染色质免疫沉淀.ppt

单击此处编辑母版标题样式,单击此处编辑母版文本样式,第二级,第三级,第四级,第五级,*,染色质免疫沉淀,Chromatin immunoprecipitation,基因型决定表型,破坏了基因型也就改变了表型,但是，也有一些无法解释的现象,在相应的基因碱基序列没有发生变化的情况下，一些生物体的表型却发生了改变。,什么是表观遗传学,?,是,DNA,及其染色质环境的稳定改变，这些可遗传的变化并不涉及,DNA,序列的突变。,表观遗传修饰,在不影响,DNA,序列的情况下改变基因组的修饰，不仅可以影响个体的发育，而且还可以遗传下去。这类变异被称为“表观遗传修饰”，并被认为是导致遗传物质一致的孪生子出现个体差异的主要原因。,染色质重塑,染色质重塑在广义上是指染色质结构的动态调整或重新塑造染色质结构。在一些核内因子作用下，染色质,DNA,与其包绕的,核心组蛋白,之间亲和力的变化或相对位置的改变使得染色质结构变得较为松散，,DNA,更易于暴露。染色质重塑就是通过这样的变化来调控基因的转录。,在狭义上，染色质重塑专指由,ATP,提供能量的、通过依赖于,ATP,的染色质重塑复合物改变组蛋白与,DNA,的结合状态，在靠近核心组蛋白的,DNA,表面建立特殊的构象，使转录因子较易于接近,DNA,的过程。,染色质免疫沉淀技术的发展使染色质重塑研究得以进步,实验目的,学习掌握染色质免疫沉淀技术的基本原理与关键的操作步骤。,实验原理,实验流程,一、交联及染色质,DNA,剪切条件的优化,准备一瓶接近长满的,HeLa,细胞，向培养液中加入,37%,的甲醛至终浓度为,1%,，轻轻摇匀，在,37,孵育,10,分钟,。,甲醛的作用,细胞的用量,交联条件对实验结果的影响,弃培养液，用预冷至,4,带蛋白酶抑制剂,PMSF,的,1PBS,洗细胞两次，刮细胞到一个,2ml,离心管，,2000rpm,，,4,离心,4min,收集细胞。,甲醛的作用,在各种交联试剂中，甲醛（,HCHO,）的应用最为广泛。甲醛的浓度、作用时间及交联的温度等均可能影响交联的程度。甲醛可以通过赖氨酸、精氨酸和组氨酸以及那些,DNA,的氨基和亚氨基基团之间的交联，高效地在体内交联蛋白质,-DNA,、蛋白质,-RNA,以及蛋白质,-,蛋白质，形成生物复合体，防止细胞内组分的重新分布。除此之外，,HCHO,可以忠实地保留染色质结构，而且在温和条件下交联很容易逆转。通常交联所用的甲醛终浓度为,1%,，在,12-37,作用,30min,。但是如果反应温度超过,30,，本底就可能增加。因此，当必须在高温进行交联时，则应减少作用时间或甲醛浓度。过度交联将影响细胞的裂解，并且在超声处理时不能获得理想长度的,DNA,片段及影响,DNA,的溶解。对于特别容易进行交联的目的蛋白质（例如，组蛋白）需减少交联时间或甲醛浓度。甲醛的交联反应可被加入的甘氨酸终止。,细胞的用量,通常,2.510,8,细胞足够进行,4,次免疫沉淀。因此，一般为了保证用量，采取培养多瓶细胞，胰酶消化，收集在,50ml,离心管中，培养液重悬，计数。（一般分装,110,7,细胞于一个,EP,管，用于免疫沉淀反应）。,交联条件对实验结果的影响,对于不同的细胞类型，甲醛的浓度、交联的长度或者交联的温度都需要调整。如果交联不充分，会导致不完全固定，则,DNA,片段的平均长度会小于,500bp,。交联过度时细胞染色质难以用超声波破碎，就算延长超声波作用时间也会导致重要原料的丢失。交联时间如果过短，则交联不完全，产生假阴性，交联时间通常为,5,分钟到,1,个小时，具体时间根据实验而定。,3用,500l,预热至室温带有蛋白酶抑制剂的,SDS,裂解液重悬并裂解细胞，冰浴,10,分钟；,超声波处理剪切染色质,DNA,，使其形成,300-1000 bp,即大约相当于,2-5,个核小体长度的片段；,超声条件对实验的影响及超声注意事项,设置超声破碎的条件,酶消化与超声消化相比较的区别,超声条件对实验的影响及超声注意事项,超声波是使用机械力断裂染色质，容易引起升温或产生泡沫，这都会引起蛋白质变性，进而影响,ChIP,的效率。所以在超声波断裂染色质时，要在冰上进行，且要设计时断时续的超声程序，保证低温。另外，超声探头要尽量深入管中，但不接触管底或侧壁，以免产生泡沫。总超声时间也不要太长，以免蛋白降解。,设置超声破碎的条件,超声处理的条件通常可以设置为,10,秒每次，共,3-4,次，功率为,50W,时设置为最大功率的,30%,，采用,2mm,超声头。不同的超声处理仪器的设置不太一样，摸索超声条件时，可以先固定其他条件，先确定每次超声多长时间不会导致明显发热，然后摸索不同的超声次数。直至找到比较合适的超声次数可以使大部分基因组,DNA,断裂成,200-1000bp,大小。需要注意的是每次的超声体积和细胞用量宜固定，否则就不能使用一个相对比较固定的超声条件用于后续实验。,酶消化与超声消化相比较的区别,Micrococcal Nuclease,可以将染色质切成一到几个核小体，比超声波处理的结果更精致，更均一。另外，酶反应的条件比较温和，对,DNA,和,DNA-,蛋白复合物的损伤较小，而且蛋白不易变性。酶处理染色质适用于新鲜的细胞或组织样品和冰冻样品。在研究组蛋白时，经常采用没经过甲醛固定的,Native ChIP,（,N-ChIP,）的研究方法。因为,N-ChIP,没经过甲醛固定，超声波处理会打断组蛋白和,DNA,的结合，所以只能选择酶处理染色质的方法。对于甲醛固定的样品，一般选择超声波处理方法。也有研究人员使用酶处理的方法研究甲醛固定较温和的样品。,Millipore,公司有商品化的,Micrococcal Nuclease,处理的,ChIP,试剂盒（,EZ-Enzyme提供。,Enzyme,和,sonication,处理结果比较,超声处理的条件需要优化，各实验组可采用不同的超声波处理条件，比较剪切效果。按以下步骤操作比较各种条件下的剪切效果：,a.,将超声处理过的样品离心收集上清（,4 13000rpm,离心,10,分钟），加入,10l 0.5 M,EDTA,、,20l 1M,Tris-HCl,pH6.5,、,2l 20mg/ml,蛋白酶,K,，,45,孵育,0.5-1,小时；,b.,酚,/,氯仿抽提,一次，乙醇沉淀并重溶于,20l,的,ddH,2,O,中，,1.2%,琼脂糖凝胶电泳检查。,实验组,1,2,3,4,5,6,7,8,超声次数,3,6,9,11,3,6,9,11,超声功率,15W,15W,15W,15W,25W,25W,25W,25W,此页内容不在正常的,ChIP,步骤中,酚,/,氯仿抽提步骤,按照,1,：,1,体积比加酚,/,氯仿充分混匀后离心，取上层水相至新管，加入,1/10,体积,3M Nacl,，,2,倍体积无水乙醇，大转数离心,5min,5.,将超声处理过的样品在,4 13000rpm,离心,10,分钟收集上清，,10,倍稀释，将其移入一新的,2ml EP,管中；,6.,按照每,2ml,稀释后液体加入,75l,的比例加入,蛋白,A-,琼脂糖,/,鲑精,DNA(50%,混悬液,),，,4,摇动,30,分钟，预处理，,短暂离心,(700-1000rpm 4,，小于,1,分钟,),，收集上清液；,Beads,的选择,Input,的设置,7.,向,2ml,上清液中加入适量的抗乙酰化组蛋白,H3,的抗体,(20l),，,4,摇动过夜，阴性对照组不加抗体同样摇动过夜；,抗体的选择,对照的设置,二、免疫沉淀染色质,DNA,片段,Beads,的选择,利用目的蛋白质的特异抗体通过抗原,-,抗体反应形成,DNA-,蛋白质,-,抗体复合物，然后使用,Agarose beads,或,Magna beads,沉淀此复合物，特异性地富集与目的蛋白结合的,DNA,片段。再经过多次洗涤，除去非特异结合的染色质后，用,SDS+NaHCO,3,洗脱免疫沉淀复合物。,Magna beads,是近年来出现的一种新型,beads,，它使用方便，不像,Agarose beads,那样容易破裂，所以在操作过程中更简单，而且免去了离心的步骤，节省不少时间。,Millipore,公司最新推出的,Magna ChIP,试剂盒就是采用这种,Magna beads,。,免疫共沉淀和染色质免疫沉淀,input,设置,在进行免疫沉淀步骤前的样品,染色质免疫沉淀抗体的选择,ChIP Validated,对照的设置,ChIP,实验至少应设立,3,种对照：未经免疫沉淀的超声处理样本（,input,）；阳性对照。一般用组蛋白抗体或,anti-RNA Polymerase II,抗体这些比较保守的在所有细胞中都能结合基因的蛋白的抗体；阴性对照。即用一种无关抗体（或相应动物的免疫前血清），与抗目的蛋白质抗体同时分别与交联染色质样本进行免疫沉淀反应；,选择不与目的蛋白质结合的基因组区域作对照，即“基因组对照”。,另外，还应根据对,ChIP,的不同的特殊应用设立不同的实验对照。例如，试图检测目的蛋白质是否与某一推测的结合位点结合，则必须将此位点突变后作为对照；又如，欲测定突变细胞株中目的蛋白质与基因组,DNA,结合情况时，必须用野生型细胞株作对照等。,8.,加,60l,蛋白,A-,琼脂糖,/,鲑精,DNA(50%,混悬液,),，,4,摇,1,小时；,短暂离心,700-1000rpm,，,4,，小于,1,分钟,),收集沉淀，分别用低盐免疫复合物洗液、高盐免疫复合物洗液、,LiCl,免疫复合物洗液洗涤沉淀各一次，每种液体每次用,1ml,，摇动,3-5,分钟后短暂离心收集沉淀。然后用同样的方法用,TE,缓冲液洗涤沉淀两次,三、,PCR,鉴定结合于乙酰化组蛋白,H3,的,DNA,片段,10.,向上步所得沉淀中加入,250l,洗脱液,(1%SDS,0.1M NaHCO,3,),，震荡，室温孵育,15,分钟，离心收集上清；,11.,加入,10l 0.5M EDTA,、,20l 1M Tris-HCl pH6.5,、和,2l 20mg/ml,蛋白酶,K,，,45,孵育,0.5-1,小时；,12.,酚,/,氯仿抽提一次，乙醇沉淀并重溶于,20l,的,ddH2O,中，取,1l,作模板，按以下配方加样，,PCR,扩增实验组和对照组以及,Input,组的,GAPDH,启动子序列，扩增条件,951,分钟，,9530,秒、,5530,秒、,7230,秒、,30,个循环，,725,分钟，,1.5%,琼脂糖电泳检查结果。,此步,DNA,纯化可以选择适当的,DNA,纯化试剂盒,PCR,的策略,PCR,的策略,引物的选择取决于实验目的。如若鉴定目的蛋白质特异结合的位点，除了必须设计一对能使扩增片段跨过该位点的引物外，至少还应设计一对扩增的,DNA,序列中没有目的蛋白质结合位点的对照引物。对于平均长度为,500bp,的,DNA,分子，它的大部分片段长度是,500-1000bp,，以至远离真正的结合位点,1000bp,处的,DNA,序列很可能被抗体共沉淀下来。所以，对照引物扩增的,DNA,区域与实验引物扩增的,DNA,区域之间的距离必须大于,1000bp,。,引物的设计依据通用的引物设计原则。有时为提高扩增产物的特异性，可将引物终浓度降低,5-10,倍。大多数引物步需要纯化或特殊处理。由于实际上扩增效率较低，扩增产物不应过长，以,75-300bp,为宜。,Co-IP,和,ChIP,的区别,Co-IP,ChIP,相互作用,蛋白,-,蛋白,蛋白,-DNA,检测对象,蛋白质,DNA,序列,检测方法,Western blot/,质谱,PCR/,芯片,裂解方式,裂解液,超声；酶解,固定剂,不需要固定剂,甲醛,对抗体的要求,比较高,更高（交联对抗原表位的破坏）,