoletti C.A ne

49、w fluorometric method for RNA and DNA determination.Anal Biochem,1966,17(1):100107.13 Kapuscinski J.DAPI:a DMA-specific fluorescent probe.Biotech Histochem,1995,70(5):220233.14 Heydt C,Fassunke J,Knstlinger H,Ihle MA,Knig K,Heukamp LC,Schildhaus HU,Odenthal M,Bttner R,Merkelbach-Bruse S.Comparison o

50、f pre-analytical FFPE sample preparation methods and their impact on massively parallel sequencing in routine diagnostics.PLoS One,2014,9(8):e104566.15 Heredia NJ.Droplet Digital PCR next-generation sequencing library qc assay.Methods Mol Biol,2018,1768:477488.16 Chang LL,Wang D,Peng CZ,Wang Q,Xu BQ

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