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第八章--生殖发育毒性作用及其评价.ppt

1、单击此处编辑母版标题样式,单击此处编辑母版文本样式,*,第八章 外来化合物生殖发育毒性作用及其评价,第一节 生殖发育毒性概述,生殖发育,是哺乳动物繁衍种族的生理过程的总称。其中包括生殖细胞(精子和卵细胞)的发生,卵细胞受精、胚泡的形成、着床(人受精后,10,14,天,大、小鼠,6,7,天)、胚胎形成(,8,周前称胚,以后称胎)、胚胎发育、器官发生(或称器官形成)、胎仔发育、分娩。从广义上说还应包括胎儿娩出后的新生儿期、哺乳期、直到性成熟的整个发育过程。,人们对先天缺陷和环境关系的认识是经历了一系列重大人间悲剧后才得到的。大量资料表明许多生殖内分泌系统疾病也与化学物质有关。,1945,年美国在

2、日本广岛和长崎爆炸原子弹,受到核辐射的胎儿出生后患小头畸形和智力低下,婴儿一年内死亡率达,25%,。,1950,年美国霍普金斯大学医院发现,怀孕期间服用黄体酮,先后有,600,多名女婴出现生殖器男性化畸形;,1960,年前后,日本妇女以反应停(,thalidomide,)作镇静剂减轻早孕反应,出生了近万名短肢畸形儿(海豹畸形),约占早孕期服药者新生儿的,1/3,。,1968,年和,1978,年在日本,,1979,年在台湾曾先后发生因多氯联苯(,PCBs,)污染米糠油而导致的中毒事件,中毒孕妇发生死产、早产和畸胎等。,1961,1970,年间,美国在侵越战争中多次使用超过允许用量,13,倍剂量的

3、2,4,5,T,和,2,4,D,脱叶剂,其中含有杂质四氯二苯二恶英,TCDD,(,tetra-,chlorodibenzo-p-dioxin,),污染了大面积耕地和森林,导致妇女流产、死胎、畸胎的发生率明显增加。,从,70,年代起,我国已开始了对药品、农药、食品添加剂和环境污染物的致畸研究,并把致畸试验、生殖毒性试验列为新药、农药、食品及首次进口化学品的安全性毒理学评价的重要组成部分。,一、生殖毒性,1,、生殖毒性,指对雄性和雌性生殖功能或能力的损害和对后代的有害影响。生殖毒性既可发生于妊娠期,也可发生于妊前期和哺乳期。,2,、生殖毒性的表现,为化学物质对生殖过程的影响,例如生殖器官及内分泌

4、系统的变化,对性周期和性行为的影响,以及对生育力和妊娠结局的影响等。具体可表现为性淡漠、性无能或各种形式的性功能减退。,雌性,可出现排卵规律改变、月经失调或闭经、卵巢萎缩、受孕减少、胚胎死亡、生殖力降低、不孕或不育等。,雄性,可表现为睾丸萎缩或坏死、精子数目减少等。,二、发育毒性,1,、发育毒性,发育毒性指在到达成体之前诱发的任何有害影响,包括在胚期,(embryonic period),和胎期,(fetal period),诱发或显示的影响,以及在出生后诱发和显示的影响。,2,、发育毒性的表现,1)生长迟缓。,一般认为胎儿的生长发育指标比正常对照的均值低,2,个标准差时,即可定为生长迟缓。胎

5、鼠胸骨及枕骨骨化迟缓及低出生体重等是生长迟缓的较敏感指标。生长迟缓造成的局部发育不全可视为畸形,如脑小畸形和眼小畸形等。,2,、发育毒性的表现,2,)功能不全或异常:,指胎仔生理、代谢、免疫、神经活动及行为的缺陷或异常,其往往在出生后一定时间内被发现。因正常情况下,有些功能在出生后一定时间才发育完全,,如听力或视力异常、行为发育迟缓等。,3,)致畸作用:,活产胎仔胎儿出生时,某种器官表现形态结构异常。,4,)胚胎或胎仔致死作用:,具体表现为流产、死产、死胎及其发生率增加等。,以上四种发育毒性的具体表现并非一定在一种化学物质作用下同时出现,有时只出现其中的一种或一部分。,三、化学物质影响生殖发育

6、毒性的途径及特点,2,、,亲胚体作用和亲胎体作用(胚胎毒性),某些化学物质可作用于妊娠早期(即从受孕到胚体形成阶段),对胚体发育产生损害作用。,某些化学物质可以降低胚体对必需营养素的利用度,如,EDTA,降低胚体对微量元素的利用度,氨基嘌呤降低胚体对叶酸的利用度。当给予母体这些化学物质时,可导致与缺乏这些必需营养素相似的胚体毒性。,胚体毒性、胎体毒性,(fetotoxicity),和胚胎毒性,(embryo-fetal toxicity),是指由出生前接触引起对孕体的任何有害影响,包括结构和功能异常,或这种影响在出生后的表现。这些术语与有害作用诱发的瞬间或时期有关,而不考虑检测的时间。,3,、

7、亲胎盘作用(胎盘毒性,placental toxicity,),某些化学物质可对胎盘造成损伤,改变胎盘血流量,降低胎盘对营养物质的转运,特异地干扰胎盘功能(如内分泌和代谢功能)。,例如,,5-,羟色胺使小鼠动、静脉狭窄,胎盘血流量减少,胎盘转运功能障碍,引起死胎和先天畸形。甲基汞改变人胎盘滋养层微绒毛对不能代谢的氨基酸的摄取,而致功能致畸,即先天水俣病;患儿严重神经迟钝,共济失调,步行困难,语言、咀嚼,下咽困难和大发作性癫痫。,此外,化学物质还可引起,哺乳期毒性,(通过乳汁致婴儿中毒,如铅中毒)和通过对,中枢神经系统,及全身机能状态的毒作用来影响生殖过程。,三、化学物质影响生殖发育毒性的途径

8、及特点,影响途径,直接作用于生殖发育过程;,通过对内分泌系统特别对性腺的作用,产生间接影响;,作用于神经系统,影响内分泌功能,间接影响生殖发育过程。,特点,生殖发育过程较为敏感。,例如,妊娠期接触过不足以引起肿瘤的低剂量二乙基亚硝胺,(,diethyllnitrosamine,),,子鼠成年后再次接触,则肿瘤发生率增加。,影响的范围广泛而深远。,损害作用不仅表现在接触化学物质的机体本身,还可影响其后代。例如母鼠接触高浓度二硫化碳引起致畸作用,其子一代即使不再接触二硫化碳,所生的子二代也出现几乎完全相同的畸变类型。,三、化学物质影响生殖发育毒性的途径及特点,1、致畸作用具有特定的敏感期,四、致畸

9、作用的毒理学特点,化学毒物作用于不同发育阶段,过早或过迟接触都可能不产生效应。,在胎儿期,多数器官形成、长大和功能成熟,但神经系统和生殖系统等功能的完全成熟延伸至出生后的儿童期、少年期、青春期。,在致畸作用中,对致畸物最敏感的阶段为,器官发生期,,一般称,致畸危险期或关键期,。,自受精零日计算,大鼠器官发生期约为917天;小鼠为7516天;家兔为1120天。,也有称大小鼠为,6,15,天,家兔,6,18,天,其它阶段接触发育毒物可能带来的损害:,1,)着床前期,又称分化前期,细胞迅速分裂而形成胚囊,分化很少,受损的是相对未分化细胞。一般认为,此时很少发生特异的致畸效应,通常是未分化细胞受化学毒

10、物损伤而致,胚泡死亡,,称为着床前丢失(,preimplantationloss,)。,然而,也有着床前期接触毒物导致胎儿畸形的例子。如环氧乙烷、甲基亚硝脲、乙基亚硝基脲、乙基磺酸甲烷和三乙烯三聚氰胺等。小鼠妊娠前第,2.5d,、第,3.5d,和第,4.5d,用甲基亚硝脲处理可造成子代神经管缺陷和腭裂。,其它阶段接触发育毒物可能带来的损害:,2,)胎儿期,器官形成结束后即进入胎儿期,直到分娩。,胎儿期以组织分化,生长和生理学的成熟为基本特色,在胎儿期接触发育毒物很可能对生长和功能成熟产生效应。如免疫系统、中枢神经系统和生殖器官的功能异常,包括行为的、精神的、运动的缺陷和生殖力降低等。,这些临床

11、表现出生前不明显,需要出生后对子代子细观察和测试。,某些结构变化在胎儿期也能发生,但是这些通常是变形或异常而非畸形。,在胎儿期毒性暴露的一些效应可能需要多年才变得明显。所以,胎儿期化学物质的不良作用,主要表现为:全身生长迟缓、特异的功能障碍、经胎盘致癌和偶见死胎。,其它阶段接触发育毒物可能带来的损害:,3,)围生期,研究较多的是发育免疫毒性、神经行为发育异常和儿童期肿瘤。妊娠期和围生期接触某些化学物质,会严重影响出生后,T,细胞、,B,细胞和吞噬细胞的发育、迁移等功能。可能暂时或永久地损伤机体的免疫系统。,如氯氰菊酯诱导儿茶酚胺释放引起胸腺细胞分布和功能改变;干扰某些细胞因子的产生和释放。,许

12、多化学物质具有发育神经毒性,表现为对感觉、运动、自主和认知的影响。如妊娠期饮酒造成的乙醇综合征胎儿(,FAS,),出现包括小头、颅面畸形,子宫内和出生后生长迟缓,精神、运动和智力发育滞后,智商低,终身神经行为紊乱等神经发育异常。,其它阶段接触发育毒物可能带来的损害:,4,)出生后的发育期,人在出生前后从母乳、空气、食物、环境、玩具中摄入,铅,,会引起幼儿认知功能发育和学习障碍。,父母亲吸烟(,烟碱,)可改变胎儿中枢神经系统烟碱受体发育,增加出生后的学习、行为和注意力障碍。,妊娠期接触人类致畸物抗惊厥药丙戊酸盐的妇女,生育脊柱裂的孩子的预期危险是,1.2%,。,5,岁以下儿童在家庭内接触菊酯类和

13、有机磷类杀虫剂,脑癌相对危险度增高,且与母体经食物摄入亚硝酸盐量有关。所以,儿童肿瘤的发生与出生前和出生后的接触有关。,表现为:器官致畸高峰时间不同,即使同一致畸物,在器官形成期中不同时间染毒也会诱发不同器官畸形;同一天染毒也可引起多个器官受损。,不同系统和器官的形成与发育是不完全同步的,有不同速度,即有先有后,日期不同。不同器官的敏感期也不同,且有交叉重叠。,2、剂量效应关系复杂,机体在器官形成期与致畸物接触,除出现畸形外,也可出现,生长迟缓,和,胚胎死亡,,当剂量增加时,各种效应增强程度并不一定成比例。一胎多子动物(如啮齿类)胚胎死亡后被吸收,称为吸收胎(,resorption,),在人和

14、灵长类则以流产告终。只是在这一时期,化学物质表现出发育毒性,以,结构畸形最突出,。,某种致畸物随剂量增加,除可引起一定畸形数量增加外,还可造成更为严重的畸形,甚至引起不同 的畸形。,如:小鼠孕第,8d,12d,的不同时间给予环磷酰胺,20mg/kg,,虽然均引起趾畸形,但随着给药时间的不同分别出现多趾、并趾、缺趾、无趾。,2、剂量效应关系复杂,3,)剂量反应关系曲线较为陡峭,即曲线斜率较大。最大无作用剂量与100致畸剂量之间距离较小,而100致畸量即可出现胚胎死亡,剂量再增加,又可引起母体死亡。,3、物种差异以及个体差异在致畸作用中更为明显,母体毒性:,指在生殖发育毒性试验中,外来化合物在一定

15、剂量下,对受孕母体产生的损害作用。,具体表现为:体重减轻,出现某些临床症状,直至死亡。,轻度母体中毒表现应限于母体体重下降,正常增长受抑制,受抑制程度应不超过对照组的,10,,肝重可略有增加,但在生殖机能应正常;,严重者可出现体重增长大幅度抑制、持久性呕吐、过度安静或兴奋、生育机能明显受损、呼吸窘迫甚至死亡。,五、母体毒性与致畸作用的关系,1具有致畸作用,但无母体毒性出现。表明此种外来化合物具有特定的致畸作用机理,与母体毒性无关,此种致畸作用往往较强,应予以特别注意。,2出现致畸作用,同时出现母体毒性。此种情况可能有两种原因:,该物质对胚胎可能有特定的致畸作用机理,同时对母体亦有损害作用,但二

16、者并无直接联系;,不具特定致畸作用机理,但可破坏母体的正常生理稳态,以致对胚胎有非特异性的影响,并造成畸形。,3仅具有母体毒性,但不具有致畸作用,4在一定剂量下,既不呈现母体毒性,也未见致畸作用。,(1)受试物确实不具有致畸作用,也不具有母体毒性。,(2)动物接触的剂量未达到致畸作用的最小有作用剂量,并非真正不具有致畸作用和母体毒性,这时应最大限度增加剂量,使其远远高于人体实际可能接触的水平,如仍未出现致畸作用,才可作出结论。,第二节 生殖发育毒性作用的评价,生殖与发育毒性研究的目的是揭示化学品药品对哺乳动物生殖发育的任何有害影响,并将研究的结果与所有可以得到的其他药理学和毒理学资料联系起来,

17、以推测对人可能造成的生殖危险。,研究应包括成年动物从受孕到子代性成熟的各个发育阶段接触受试物。为检测接触所致的即发和迟发效应,应连续通过一个完整的生命周期,即从亲代受孕到子一代受孕。,一、生殖发育过程的细分:,A阶段,:,交配前到受孕:,检查成年雄性和雌性生殖功能,配子的发育与成熟,交配行为,受精。,B阶段,:,受孕到着床:,检查成年雌性生殖功能,胚胎着床前发育、着床。,C阶段,:,着床到硬腭闭合:,检查成年雌性生殖功能,胎体发育,主要器官形成。,D阶段,:,硬腭闭合到妊娠结束:,检查成年雌性生殖功能、胎体的发育与生长,器官的发育与生长。,E阶段,:,出生到断乳:,检查成年雌性生殖功能,新生仔

18、对宫外生活的适应,断乳前的发育与生长。,F阶段,:,断乳到性成熟:,检查断乳后的发育与生长,对独立生活的适应,达到完全的性功能。,二、生殖发育毒性试验的方法,(一)三段生殖毒性试验,用一组试验研究全部生殖毒性的终点是不可能的,所以在决定适当的策略和选择研究设计时,应考虑该受试物及其类似物质所有可能得到的药理学、动力学和毒理学资料。对大多数医药产品来说,三段生殖毒性试验设计通常是适当的。关键因素是各个生殖阶段之间不得有间隔,即在三个有关联的阶段接触受试物的时期至少有一天的重迭,并能直接或间接地评价生殖过程的所有阶段。,三段生殖毒性试验由生育力和早期胚胎发育毒性试验,胚体,胎体毒性试验,(,致畸试

19、验,),,出生前后发育毒性试验,(,围产期毒性试验,),三部分组成,(,下图,),。,三段生殖毒性试验,(二)雄性生殖毒性试验,1,、精子分析,精子的发生:,是指精原细胞发育成为成熟精子的过程。自胎儿期以来,精原细胞在曲细精管中是休止着的,到了青春期数量开始增多。曲细精管基底膜上的,精原细胞,在性成熟期间不断分裂,同时产生,初级精母细胞,,经过减数分裂,形成,两个,单倍体的,次级精母细胞,,再经等数分裂,形成,四个,单倍体的,精子细胞,,精子细胞再进一步分化成为具有特殊形态的,成熟精子,。,从一个精原细胞分化成为成熟的精子,各种动物所需要的天数是不同的。例如,小鼠为,34.5,天,大鼠为,48

20、天。,(二)雄性生殖毒性试验,1,、精子分析,精子是一种高度分化的细胞,它不仅把父亲的遗传信息传递给卵子,它又可决定新生后代的性别。,进入曲细精管的精子没有活动能力,在副睾中经过成熟过程才逐步获得了运动能力和受精力,也就变成了具有活泼运动能力的成熟精子。精子的发生是周期性变化的。,对于同一种动物而言,,精子发生所需要的时间相对恒定,。所以了解生精过程的周期性变化,对确定食品中化学物质对精子发育各阶段的影响有着重要意义。,精子分析是生殖毒性较为敏感的指标,主要包括,精子计数、精子运动能力以及精子形态的检查。,实验常用小鼠或大鼠。收集精子的方法可采用交配射精后冲洗阴道的方式获取精子,但大多采用处

21、死动物收集睾尾部和输卵管中的精子。,(二)雄性生殖毒性试验,2,、精子穿透实验,精子穿透实验实际上就是精子体外授精的实验。,精子在体外成功地穿透卵子的能力是常规精子分析所不能显示的。虽然目前还没有一种能全面、精确预见精子受精能力的检查,但精子穿透试验是一种很有意义的预见精子受精能力的检查。,在适当的条件下,可以把人精子与去透明带金黄地鼠卵子混合,模仿进行这些过程的生物鉴定方法在临床被证明是有价值的。临床使用这种无创检查的数据显示,其结果与男性使配偶妊娠高度关联。,(二)雄性生殖毒性试验,2,、精子穿透实验,其实验原理是:,哺乳动物受精过程中物种专一性主要表现在卵子的透明带上。该方法包括一系列实

22、验过程,精子的洗涤和获能,去掉金黄地鼠卵子的透明带,用去掉透明带的金黄地鼠卵代替人卵做精子穿透试验。,因为用容易获得的去掉透明带的金黄地鼠卵代替人卵,这使得该方法具有实际的应用价值。该方法突出的优点是:有足够的卵子,又无需男性患者的配偶参与,在检查的时间上也比较快。两个培养皿每个内放,20,个左右的去掉透明带金黄地鼠卵子与患者的精子一起培养观察受精的百分比,作为对照的是已生育过的自愿者的精液。,(二)雄性生殖毒性试验,3,、大鼠睾丸间质细胞与支持细胞分离培养,虽然整体动物实验是评价化学物质性腺毒性的主要途径,但其耗时、费力,而且在中毒机制的研究中也受到诸多限制。应用睾丸体外培养的手段检测化学物

23、质对睾丸功能的影响,不失为一种简便、可靠的方法。,1),睾丸间质细胞:,间质细胞的主要功能是分泌雄激素(睾丸酮)。,分布在睾丸曲细精管的结缔组织中,细胞呈圆形、梭形或多角形,体积较大,胞核有,1,2,个核仁,胞浆丰富,呈嗜酸性,含有大量滑面内质网。,(二)雄性生殖毒性试验,2,)睾丸支持细胞:,是曲细精管上皮除各级生精细胞外,与精子生成有关的细胞之一。虽然它是睾丸生精上皮中惟一的非生殖细胞,但它对精子的发生发育具有十分重要的意义。,支持细胞能分泌多种生物活性物质,对生精细胞起到支持和营养作用。,因为生精细胞本身不能利用萄萄糖,它所必须的能量是由支持细胞糖酵解所产生的乳酸和丙酮酸来提供。支持细胞

24、具有较强的糖酵解能力,可将萄萄糖转化为乳酸和丙酮酸。支持细胞的乳酸含量和乳酸脱氢酶活性的变化常被作为反映支持细胞功能以及对生精细胞能量代谢的影响和对生精过程干扰的指标。,(二)雄性生殖毒性试验,4,、睾丸中标志酶活性检测,睾丸中酶含量和活性的改变是生殖毒性的敏感指标之一,可以简便且可靠地反映出外来化学物质对睾丸功能的损害。,已知睾丸中的酶大致可分为两类,,一类酶其含量和活性随着精子的形成、成熟而增高,,如乳酸脱氢酶同工酶、山梨醇脱氢酶、透明质酸酶、,-,磷酸甘油脱氢酶等;,另一类则是随着精子的形成、成熟,其活性下降,,如,6-,磷酸葡萄糖脱氢酶、苹果酸脱氢酶、三磷酸甘油醛脱氢酶以及异柠檬酸脱氢

25、酶等。,(二)雄性生殖毒性试验,5,、雄性激素检测,睾丸生成精子的同时还具有分泌性激素的功能。睾丸的功能主要靠,卵泡刺激素、促黄体生成素和睾酮,来维持和调节。,卵泡刺激素,主要作用于曲细精管的支持细胞,使其合成与分泌雄性激素结合蛋白。后者的作用是使雄性激素浓聚,维持曲细精管中的雄性激素达到一定水平。,促黄体生成素,主要作用于间质细胞,使其合成和分泌睾酮。雄性生殖系统无论生精过程、精子成熟过程,还是附属性腺的分泌活动,都需要有足够的,睾酮,。检测上述三种性激素含量有助于生殖毒性的评价以及生殖毒作用机制的探讨。,(二)雄性生殖毒性试验,6,、雄性生殖器毒性病理检验,从形态学角度评价外来化学物质对雄

26、性生殖系统的毒性作用,是雄性生殖毒理学研究中不可缺少的较为敏感的指标和重要手段。,睾丸、附睾、前列腺以及精囊的重量和大小的改变常是接触有害化学物质的明显征兆。,外来化学物质作用于雄性生殖系统,可引起睾丸及其附属器官、组织或细胞的病理性损伤。睾丸组织最易受到外来化学毒物的侵害,因此在亚慢性或慢性动物实验中,睾丸组织形态检验也是一项重要的指标。,(三)雌性生殖毒性试验,在哺乳类动物中,,雌性生殖系统包括卵巢及其附属器官,如输卵管、子宫及阴道。,外来化学物质对雌性生殖系统的损伤主要表现在对雌性卵巢功能的干扰。卵巢功能包括生殖功能(卵细胞的发育、排卵、黄体形成)和内分泌功能(雌激素和孕激素等性激素的生

27、成和分泌)。,卵巢的内分泌功能受垂体前叶促性腺激素(,FSH,)和黄体生成激素(,LH,)的控制,发生周期性的变化(卵泡的发育、排卵、黄体生成)。,(三)雌性生殖毒性试验,垂体分泌的,FSH,使卵泡生成,卵泡发育至次级卵泡时卵泡膜内层细胞分泌雌激素,雌激素作用于子宫内膜,使子宫内膜呈增生期改变。同时它们又反馈地抑制下丘脑和垂体停止分泌促性腺激素。于是,黄体退化、血中孕酮和雌激素含量下降。此时,下丘脑及垂体不再受抑制,促性腺激素又开始分泌。卵巢中又有卵泡的生长。如此生长反复循环,从而形成卵巢内周期性变化。,卵巢的周期性变化与动情周期密切相关。小鼠及大鼠的动情周期是,45,天节律性地重复一次。预定

28、成熟的卵泡大约在动情期开始发育,下一个动情期末排卵。,(三)雌性生殖毒性试验,卵巢中可以看到不同发育阶段的黄体。,黄体为,排卵,后由卵泡迅速转变成的富有血管的腺体样结构。黄体细胞成多边形,胞质内有黄色颗粒和脂滴,呈黄色。细胞以颗粒细胞占多数,细胞大,着色浅,分泌孕酮。,黄体的发育及存在时间多少,决定于排出的卵是否受精。若卵子未受精,黄体仅维持二周即萎缩退化,被结缔组织结疤所代替,即,白体,(,corpusalbicans,);若卵子受精成功并开始妊娠,黄体继续增长,则为,妊娠黄体,,至妊娠,2,3,月后慢慢萎缩。,(三)雌性生殖毒性试验,1,、发情周期的观察,1,)基本原理:,啮齿类动物的发情

29、周期可分为发情前期、发情期、发情后期及发情间期等四个期。阴道上皮细胞,由于新陈代谢,不断地脱落和再生。随着卵巢激素的变化,脱落的阴道上皮细胞类型和形态也呈现周期性变化。外来化学毒物及不良环境因素会影响卵巢功能,使发情周期紊乱。逐日连续观察,可了解卵巢功能状况是否正常。,2.,观察方法:,在灭菌的平皿中倒入灭菌生理盐水,将小棉拭子插入灭菌盐水内使棉花蘸湿,抓牢受试动物,将棉拭子伸入其阴道,轻轻擦试阴道壁,拭取阴道分泌物,得其涂布于滴有一滴生理盐水的载玻片上,置显微镜下观察脱落细胞。,(三)雌性生殖毒性试验,2,、排卵的观察,染毒处理应在雌鼠处于发情间期进行,在染毒的第六天(发情前期)处死动物。取

30、出卵巢。称量湿重,分离出黄体及非黄体再分别称重。计数黄体数。用,Hanks,液冲洗两侧输卵管,在实体显微镜或扩大镜下计数卵细胞数。整理分析卵巢重量,黄体数目及其总重量,卵细胞数等指标。黄体重量减轻,排卵数目减少是化学毒物对卵巢功能损害的常见表现。也有将卵巢固定,做连续切片,观察计数各期卵泡,判断排卵情况(见病理组织学检查)。,3,、雌性激素检测,包括雌激素活性测定,血浆雌二醇放免分析法,血浆孕酮放免分析。,(三)雌性生殖毒性试验,4,、病理组织学检查,主要对与生殖有关的器官进行病理组织学检查,其中卵巢因其具有形成卵细胞和内分泌双重作用而更加重要。,通常实验动物按计划染毒处理后处死,取出卵巢,用

31、甲醛或,BouimH,氏液固定,24h,后,作连续切片,厚,5m,,,H-E,染色,光镜下检查。这一方法可以提供以下评价指标:(,1,)一张切片上的平均卵泡数;,(,2,)闭锁卵泡的百分率;,(,3,)进行卵泡分类(原始卵泡、生长卵泡、成熟卵泡)的相对百分比,。,电镜检查有助于发现微细的更为早期的病变部位。,此外,还应注意有关器官的重量,如脑垂体、卵巢重量,(四)繁殖试验,是通过对实验动物繁殖过程的观察,来评价外源性化学物质对动物性腺功能、交配、受精能力、分娩、授乳以及后代发育等繁殖功能有无损害作用的试验。,受试化学物质如能引起生殖功能障碍,干扰配子形成或直接损伤生殖细胞。其结果除可影响受精卵

32、着床而导致不孕外,还可能影响胚胎的发生和胎仔的发育,如胚胎死亡流产、胎仔发育迟缓以及出现畸形胎仔等等。受试物对母体的毒作用则可能出现妊娠、分娩和乳汁分泌的异常以及胎仔生后发育的异常。,(四)繁殖试验,1、动物选择及分组,多用初断乳大鼠(,4,周龄),其自然受孕率较高,亦可用小鼠和家兔。对大、小鼠,可每组、1620只,雌雄相等;或雌1620只、雄810只。,2、剂量设计:,一般至少三个剂量组,另设对照组,剂量的确定可用少数动物进行预试。,如已进行过亚慢性和急性毒性试验,则最高剂量可略高于亚慢性试验中最大无作用剂量,或相当于,LD,50,的110左右,最低剂量可相当于最高剂量的130。,3、被检物

33、的给予方式,一般可混入饲料和饮水中,由动物自由摄取,也可采用灌胃或胶囊法,随体重的增长,应每周根据动物进食量调查饲料中应混入受试物的量。,4,、试验方案,三代两窝生殖试验:,两代一窝或一代一窝试验法,A、,可以节约人力、物力并缩短试验时间,B、,凡不是长期连续与机体接触或代谢半减期较短可进行一代,如一般药物;反之,如各种食品添加剂和与水或空气有关的环境污染物,应进行两代生殖试验。,5,、观察指标,1,)对亲代动物的子宫、卵巢、阴道、睾丸、精囊、前列腺作肉眼大体观察,必要时应作病理组织学检查。,2,)对每代的第一窝仔鼠(,F1a,、,F2a,、,F3a,)断乳后观察,3,个月,记录出生时和断乳时

34、的存活率、体重、体长、尾长。在喂养期间观察一般健康情况、摄食量、体重、饲料效价、性成熟情况及死亡率等指标。,3,)对每代的第二窝仔鼠(,F1b,、,F2b,、,F3b,)主要观察受孕率、正常分娩率、幼仔出生成活率、幼仔哺乳成活率,分别反映动物的受孕、胚胎发育、分娩和哺育幼鼠成活情况。,受孕率=,妊娠雌性动物数,交配雌性动物数,100%,正常分娩率=,正常分娩动物数,妊娠雌性动物数,100%,反应雌性动物生育能力及受孕情况,反应雌性动物妊娠过程是否受到影响,幼仔出生存活率=,出生后4天存活幼仔数,分娩时出生幼仔数,100%,幼仔哺育成活率=,21天断奶存活幼仔数,出生后4天存活幼仔数,100%,

35、反应雌性动物分娩过程是否正常,反应雌性动物授乳哺育幼仔能力,4,)为了同时观察有无畸胎出现,可在每代第二次交配(即,b,窝鼠交配)时,选出部分受孕雌鼠(,510,)只,在分娩前,2,天剖腹取出胎仔,观察有无畸形,可为下一步致畸试验提供参考。,(五)致畸试验,致畸实验是借助动物实验检测外来物致畸效应的方法。,发育毒性的评定主要通过致畸试验,在该试验中除可观察到出生幼仔畸形外,也可同时发现生长发育迟缓和胚胎死亡。,传统致畸试验,是评定致畸作用的标准方法。,1,、动物选择,一般选择两种动物,首先考虑健康成年未曾孕产的大鼠(体重,200250g,),另外可选用小鼠(,2025g,)或家兔。,大、小鼠代

36、谢途径与人类似,胎盘结构也基本与人相近,妊娠期短而一致,产仔数多,而且自发畸形率较低。,2、剂量设计:,一般至少设三个剂量组,另设对照组,A、,最高剂量,应超过预期人类实际接触水平,一般应能使亲代动物出现,轻度中毒,,但不出现死亡,(或死亡率不超过10,也不能完全丧失生育力),一方面要求找出最大无作用剂量及致畸阈剂量。同时还要保持母体生育能力,不致大批流产或过多胚胎死亡。,一般应先进行,预试,,可用孕鼠810只,在妊娠516天内给予受试物。,B、,低剂量组不应出现任何中毒症状,另设中间剂量组,三组剂量应成等比级数。如果对结果有怀疑,应增加第四个剂量组,以免剂量间隔过大。,最高剂量组出现轻度中毒

37、的目的是,:表明在已能引起中毒的剂量下,如仍不致影响正常生殖发育过程,则表明该受试物确实不具有生殖发育毒性作用。反之,如剂量过低,则难于确定受试物是否不具有生殖发育毒性,还是因为剂量不足,未达到最小有作用剂量;如剂量过高,可引起大量流产和死胎。,一般高剂量不超过,LD50,的1513,低剂量为1100130。,如已掌握或估计到人体实际接触量,也可将实际接触量作为低剂量,并以10倍左右作为高剂量。,C,、对照组 在常规试验中,除设3个剂量组一个对照组外,如必要还需设一个,溶剂对照组和阳性对照组,(可选用15000,IU VAKg,体重)。,注:分组可因试验目的的不同有所变化,如主要确定受试物有无

38、致畸作用时,则组数可相对较少(如3组),每组动物数较多,若拟观察剂量-效应关系,则组数应相应增加;雌雄可按1:1或2:1同笼交配。,D、,每组动物数:,大、小鼠1220只、兔812只、狗等34只。,3,、接触受试物的途径:,与人体实际接触途径应一致,一般多采用经口、,灌胃法,,以保证剂量与时间准确,比混入饲料法为好,特殊情况下,可采用腹腔注射,效果与经口相似。,4,、染毒时间:,在常规试验中,主要目的是了解受试物是否有致畸作用。大、小鼠可采用受孕后第,7,天开始第,15,天,每天一次。,如拟深入研究受试的靶器官,则应在上述时期内 将受试物分别每日给予一批动物,每批动物只接触一次。,5,、胚仔检

39、查,1、于自然分娩前12天(大鼠在受孕后1920天,小鼠1819天,家兔29天)将受孕动物处死,取出活产胎仔进行畸形检验,另行形记录死胎和吸收胎。,畸形检查只限活产胎仔,一般可先进行肉眼检查,然后将其中23经固定、透明和茜素红染色等步骤,观察骨骼畸形,另外13先经鲍音氏(,Bouin),溶液固定2周以上,再检查内脏及软组织异常。,2、以上不能检出功能缺陷或行为缺陷,因此有人主张将雌鼠保留14,待其自然分娩,并将幼仔饲养观察,至少到断奶。,试验中确定动物是否受孕的方法:阴道涂片 阴栓,颜色,器官外形,自然运动,对机械刺激的反应,胎盘,活产胎仔,肉红色,完整成形,有,有运动反应,红色,较大,晚期死

40、胎,灰红色,完整成形,无,无运动反应,灰红,较小,早期死胎,乌紫色,未完整成形,无,暗紫,吸收台,暗紫或浅紫点块,不能辨认胚胎和胎盘,不能辨认,胎仔活产、死亡和吸收的特征,6,、结果评价,1、在致畸试验结果评定时,主要计算畸胎总数和畸形总数。,A、,畸胎总数,每一活产胚仔出现一种或一种以上畸形均作为一个畸胎。,B、,畸形总数,在同一幼仔每出现一种畸形即作为一个畸形。,2、计算时还要对剂量效应(反应)关系加以分析,按下列指标将剂量组与对照组进行比较:,(1)活产幼仔平均畸形出现数=,畸形总数,活产幼仔总数,(2)畸胎出现率,=,出现畸形的胎仔总数,100%,活产幼仔总数,(3)母体畸胎出现率,=,出现畸胎的母体数,100%,妊娠母体数,3、根据以上指标进行初步计算后,确定受试物是否具有致畸作用的最后结论时,尚需注意以下几点:,A、,任何阳性结果均需通过统计计算方法进行剂量组与对照组对比,此外还应注意剂量效应关系是否明确。,B、,应掌握所用试验动物的自然畸形发生率。,C、,由于物种差异,将动物实验结果外推到人时应慎重对待,在动物和人体的代谢情况以及毒物动力学参考相近者才较为可靠。此外,还可利用流行病理调查方法,进行人群调查。掌握在人群中致畸作用的实际情况。,

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