1、单击此处编辑母版标题样式,单击此处编辑母版文本样式,第二级,第三级,第四级,第五级,*,神经干动作电位电生理,综合,实验,实验目的,测定,蛙,坐骨神经的动作电位传导速度,学习蛙类离体坐骨神经干的单相、双相动作电位的记录方法及与强度的关系。,判别、分析神经干动作电位的基本波形、测量其幅值以及时程。,学会制作坐骨神经标本的,方法,实验原理(一),将蛙的神经标本放在任氏液中,其兴奋性在几个小时内可保持不变。,若给神经一次适宜刺激,可在神经上产生一个动作电位。生理学实验中常利用蛙的坐骨神经标本来观察神经兴奋性的规律。,蛙,坐骨神经标本制作,实验原理(二),本实验将两个引导电极置于正常完整的神经干表面,
2、当神经干的一端兴奋之后,兴奋波会先后通过两个引导电极,可记录到两个相反方向的电位偏转波形,称为,双相动作电位,。如果两个引导电极之间的神经组织有损伤,兴奋波只能通过一个引导电极,不能传导至第二个引导电极,则只能记录到一个方向的电位偏转波形,称为,单向动作电位。,蛙坐骨神经双相、单相动作电位与强度法则,实验原理(三),动作电位在神经干上传导具有一定的速度,蟾蜍的坐骨神经是混合神经,由许多粗细不等的有髓和无髓神经纤维构成,其中以,A,类纤维为主,传导速度约为,35,40,m/s,。,神经冲动的传导速度(,v,),是指动作电位在单位时间(,t,),内传导的距离(,s,),神经,动作电位,传导速度的测
3、定,仪器与器械,(一),普通剪刀、手术剪、组织剪、眼科镊,金属探针、蛙板、蛙钉,玻璃分针,瓷碗、细线、培养皿、滴管,实验方法与步骤,1.,破坏脑、脊髓(双毁髓),枕骨大孔,2.,剪除躯干上部、皮肤及内脏,坐骨神经,坐骨神经的走行,3.,剥皮,剥完皮肤后,将标本放在盛有任氏液的培养皿中。,4.,洗干净双手及使用过的全部手术器械。,5.,分离两腿,6.,游离坐骨神经标本,注意事项,1.,破坏脑脊髓要彻底,防止蟾酥射入操作者眼中或污染实验标本。,2.,操作时避免压挤、损伤和用力牵拉标本,不可用金属器械触碰神经干。,3.,操作过程中,应给神经和肌肉滴加任氏液,防止表面干燥,以免影响标本的兴奋性。,4.
4、标本制成后须放在任氏液中浸泡数分钟,使标本兴奋性稳定,再开始实验效果会较好。,仪器与器械,(二),计算机生物信号采集处理系统,RM6240,神经标本屏蔽盒,实验方法与步骤,1.,坐骨神经标本的制备,2.,仪器及标本的连结,坐骨神经干放置于神经标本屏蔽盒内,神经标本屏蔽盒 与,RM6240,系统连接,刺激电极,引导电极,s+s_,r1,r1,r2,r2,接地电极,(,1,),引导双相神经动作电位,3.,启动,BL410,系统,进入系统软件,点击,“,实验项目”菜单,选择“神经肌肉生理实验”。,点击“神经干动作电位的引导”,引导出一个双相动作电位。,仔细观察双相动作电位的波形。读出最大刺激时双相
5、动作电位上下相的振幅和整个动作电位持续时间数值。,自动调节刺激强度,观察动作电位波形的变化。读出波宽为某一数值时的阈刺激和最大刺激。,(,2,)观察和测定双相动作电位,测定神经冲动传导速度,分别测量两个动作电位起始点之间的时间差(,t,),,为神经冲动从第一对引导电极传导到第二对引导电极所需要的时间。,测量神经屏蔽盒内两对电极之间的距离(,s,),即为神经干的长度。(,2,),按公式,v=,s/t(m/s,),计算神经冲动传导的速度。,用镊子将两个引导电极,r1,r1,之间的神经夹伤,记录单相动作电位。,观察和测定单相动作电位,注意事项,制备标本时,神经干应尽可能分离长一些,上自脊柱附近的主干,下至踝关节附近。分离过程中勿损伤神经组织,以免影响其兴奋性。,将神经干搭在引导电极上时,神经干不能与标本盒壁相接触,尽量将其拉成水平线,不要下垂或斜向放置。,3.,刺激强度在开始时不要过强,先由弱强度开始,逐步加大强度,以免剌激伤害神经标本。,4.,经常滴加任氏液,保持神经标本湿润。,5.,实验完毕神经糟应仔细清洗,擦干,以免残留的盐液导致电极腐蚀生锈,。,实验结果分析及思考,1.,神经干动作电位与刺激强度有何关系?神经干动作电位符合“全或无”定律吗?,为什么,?,