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细胞生物学笔记-第三章细胞生物学研究方法.doc

1、第三章 细胞生物学研究方法 如何学习细胞生物学? • 抽象思维与动态观点 • 结构与功能统一的观点 • 同一性(unity)和多样性(diversity)的问题 • 细胞生物学的主要内容: 结构与功能(动态特征); 细胞的生命活动 ; • 实验科学与实验技术——细胞真知源于实验室 ——What we know//How we know. 第三章 细胞生物学研究方法 ˜细胞形态结构的观察方法 ˜细胞组分的分析方法 ˜细胞培养、细胞工程与显微操作技术 第一节 细胞形态结构的观察方法 ˜

2、光学显微镜技术(light microscopy) ˜电子显微镜技术 (Electro microscopy) ˜扫描探针显微镜(Scanning Probe Microscope) 扫描遂道显微镜 (scanning tunneling microscope ) 第二节 细胞组分的分析方法 ˜离心分离技术 ˜细胞内核酸、蛋白质、酶、糖与脂类等的显示方法 ˜特异蛋白抗原的定位与定性 ˜细胞内特异核酸的定位与定性 ˜放射自显影技术

3、 ˜定量细胞化学分析技术 第三节 细胞培养、细胞工程与显微操作技术 ˜细胞的培养 ˜细胞工程 一、光学显微镜技术(light microscopy) ˜普通复式光学显微镜技术 ˜荧光显微镜技术(Fluorescence Microscopy) ˜激光共焦扫描显微镜技术(Laser Confocal Microscopy) ˜相差显微镜(phase-contrast microscope) ˜微分干涉显微镜 (differential interference contr

4、ast microscope, DIC) ˜录像增差显微镜技术(video-enhance microscopy) 二、 电子显微镜技术 ˜电子显微镜的基本知识 ¿电镜与光镜的比较 ¿电镜与光镜光路图比较 ¿电子显微镜的基本构造 ˜主要电镜制样技术 ¿负染色技术 ¿冰冻蚀刻技术 ¿超薄切片技术 ¿电镜三维重构技术 ˜扫描电镜 (Scanning electron microscope,SEM) SPM(Scanning probe microscope) 三、 扫描遂道显微镜 ¿Scanning Probe Micros

5、cope,SPM (80年代发展起来的检测样品微观结构的仪器) 包括:STM、AFM、磁力显微镜、摩擦力显微镜等 原理:扫描探针与样品接触或达到很近距离时,即产生彼此间相互作用力,如 量子力学中的隧道效应(隧道电流)、原子间作用力、磁力、摩擦力等, 并在计算机显示出来,从而反映出样品表面形貌信息、电特性或磁特性等。 ¿装置:扫描的压电陶瓷,逼近装置,电子学反馈控制系统和数据采集、处理、显示系统。 ¿特点:(1)可对晶体或非晶体成像,无需复杂计算,且分辨本领高。 (侧分辨率为0.1~0.2nm,纵分辨率可达0.01nm); (

6、2)可实时得到样品表面三维图象,可测量厚度信息; (3)可在真空、大气、液体等多种条件下工作;非破坏性测量。 (4)可连续成像,进行动态观察 ¿用途:纳米生物学研究领域中的重要工具,在原子水平上揭示样本表面的结构。 普通复式光学显微镜技术 光镜样本制作 分辨率是指区分开两个质点间的最小距离 荧光显微镜技术(Fluorescence Microscopy) ˜原理与应用 ¿直接荧光标记技术 ¿间接免疫荧光标记技术 ¿在光镜水平用于特异蛋白质 等生物大分子的定性定位:

7、 如绿色荧光蛋白(GFP)的应用 激光共焦扫描显微镜技术 (Laser Scanning Confocal Microscopy) ¿原理 ¿应用: 排除焦平面以外光的干扰,增强 图像反差和提高分辨率(1.4—1.7), 可重构样品的三维结构。 ¿相差显微镜(phase-contrast microscope) 将光程差或相位差转换成振幅差,可用于观察活细胞 ¿微分干涉显微镜(differential-interference microscope)

8、 偏振光经合成后,使样品中厚度上的微小区别转化成 明暗区别,增加了样品反差且具有立体感。适于研究 活细胞中较大的细胞器 ¿录像增差显微镜技术(video-enhance microscopy) 计算机辅助的DIC显微镜可在高分辨率下研究活 细胞中的颗粒及细胞器的运动 电镜与光镜的比较 主要电镜制样技术 ˜ 超薄切片技术 用于电镜观察的样本制备示意图 ˜负染色技术(Negative staining)与金属投影 染色背景,衬托出样品的精细结构 ˜冰冻

9、蚀刻技术(Freeze etching) (技术示意图) 冰冻断裂与蚀刻复型:主要用来观察膜断裂面的蛋白质颗粒和膜表面结构。 快速冷冻深度蚀刻技术(quick freeze deep etching) ˜电镜三维重构技术 电子显微术、电子衍射与计算机图象处理相结合而形成的 具有重要应用前景的一门新技术。 电镜三维重构技术与X-射线晶体衍射技术及核磁共振 分析技术相结合,是当前结构生物学(Structural Biology) ——主要研究生物大分子空间结构及其相互关系的主要实验手段。 

10、 扫描电镜 ˜原理与应用: ˜电子“探针”扫描,激发样品表面放出二次电子,探测器收集二次电子成象。 ˜ CO 2临界点干燥法防止引起样品变形的表面张 力问题 一、 离心分离技术 ˜用途:于分离细胞器与生物大分子及其复合物 ˜差速离心:分离密度不同的细胞组分 ˜密度梯度离心:精细组分或生物大分子的分离 二、 细胞内核酸、蛋白质、 酶、糖与脂类等的显示方法 ˜原理:利用一些显色剂与所检测物质中一些 特殊基团特异性结合的特征,通过显 色剂在细胞中的定位及颜色的深浅来 判断某种

11、物质在细胞中的分布和含量。 Feulgen Staining 三、特异蛋白抗原的定位与定性 ¿免疫酶标技术 ¿免疫胶体金˜免疫荧光技术: 快速、灵敏、有特异性,但其分辨率有限 (图) ˜蛋白电泳(SDS-PAGE) 与免疫印迹反应(Western-Blot) ˜免疫电镜技术: ¿免疫铁蛋白技术 技术 应用:通过对分泌蛋白的定位,可以确定某种蛋白的分泌动态;胞内酶的研究;膜蛋白的定位与骨架蛋白的定位等 四、细胞内特异核酸的定位与定性 ¿光镜水平的原位杂交技术 (同位素标记或荧光素标记

12、的探针) ¿电镜水平的原位杂交技术 (生物素标记的探针与抗生物素抗体相连的胶体金标记结合)        ¿PCR技术 五、放射自显影技术 ˜原理及应用: ¿利用同位素的放射自显影,对细胞内生物大分子进行定性、定位与半定量研究; ¿实现对细胞内生物大分子进行动态和追踪研究。 ˜步骤: ¿前体物掺入细胞(标记:持续标记和脉冲标记) ———放射自显影 六.定量细胞化学分析技术 ˜ 细胞显微分光光度术(Microspectrophotometry) ¿利用细胞内某些物质对特异光谱的吸收,测定这些物质 (如核酸与蛋白质等)在细胞内的含

13、量。 包括: 紫外光显微分光光度测定法 可见光显微分光光度测定法 ˜ 流式细胞仪(Flow Cytometry) ¿主要应用: 用于定量测定细胞中的DNA、RNA或某一特异蛋白的含量; 测定细胞群体中不同时相细胞的数量; 从细胞群体中分离某些特异染色的细胞; 分离DNA含量不同的中期染色体。 一、细胞的培养 ˜动物细胞培养 ¿ 类型:原代培养细胞(primary culture cell) 继代培养细胞(sub-culture cell) ¿ 细胞

14、株(cell strain) 正常二倍体,接触抑制 ¿ 细胞系(cell line) 亚二倍体,接触抑制丧失 ˜植物细胞 ¿类型: 原生质体培养 (体细胞培养) 单倍体细胞培养(花药培养) ˜ 非细胞体系(cell-free system) 二、细胞工程 ˜细胞融合(cell fusion)与细胞杂交(cell hybridization)技术 ˜单克隆抗体(monoclone antibody)技术 图 ˜细胞拆合与显微操作技术 ¿物理法结合显微操作技术(图1、图2) ¿化学法结合离心技术 ¿制备核体(karyoplast)和胞质体(cytoplast)。 ˜其它技术 遗传分析(mutant, knock out, knock in) 对细胞生命活动的研究成为当今生命科学发展的瓶颈 对细胞生命活动的研究成为当今生命科学发展的瓶颈

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