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凝胶过滤层析法分离血红蛋白专家讲座.pptx

1、单击此处编辑母版标题样式,单击此处编辑母版文本样式,第二级,第三级,第四级,第五级,*,*,单击此处编辑母版标题样式,单击此处编辑母版文本样式,第二级,第三级,第四级,第五级,*,*,凝胶过滤层析法分离血红蛋白,化学生物学试验,药学院 化学生物学教研室,凝胶过滤层析法分离血红蛋白专家讲座,第1页,1.,试验目标,初步了解凝胶过滤层析法简单原理及应用,初步掌握应用凝胶过滤法分离蛋白质,1,2,凝胶过滤层析法分离血红蛋白专家讲座,第2页,2.,试验原理,层析法是利用混合物中各组分物理经学性质差异(如吸附力、溶解度、分子形状、大小和极性等),使各组分以不一样程度分布在两相中,从而使各组分以不一样速度

2、随流动相向前流动而到达分离目标。层析法可分为各种类型,包含分配层析,离子交换层析,凝胶过滤层析,亲和层析等。,层析法,分配层析,离子交换层析,凝胶过滤层析,亲和层析,凝胶过滤层析法分离血红蛋白专家讲座,第3页,2.,试验原理,1,待分离混合物(A、B)随流动相经过固定相,因为理化性质差异,与两相发生相互作用(吸附、溶解、结合等)能力不一样,在两相中分配(含量对比)不一样,与固定相相互作用力越弱组分,随流动相移动时受到阻滞作用小,移动速度快,分步搜集流出液,可得到样品中所含各单一组分,从而到达将各组分分离目标,2,3,4,凝胶过滤层析法分离血红蛋白专家讲座,第4页,凝胶过滤层析,主要依据混合物中

3、分子大小及形状不一样,在经过凝胶(固定相)时,分子扩散速率各异而到达分离目标。凝胶颗粒含有多孔性网状结构,小分子能够进入凝胶颗粒内部,流程长而移动速率慢(阻滞作用大);而大分子则被排除在外,沿凝胶间空隙随(流动相)流动,流动短而移动速率快(阻滞作用小),比小分子物质先流出层析床,所以凝胶过滤层析又称为排阻层析,分子筛层析,凝胶过滤法操作简例,且操作条件温和,不易引发生物样品变性失活,分离效果好,故广泛应用于蛋白质、酶、核酸分离提纯(包含脱盐、浓盐及分子量测定等),2.,试验原理,凝胶过滤层析法分离血红蛋白专家讲座,第5页,本试验经过,sephadexG50,层析柱,以蒸馏水为流动相,分离血红蛋

4、白(红色,分子量约,64,500,)与二硝基氟苯,-,鱼精蛋白(鱼精蛋白与二硝基氟苯结合后为黄色,分子量为,2,000-12,000,)混合物,从颜色不一样即可观察到血红蛋白洗脱较快,鱼精蛋白洗脱较慢。,2.,试验原理,凝胶过滤层析法分离血红蛋白专家讲座,第6页,3.,试验用具,试剂,(,1,)交联葡聚糖,G-50,(,2,)二硝基氟苯,(,3,)鱼精蛋白,(,4,),0.9%NaCl,(,5,),10%,碳酸氢钠,(,6,),95%,乙醇,仪器,(,1,)锥形瓶,(,2,)层析柱(,1cm25cm,玻璃柱)(,3,)铁架台,(,4,)弹簧夹,(,5,)细橡皮管(长,2cm,)(,6,)量筒,

5、7,)小烧杯,100ml,凝胶过滤层析法分离血红蛋白专家讲座,第7页,4.,操作步骤,1、凝胶准备:,取sephadex G-50 3g置于锥形瓶中,加蒸馏水90ml,于沸水浴中煮沸2小时(或放于水中浸泡6小时),充分膨胀凝胶。取出,冷却至室温后备用。,2、装柱:,关闭下口,向玻璃柱内加入蒸馏水达柱总长度约1/3处,把膨胀好糊状凝胶边搅拌、边自柱顶端沿管内壁缓缓加入柱中至柱顶部,待柱底部凝胶沉积至1-2cm时,开启柱底部出水口,并控制一定流速,使柱中凝胶一直处于溶液中。再慢慢地继续加入凝胶,直至凝胶体积至柱顶2.5cm左右,最好一次连续装完,若分次装入,需用玻璃棒轻轻搅动柱床上层凝胶,以免

6、出现界面。装柱长度最少8cm。最终放入略小于层析柱内径圆形小滤纸片,以防未来加样时凝胶被冲起。,凝胶过滤层析法分离血红蛋白专家讲座,第8页,4.,操作步骤,3、平衡:,用10ml左右蒸馏水流洗整个柱床。操作过程中严防出现气泡和分层,如床面不平,可用玻璃棒轻轻搅动表面,是凝胶重新自然沉降。整个过程中勿使液面低于床面,以免气体进入,使柱床干裂。,4、加样:,待柱床面以下蒸馏水流出,且刚好与床面相切时(切不可使床面完全暴露于空气中),关闭下口。用滴管取血红蛋白及鱼精蛋白混合液(血红蛋白稀释液3滴加DNP-鱼精蛋白溶液3滴),十分小心地并缓缓沿内壁加入(注意切勿破坏柱床面),打开柱底部出口,使样品进入

7、床内,至床面重新露出时,先加入少许蒸馏水,冲洗床面1-2次,然后再加入足量蒸馏水。,凝胶过滤层析法分离血红蛋白专家讲座,第9页,4.,操作步骤,5、洗脱和标定:,用试管搜集洗脱液体。调整流速使液体均匀流出(约1ml/min),同时统计以下数据:起始、红始、红终、黄始、黄终、终止(1.5倍柱体积)。观察血红蛋白与鱼精蛋白洗脱次序并统计试验现象(注意洗脱过程中随时添加蒸馏水,以免干柱)。,6、清洗:,待全部色带流出层析柱后,继续加入蒸馏水并加紧流速,清洗层析柱至凝胶洁净呈白色为止。,7、凝胶回收:,将清洗洁净sephadex G-50凝胶回收至回收容器中。,8、结果处理:,观察统计试验现象并加以分

8、析。,凝胶过滤层析法分离血红蛋白专家讲座,第10页,5.,注意事项,胶膨胀必须彻底,不然会影响层析均一性,甚至有使柱破裂危险。,装柱前加入,1cm,洗脱液,检验柱子。,凝胶装柱过程中严防出现气泡和分层,要使液面高于床面,以免气体进入柱床,影响液体在柱内流动与最终血红蛋白及核黄素混合物质分离效果。,凝胶装柱要一次完成。装凝胶烧杯不能清洗。(看似脏东西都是凝胶)。,柱中凝胶一定要浸没在洗脱液中。,加样一定要极其小心而迟缓,以免凝胶被冲起,造成层析结果不佳。上样时滴管末端一定要靠近凝胶柱表面,(1cm),、沿柱内壁缓缓滴加,不能冲击凝胶柱表面。样品上柱后应在凝胶柱表面形成一层薄液层。,搜集要及时,不

9、能等红褐色物质流出之后再搜集,(13,滴,/,管,),。流速不可太快,(,约,10,滴,/min),。,层析前及层析中要绝对防止干柱现象。一直保持柱内液面高于凝胶表面,不然水分挥发,凝胶变干。也要预防液体流干,使凝胶混入大量气泡,影响液体在柱内流动,造成分离效果变坏,不得不重新装柱。,洗脱完成后凝胶要回收,勿丢弃。,凝胶过滤层析法分离血红蛋白专家讲座,第11页,6,.,思索题,在向凝胶柱加入样品时,为何必须保持胶面平整?上样体积为何不能太大?,请解释为何在洗脱样品时,流速不能太快或者太慢?,某样品中含有,1 mg A,蛋白(,Mr 10,000Da,),,1 mg B,蛋白(,Mr 30,000Da,),,4 mg C,蛋白(,Mr 60,000Da,),,1 mg D,蛋白(,Mr 90,000Da,),,1 mg E,蛋白(,Mr 120,000Da,),采取,Sephadex G75,(排阻上下限为,3,000-70,000Da,)凝胶柱层析,请指出各蛋白洗脱次序。,凝胶过滤层析法分离血红蛋白专家讲座,第12页,

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