资源描述
一.医学形态学实验平台
该实验教学平台涵盖了四个形态学科,即人体解剖学、人体组织胚胎学、人体病理解剖学、人体寄生虫学;开设了5门实验课,每门实验课的概况如下:。
1.人体解剖学实验课(130学时)
在国内绝大多数医学院校多年来采用的方式是在第一学年开设系统解剖学,在第三学年开设局部解剖学,两门课内容有重复,而又相隔时间长,尸体资源和教师人力投入大。同时教学方法简单,教学手段落后,严重制约了学生自学能力和动手能力的发挥,与现代医学科学的发展和高等医学教育的发展不相适应。为此,我们将系统解剖学、局部解剖学和断层解剖学实验课融合起来,开出了以尸体解剖操作和观察为主的人体解剖学实验课程,具体作法是:①删除重复的内容,增加原来缺乏的断层解剖学知识,为学生今后走向临床打下基础;②对某些相互联系而又有重复的章节,打破原有的界限,重新组合,使教学思路更为清晰;③对于学生易于理解又能通过尸体解剖观察到的结构,就不在课堂上讲授,而是放在实验课上让学生通过实地尸体解剖来自学。通过以上方法,将原有的系统解剖学、局部解剖学和断层解剖学内容相互穿插,有机融合,使学生既有系统解剖学的概念,又掌握了各器官的形态、位置、毗邻关系、血液供应、淋巴回流、神经支配及断层解剖学知识,为后续课程打下坚实的解剖学基础。
实验教学模块和教学内容:
顺序
实验模块
学时
实验项目
实验内容
1
大体解剖学
80
骨学
躯干骨的形态结构
上肢骨、下肢骨的形态结构
颅骨的形态结构
关节学
躯干骨、颅骨连结
上、下肢骨连结
下肢
股前内侧区肌肉、血管、神经解剖操作
小腿前区、足背肌肉、血管、神经解剖操作
臀区、股后区、腘窝、小腿后面及足底肌肉、
血管、神经解剖操作
上肢
胸前区、腋区肌肉、血管、神经解剖操作
臂前及肘前区、前臂前区及手掌肌肉、血管、神经解剖操作
背区及肩胛区肌肉、血管、神经解剖操作
臂、前臂后区、手背肌肉、血管、神经解剖操作
头颈
面浅层、面深层肌肉、血管、神经解剖操作
颈前外侧区肌肉、血管、神经、甲状腺、喉和气管解剖操作
颈根部解剖肌肉、血管、神经解剖操作
胸部
胸壁的肌肉、血管、神经解剖操作
肺、胸膜解剖操作
纵隔内血管、神经解剖操作
心包、心脏解剖操作
腹部
腹前外侧壁肌肉、血管、神经解剖操作
腹膜腔探查
结肠上区主要脏器(胃、十二指肠、肝、脾、胰)和血管、神经解剖操作
结肠下区主要脏器(空、回肠、大肠)和血管、神经解剖操作
腹膜后隙主要脏器(肾、肾上腺、输尿管)和血管、神经解剖操作解剖
盆和会阴
男、女生殖系统解剖
盆部和会阴肌肉、血管、神经解剖操作
2
神经解剖学
20
感官
视器各部形态观察
前庭蜗器各部形态观察
中枢神经
脊髓外形和内部结构观察
脑干外形和内部结构观察
小脑、间脑外形和内部结构观察
端脑外形和内部结构观察
感觉和运动传导通路
脑膜、脑血管解剖和观察
周围神经
脑神经解剖观察
内脏神经解剖观察
3
断层解剖
30
头颈部
颅部横、矢和冠状切面和 CT、MRI图像观察
下颌关节、颈部切面和 CT、MRI图像观察
胸部
胸部(纵隔、肺)切面和 CT、MRI图像观察
腹部
腹部(肝、胃、肠、腹部大血管)切面和 CT、MRI图像观察
盆部
男、女性盆部切面和 CT、MRI图像观察
脊柱
脊柱、椎管和脊髓切面和 CT、MRI图像观察
四肢
上、下肢切面和 CT、MRI图像观察
综合设计实验占总实验学时:40%
实验更新率:42%
断层解剖科研成果转化为本学生实验的内容
颅部横、矢和冠状切面,下颌关节、颈部切面,胸部(纵隔、肺)切面,腹部(肝、胃、肠、腹部大血管)切面,男、女性盆部切面,脊柱、椎管和脊髓切面,上、下肢切面。
授课实验室:人体解剖学和断层解剖学实验室
2.人体组织胚胎学实验课(45学时)
本实验课主要包括两个方面的实验内容,一是通过光镜观察、电镜示教、多媒体课件和标本模型的观察,使学生识别各种细胞、组织及主要器官的光镜结构和电镜结构,对人体胚胎早期发生和主要器官发生有一定的感性认识,并能用绘图、语言、文字进行正确描述。二是学生自己动手,收集和制作标本、观察标本、分析结果、撰写实验报告,如血涂片的制作、染色、显微镜观察、血相分析;肥大细胞的采集、染色、观察和分析;小鼠精子的采集、活精子观察和异常精子的分析等。实验结束后集体讨论、自由发言。与改革前相比,减少了学生被动性观察性实验,增加了学生自主性、综合性、操作性实验,启迪了学生的创新意识,增强了学生主动摄取的求知欲望,提高了学生的动手能力。
实验教学模块和教学内容:
顺序
实验项目
学时
实验内容
1
绪论
上皮组织
4
1.显微镜的使用与保护,2.切片制作介绍,
3.标本观察:单层立方上皮 单层柱状上皮(画图) 复层扁平上皮 变移上皮 假复层纤毛柱状上皮腺上皮,4.电镜照片,5.幻灯示教
2
结缔组织
6
1. 标本观察:疏松结缔组织铺片(画图) 疏松结缔组织切片 致密结缔组织 透明软骨、骨、骨发生切片、血涂片(画图)、骨髓涂片,2. 电镜照片3. 幻灯示教
4. 实验操作 :肥大细胞标本制作与观察
3
肌肉组织
神经组织
8
1.标本观察:骨骼肌(画图)、心肌,平滑肌多极神经元、有髓神经纤维、触觉小体、环层小体、运动终板,2. 电镜照片,3. 幻灯示教。
4.实验操作:血脑屏障的制作与观察
4
皮肤、
循环、
免疫、
内分泌
6
1. 标本观察:手指皮、头皮 中动脉(画图)、中静脉 大动脉、大静脉 心脏 淋巴结 扁桃体 脾 胸腺甲状腺 肾上腺(画图) 脑垂体;2. 电镜照片3. 幻灯示教
5
消化管,消化腺
呼吸、
泌尿、
眼、耳
8
1. 标本观察:舌 食管 胃(画图)小肠 结肠 阑尾 舌下腺 腮腺 颌下腺 肝(画图) 胰 气管、肺 肾(画图) 、输尿管 膀胱 眼球、内耳,2. 电镜照片,3. 幻灯示教
6
男性生殖系统
女性生殖系统
6
1.标本观察: 睾丸(画图)、附睾、 输精管 前列腺,
2.电镜照片,幻灯示教
3.实验操作:精子涂片制作与观察,阴道涂片制作与性周期观察.
7
胚胎总论
3
模型观察:胚胎早期发育,胎膜及胎盘
8
胚胎各论
6
模型观察:颜面部、消化、呼吸、泌尿、生殖、循环系统的发生
综合性、设计性实验42%
实验更新率38%
授课实验室:医学形态学实验室
3.人体病理解剖学实验课(72学时)
目的在于利用病理实物标本、尸体解剖和临床病理讨论会的形式加深学生对病理学理论的理解。学生通过对病变器官、组织医学形态学的观察,联系其机能代谢的变化以及临床症状、体征,掌握基本病理变化的肉眼及光镜观察及描述方法。了解常见病的电镜及免疫组织化学观察。在教师的指导下见习或通过观看录像了解尸体解剖的一般过程,了解临床病理讨论会的方式和内容。为了培养学生的独立思考、观察问题、分析问题和解决问题的能力,采用以临床问题为导向的学习方法,培养学生学习的主动性,创造性和团队合作精神。通过病理学新方法法、新技术的学习,使学生了解本学科的发展动态及趋势,以适应未来医学发展的需要。
实验教学模块和教学内容:
顺序
模块
实验项目
学时
实验内容
1
导论
病理学实验序论
4
介绍病理学的研究方法及学习方法,
大体标本观察和显微镜下组织观察方法
显微镜及多媒体系统的使用及其注意事项。
分组参观附属医院病理科
2
总论
适应和损伤
4
大体标本:心脏、肾脏萎缩及肥大,肝脂肪变等。切片:细胞水肿、肝脂肪变性、肾小管玻璃样变、脾血管玻璃样变
修复
4
教学录像:损伤和修复
大体标本:凝固性坏死,液化性坏死等
切片:坏死、肉芽组织
局部血液循环障碍
4
大体标本:肝淤血、肺淤血、混合血栓、肾梗死、肺梗死等
切片:肝淤血、肺淤血、混合血栓、血栓机化、肾梗死、肺梗死
炎症
4
大体标本:白喉、痢疾、阑尾炎、心肌脓肿、脑脓肿、绒毛心
教学录像:炎症
切片:直肠息肉(示炎细胞)、急性阑尾炎、会厌白喉、心肌脓肿、异物性肉芽肿
肿瘤
6
大体标本:肿瘤大体形态及生长方式,肿瘤类型
切片:纤维肉瘤、子宫平滑肌瘤、乳头状瘤、鳞癌、胃腺癌、淋巴结转移腺癌、骨肉瘤、神经鞘瘤、骨巨细胞瘤、恶性黑色素瘤、畸胎瘤
3
各论
心血管系统
4
大体标本:动脉粥样硬化,高血压、风湿病等
切片:风湿性心内膜炎、主动脉粥样硬化、冠状动脉粥样硬化及心肌梗死
尸体解剖教学录像或尸体解剖观摩
呼吸系统
4
大体标本:大叶性肺炎、小叶性肺炎、肺气肿、矽肺
教学录像:呼吸系统
切片:大叶性肺炎、小叶性肺炎、肺气肿、矽肺、肺燕麦细胞癌
3
消化系统
4
大体标本:胃溃疡、病毒性肝炎、肝硬化、肝癌。
教学录像:消化系统
切片:慢性萎缩性胃炎、胃溃疡、病毒性肝炎、肝硬化、肝癌
泌尿系统
4
大体标本:肾小球肾炎、肾盂肾炎、肾细胞癌等
教学录像:泌尿系统
切片:急性肾小球肾炎、新月体性肾小球肾炎、慢性肾小球肾炎、肾盂肾炎、肾细胞癌
生殖系统
4
大体标本:子宫颈癌、葡萄胎、绒癌,卵巢肿瘤
教学录像:生殖系统
切片:子宫颈原位癌、葡萄胎、绒毛膜上皮癌等
内分泌及淋巴造血
4
大体标本:甲状腺肿、甲状腺腺瘤、甲状腺癌、淋巴瘤,白血病
教学录像:内分泌及淋巴造血
切片:甲状腺肿、甲状腺腺瘤、甲状腺乳头状癌、霍奇金淋巴瘤、非霍奇金淋巴瘤
传染病
8
大体标本:肺结核、畅结核、流脑、细菌型痢疾、阿米巴痢疾、梅毒等
教学录像:传染病
切片:肺结核、淋巴结结核、流脑、菌痢、阿米巴痢疾、血吸虫病
4
临床病理讨 论
局部血液循环障碍
2
肺动脉血栓栓塞
炎症
2
脓肿并脓毒血症
肿瘤
2
骨肉瘤
心血管系统
2
心肌梗死
消化系统
2
肝硬化
泌尿系统
2
肾小球肾炎
生殖系统
2
宫颈癌,绒癌
综合设计创新性实验占总实验学时20%
实验更新率37%
授课实验室:医学形态学教学实验室
4.人体寄生虫学实验课(36学时)
研究病原寄生虫及与医学有关节肢动物的形态结构、生存及发生发展规律、阐明病原寄生虫及医学节肢动物与人体及环境之间的对立统一关系,阐述寄生虫病发生、流行、控制与防治的基本理论和原则,从而为防治寄生虫病和控制医学节肢动物提供科学理论依据。其主要任务是使学生通过学习和实践,掌握人体寄生虫学的基本理论、基本知识和基本技能,充实、完善和提高医学应有的整体业务素质,为临床医学、预防医学、护理医学奠定必要的坚实基础。
实验教学模块和教学内容:
顺序
实验项目
学时
实验内容
1
总论
2
示教:寄生虫学各纲代表;显微镜及标本的使用
2
蛔虫、鞭虫、钩虫、蛲虫、丝虫、旋毛虫
6
示教:寄生虫学形态、生活史;教学录象片;学生自己观察标本
3
华枝睾吸虫、布氏姜片吸虫、卫氏并殖吸虫、日本血吸虫
6
示教:寄生虫学形态、生活史;教学录象片;学生自己观察标本
4
猪肉绦虫、牛肉绦虫、细粒棘球绦虫
2
示教:寄生虫学形态、生活史;教学录象片;学生自己观察标本
5
鞭毛虫、阿米巴、疟原虫、机会致病原虫
8
示教:寄生虫学形态、生活史;教学录象片;学生自己观察标本;
6
蚊、蝇、虱、蚤、白蛉、蜱、螨
8
示教:寄生虫学形态、生活史;教学录象片;学生自己观察标本
7
学生自我粪检、蠕形螨自查、蛲虫、蛔虫感染调查
4
寄生虫实验技术教学录象片;学生自我粪检、蠕形螨自查、蛲虫、蛔虫感染调查
综合性、设计性实验所占比例24%
实验课更新率30%
授课实验室:医学形态学实验室
5.医学形态学综合实验课(36 学时)
《形态实验学》是以组织学和病理解剖学为主的实验研究的方法,学习人体正常与异常形态之间演变过程的一门综合课程,把一些验证性、演示性的实验内容部分改变为设计、操作性实验项目。通过这种教学方法不仅增加了学生的学习兴趣,其重要性在于学生动手操作的过程中,激发了他们科学研究的热情,培养了他们观察分析能力和独立思考。《形态实验学》课程在教学思想、内容范围、结构体系和写作特点上都有较大的创新。突出了理论联系实际;提倡动手操作、自主设计的教学方法,逐渐建立新的实验教学模式。本课程通过教师课堂讲授和辅导设计实施教学;学生通过自己做动物实验、实验观察和实验记录、撰写论文,小组论文答辩和讨论等方法学习这门课程。
实验教学模块和教学内容:
顺序
实验名称
学时
实验内容
1
绪论
正常与异常组织观察
2
1.医学形态学概念、形态实验学概念
2.切片机使用和动物处理,
3.如何撰写实验观察报告
2
组织切片和染色技术
4
1.石蜡切片、冷冻切片,
2.HE染色、酶组织化学、免疫组化、免疫荧光、核酸原位杂交以及原位PCR技术
3
纤维性骨痂形成的观察实验
6
1.麻醉、无菌操作、断肢、缝合、饲养;
2.大体观察:骨折断端处组织结构、出血与愈合;
3.镜下观察:骨内、外膜成纤维细胞增生、新生毛细血管、纤维化和纤维性骨痂。
4
组织胺诱导急性胃溃疡和诱导血液嗜酸性细胞形态与功能的观察
4
1.麻醉小鼠(20%乌拉坦腹腔或乙醚吸入);2.1%磷酸组织胺溶液(45mg/kg)注射;3.手术暴露胃粘膜;4.观察胃粘膜的变化和运动切片;5.取血、涂片染色,观察嗜酸性粒细胞数量。
5
肾脏缺血模型的制备和形态及功能的改变
4
1.肾动脉狭窄肾缺血模型制备;2.肾脏石蜡切片,HE染色,镜下观察描述;3.大体肾脏组织结构观察描述; 4.生物信号实验仪记录动物尿量的改变
6
正常、创伤修复,组织增生时的皮肤医学形态学观察
4
1.实验动物小鼠;2. 后肢股外侧皮肤致皮下创伤;3. 石蜡切片、HE染色;4.术后不同时间点大体、镜下分别观察皮肤创伤后切口表面,动物生活状态并做记录。
7
药物对睾丸精子活动的影响
4
1.小鼠麻醉;2.睾丸和附睾手术;3.观察正常,精子头、体和尾部的摆动规律;4.观察避孕药对精子运动的影响。
8
上皮细胞纤毛运动的观察
4
1.蟾蜍,取上颚粘膜或颊粘膜;2. 固定切片,镜下观察假复层柱状纤毛上皮运动情况和纤毛细胞游离面纤毛的运动。
9
鸡胚发育的动态观察
4
1.受精鸡蛋,CO2温箱孵育;2.检测出胚部位;3.胚盘固定、脱水、包埋,切片和染色;3.镜下观察。
综合设计型实验100%
实验更新率80%
授课实验室:医学形态学实验室
二.医学机能学实验平台
七年制教学计划108学时
本课程将有关一个器官(如心脏)或系统(如循环系统)的生理学、病理生理学、药理学和医学心理学的实验教学内容有机地结合起来,形成一个包括该器官(或系统)生理学特征、病理生理学改变、药物治疗和心理干预在内的、系统化的、整体化的综合实验。再将若干系统的综合实验有机地统一成为一门独立的实验学课程。实验课不再是各科理论课教学的附属内容,而成为一门新的独立课程“医学机能学实验课程”。
内容设置的指导思想是:保证基本实验技能训练和基础实验,减少单纯验证性实验,增加综合性、设计性实验,使学生从整体上初步了解进行医学机能学科学研究的思路和方法。以训练基本实验技能为基础,以系统综合实验为核心,以学生实验设计为重要考核内容,通过病例分析,培养学生正确的临床思维能力。
实验教学模块与内容:
顺序
实验类型
学时
实验内容
1
实验导论
3
任务、目标、意义和实验报告书写、生物学实验室规则、实验室安全及动物保护
2
机能学实验基本技能训练
7
实验动物的基本操作技术与训练;常用仪器的使用方法
3
生理学基本实验
15
神经干动作电位、不应期和传导速度;骨骼肌单收缩、复合收缩和强直收缩;蛙静脉窦、心房、心室收缩观察和期前收缩、代偿间歇;动脉血压调节;减压神经放电;膈肌放电;呼吸功能测定;影响胆汁排放的因素;动物尿量观察;去大脑僵直、去小脑观察;视野和盲点;耳蜗微音器电位。
4
病理生理学基本实验
10
低气压致病,淤血性水肿,实验型氨中毒,一氧化碳中毒
5
药理学基本实验
15
酚磺酞药动学参数和戊巴比妥钠半数有效量的测定、药物镇痛作用、苯海拉明的拮抗参数
6
医学心理学实验
10
情绪与皮肤电反应测试、EPQ测验和SPM测验
7
综合、设计性实验
50
生理和药理因素对离体蛙心功能的影响、生理及病理因素对呼吸运动的影响、哺乳类动物血流动力学的检测及其影响、影响尿生成的因素、高血钾症及代谢性酸中毒对心血管活动的影响、微循环障碍与药物作用、心血管活动的神经调节和药物影响。
8
创新研究型实验
14
学生自主设计实验、宣讲、讲评、择优实验操作,提交论文。
9
病例讨论与录像
10
10
现代新方法技术方法介绍与演示
10
现代生物信号跨膜转导与生物信号记录与处理、心血管药理新进展等。
综合性、设计性、创新性实验所占比例:62%
实验课更新率:50%
授课实验室:医学机能学实验室
三.细胞与分子医学实验平台
该实验平台涵盖了生物化学与分子生物学、医学免疫学、医学微生物学、医学遗传学、细胞生物学等5学科,开设了5个学科的基础实验课和一门细胞与分子医学综合实验课,各实验课的概况如下:
1.生物化学实验课与分子生物学实验课(174学时)
以理论教学为基础,通过实验验证理论知识,加强对理论知识的理解,增加学习兴趣;以培养学生能力为核心,建立基本实验技能训练、综合分析实验、研究创新实验等分层次的实验教学体系,本科学生注重基本实验技能和综合分析能力的培养;7年制、8年制学生增加新实验技术与方法、科研创新实验。以培养学生科研素质为目标,建立导师制实验教学体系。学生通过申请《山东大学大学生科技创新基金》项目,进入导师的科研项目研究小组,在导师的指导下,进行创新性研究。课程体系分为生物化学实验和分子生物学实验两部分。
实验教学模块和教学内容:
生物化学实验
顺序
实验类型
实验名称
学时
实验内容
1
导论
2
实验准备,熟悉实验室规则等
复习基本操作
2
基本技能实验一
分光光度技术测定蛋白质含量
16
实验理论:分光光度技术的基本原理,仪器结构,常见的分光光度计
紫外分光光度法测定蛋白质含量
双缩脲法测定蛋白质含量
Lowry法测定蛋白质含量
Bradford法测定蛋白质含量
3
基本技能实验二
层析技术
16
实验理论:吸附层析、离子交换层析、凝胶层析、亲和层析的基本原理
葡聚糖凝胶过滤柱层析分离血红蛋白和二硝基氟苯-胰糜蛋白酶
离子交换层析分离混合氨基酸
4
基本技能实验三
电泳技术
16
实验理论:醋酸纤维素薄膜电泳、琼脂糖凝胶电泳、聚丙烯酰胺凝胶电泳、SDS-聚丙烯酰胺凝胶、等点聚焦电泳、单向定量免疫电泳的基本原理
醋酸纤维素薄膜电泳分离血清蛋白质
琼脂糖凝胶电泳分离血浆脂蛋白
聚丙烯酰胺凝胶电泳分离血清乳酸脱氢同工酶
SDS-聚丙烯酰胺凝胶垂直板电泳测定蛋白质相对分子量
等电聚焦电泳测定蛋白质的等电点
单向定量免疫电泳
5
综合分析实验
蛋白质提取分离实验
8
实验理论:盐析法
血清g-球蛋白的分离纯化与鉴定
6
综合分析实验
酶学实验
16
酶活性测定方法
酶的提取及比活性测定
蔗糖酶的专一性
pH值对酶促反应速度的影响
温度对酶促反应速度的影响
底物浓度对酶促反应速度的影响
抑制剂对酶促反应速度的影响
7
综合分析实验
糖代谢实验
8
胰岛素对血糖含量的影响
邻甲苯胺法测定血糖含量
糖酵解中间产物的鉴定
8
综合分析实验
氨基酸代谢实验
4
血清中丙氨酸转氨酶活性的测定
9
综合分析实验
脂代谢实验
8
血清脂类薄层层析
血清总胆固醇酶法测定
血清三酰甘油含量测定
血清高密度脂蛋白酶法测定
血清过氧化脂质含量测定
分子生物学实验
顺序
实验类型
实验名称
学时
实验内容
1
导论
2
实验室安全,有毒物质使用规则、微生物处理等
微量移液器的使用
2
基本技能实验
离心技术
8
实验理论:离心技术的基本原理,制备型超速离心的分离方法
核糖核酸的提取与测定
可见分光光度法测定核糖核酸含量
脱氧核糖核酸的提取
可见分光光度法测定脱氧核糖核酸含量
3
综合分析实验
真核细胞DNA的制备与检测
8
细胞培养
酚法提取基因组DNA
DNA定量与琼脂糖凝胶电泳检测
4
综合分析实验
真核细胞RNA的制备与检测
8
细胞培养
Trizol法提取RNA
RNA定量与电泳检测
5
综合分析实验
原核细胞DNA的提取与鉴定
16
大肠杆菌感受态细胞的制备及转化
制备克隆菌
质粒DNA的提取
6
综合分析实验
基因重组实验
16
DNA的限制性酶切反应
目的DNA片段回收
DNA重组实验以及重组子的兰白斑筛选
7
研究性实验
PCR法扩增目的基因
8
模板制备(利用上述阳性重组子)
PCR反应
PCR产物鉴定
8
研究性实验
RT-PCR
8
提取总RNA(利用上述总RNA提取物)
以mRNA为模板反转录得到cDNA
PCR法扩增DNA
PCR产物鉴定
9
研究性实验
Western blot
16
提取总蛋白
SDS-PAGE凝胶电泳分离蛋白质
电转移
免疫杂交反应
综合设计创新性实验占总实验学时68%
实验更新率70%
科研成果转化为学生实验的内容
SDS-聚丙烯酰胺凝胶垂直板电泳测定蛋白质相对分子量;真核细胞RNA的制备与检测;基因重组实验;PCR法扩增目的基因;RT-PCR;western blot。
授课实验室:生物化学与分子生物学实验室
2.医学免疫学实验课(40学时)
根据“多轨制教学”教学改革理念,从培养学生主动学习能力和创新能力出发,在实验安排是增加了学生研究性实验,让学生提出研究方案,设计实验,在进行免疫标记实验时,让同学利用网络资源查阅资料,进行答辩;同时增加综合型式样,提高学生的综合实验技能. 综合设计创新性实验所占总实验学时55%, 科研转化为学生实验的内容: 流式细胞术,淋巴细胞分离技术,抗体制备-多克隆、单克隆抗体和基因工程抗体。
实验教学模块和教学内容:
顺序
实验类型
实验名称
学时
实验内容
1
研究性(抗体的制备)
抗体的制备
4
实验理论:介绍抗原免疫制备抗体的方法,免疫常用的途径、免疫前如何准备抗原等
制备抗原
皮下免疫小鼠
采集血清
用ELISA法检测抗体(见后)
布置研究性课题的要求
2
基本实验
沉淀反应
4
单项扩散实验
双向扩散实验
免疫电泳
3
基本实验
凝集反应
4
试管凝集反应
胶乳凝集抑制实验
ABO血型鉴定
4
研究性实验
免疫标记技术
4
实验理论:免疫标记技术的原理和常用方法
ELISA
免疫荧光技术
免疫组织化学
流式细胞术
5
综合实验
抗体形成实验(是第一次实验的连续)
4
正常小鼠抗体形成细胞的数量
抗原免疫后小鼠抗体形成细胞的数量
6
基本实验
大吞噬试验
4
巨噬细胞吞噬鸡红细胞能力的测定
7
综合实验(细胞免疫功能检测)
淋巴细胞增殖
淋巴细胞分离技术
3H掺入法检测T细胞增殖
CCK8 法检测T细胞增殖
8
综合实验(细胞免疫)
E-花环形成实验
课题答辩
4
脾细胞的分离技术
E-花环形成实验
考试
综合设计创新性实验所占总实验学时55%
实验课更新率38%
科研转化为学生实验的内容
流式细胞术,淋巴细胞分离技术,抗体制备-多克隆、单克隆抗体和基因工程抗体
授课平台:医学免疫学与微生物学教学实验室
3.医学微生物学实验课(40学时)
通过对病原微生物的感性认识,培养基本实验技能,熟悉临床微生物检查的技术流程,了解医学微生物学的发展前沿,激发学生对医学微生物的兴趣和创造性。医学形态学观察、实验操作和实验分析是课程的主体,通过眼、手、脑的使用锻炼学生的判断能力、动手能力、分析能力。综合实验为主使内容更完整、系统,自主实验设计促进学生与课程互动。教学采用理论讲解、操作示教、多媒体视频、图库展示、操作正误评判、操作考试、自主设计、自讲等方式。
实验教学模块和教学内容:
顺序
实验类型
实验名称
学时
实验内容
1
基本
医学微生物学基本试验操作技术
4
微生物的染色法
显微镜的使用(油镜的使用)
常用培养基的制备
细菌的接种技术
细菌的基本形态及特殊结构观察
2
基本实验
细菌学实验
8
细菌的分布
细菌菌落计数
物理因素、化学消毒剂对细菌的影响
细菌对抗菌药物的敏感实验
药物的体外抗菌实验
药物的微生物学检查
细菌变异现象观察
3
基本实验
病毒学实验
2
病毒的形态观察
病毒的培养方法及CPE观察
红细胞凝集试验及凝集抑制试验
4
基本实验
真菌学实验
1
真菌的形态及菌落观察
真菌的培养
浅部真菌标本检查
深部真菌形态观察及染色
5
基本实验
特殊微生物实验
1
支原体、立克次体、衣原体、螺旋体,放线菌形态观察
支原体菌落和衣原体包涵体观察
6
综合分析实验
常见细菌的微生物学检查
8
化脓性细菌的分离鉴定
肠道致病菌的微生物学检查
非常规细菌培养和鉴定(厌氧菌、L型细菌)
分枝杆菌的形态观察、分离与鉴定
7
综合分析实验
病毒的微生物学检查
4
病毒的微生物学检查(实验理论:医学形态学、分子生物学、血清学检查法)
病毒的细胞培养及病毒生长情况观察
病毒核酸提取
病毒感染的免疫学检测
8
研究性实验
实验设计
8
学生自主实验设计:
学生分组提出实验思路
教师指导论证可行性
组内分工并准备实验材料
分组实施实验
课题讨论实验汇报和结果分析
9
研究性实验
医学微生物学前沿技术讲座
4
荧光定量PCR在医学微生物学方面的应用
基因芯片技术在医学微生物学方面的应用
综合性、研究性实验项目:65%
实验课更新率:43%
授课实验室: 医学免疫学与微生物学实验室
4.医学遗传学实验课(90 学时)
通过实验教学巩固学生的理论知识,培养基本实验技能,了解医学遗传学的发展动态及常用的方法,激发学生的兴趣和创造性,更好的掌握理论知识。此外,从基因水平上较为系统地了解疾病的病因、发病机制、病变过程;并应用人类遗传学的理论和方法来研究这些遗传病从亲代传至子代的特点和规律、起源和发生及其与临床医学的关系(包括诊断、治疗和预防),为今后更好的从事临床医学实践和科学研究奠定坚实的基础。
实验教学模块和教学内容:
顺序
实验类型
实验名称
学时
实验内容
1
基本技能实验
遗传病家系分析及再发风险估计
3
绘制家系图
判断遗传方式
再发风险的估计
2
基本技能实验
人类遗传性状分析
3
遗传性状基因型与表现型的关系
3
基本技能实验
核酸提取及检测
9
全血细胞DNA的快速提取
全血细胞及组织RNA的提取
电泳法及分光光度计法核酸浓度及纯度测定
4
综合分析实验
基因频率分析实验
10
聚合酶链反应(PCR)
限制性片断长度多态分析
变性聚丙烯酰胺凝胶电泳分型短串连重复序列(STR)
5
综合分析实验
核酸分子杂交
18
基因组DNA的限制性内切酶酶解
琼脂糖凝胶电泳分离酶解DNA片断
Southern印迹
Northern印迹
6
综合分析实验
中期染色体制备
18
人类外周血淋巴细胞培养
人类外周血淋巴细胞染色体制备
人类骨髓细胞染色体标本制备
绒毛细胞染色体标本制备
羊水细胞培养及染色体标本制备
7
综合分析实验
染色体核型分析
6
人类染色体G显带
正常人类染色体G带核型分析
8
综合分析实验
观察人类染色体畸变
6
人类染色体畸变与染色体病
姊妹染色单体交换显示方法
9
研究性实验
染色体检查方法
8
人类高分辨染色体制备技术
染色体脆性部位检测
人类X染色体迟复制制备技术
10
研究性实验
基因突变分析
9
单核苷酸多态位点(SNP)的分型
SNP与疾病相关性的研究
单链构象多态性(SSCP)检测突变
综合设计创新性实验占总实验学时60%
实验更新率40%
科研成果转化为学生实验的内容
变性聚丙烯酰胺凝胶电泳分型短串连重复序列;单核苷酸多态位点(SNP)的分型;SNP与疾病相关性的研究;单链构象多态性(SSCP)检测突变
授课平台
医学遗传学与细胞生物学基础教学实验室
5.细胞生物学实验课(18学时)
本实验课共包括细胞的形态结构、细胞化学、细胞生理、细胞增殖、染色质与染色体和细胞工程六个方面的内容。通过光镜观察、电镜示教和多媒体课件掌握细胞的微细结构与功能;通过细胞各种制片、生物绘图、显微测量、细胞化学染色以及细胞生理活动观察来掌握细胞生物学基本实验方法;通过学生动手操作,如测量细胞直径、死活细胞鉴别和细胞存活率计算、Janus Green法活体显示细胞内线粒体、甲基绿-派洛咛染色和吖啶橙荧光染色显示细胞内DNA与RNA、Gomori法显示巨噬细胞内酸性磷酸酶、苯酚品红染色显示植物细胞压片染色体、Giemsa染色分析人口腔粘膜上皮细胞X染色质以及黑藻细胞胞质环流观察等训练学生基本实验技能,培养学生的动手能力和观察分析问题、解决问题的能力,并通过示教,如培养细胞、Hela细胞PCC观察等以及播放细胞生理活动、克隆羊等录象,了解细胞生物学前沿技术,扩大学生的知识面,启迪学生创新意识和自主学习兴趣。
实验教学模块和教学内容:
顺序
实验类型
实验名称
学时
实验内容
1
基本技能实验
细胞的
结构
3
实验理论:细胞的显微结构、临时制片制作方法与生物绘图方法
观察细胞内高尔基体、线粒体、中心体、细胞骨架、细胞核及核仁等;制备人口腔粘膜上皮细胞Janus Green法显示活体线粒体
2
综合分析实验
细胞化学(一)
3
实验理论:细胞切片制备、细胞化学染色(糖、脂类、蛋白质和核酸)基本原理及方法
PAS反应(糖)、酸性、碱性固绿染色(蛋白)、Feulgen反应(DNA)以及甲基绿-派洛咛染色法(DNA、RNA)
甲基绿-派洛咛染色显示蟾蜍红细胞内DNA、RNA
3
综合分析实验
细胞化学(二)
2
实验理论:酶细胞化学、荧光细胞化学原理
Gomori法显示小鼠腹腔巨噬细胞酸性磷酸酶
吖啶橙荧光染色显示人口腔黏膜上皮细胞DNA、RNA
4
综合分析实验
细胞的生理活动
2
实验理论:胞质环流、细胞吞噬和
死活细胞鉴别原理
观察植物黑藻细胞内胞质环流
小鼠白细胞吞噬细菌
台盼蓝法鉴别死活酵母细胞
5
基本技能实验
细胞的显微测量
2
实验理论:细胞显微测量基本原理与方法
蛙的红细胞直径测量及计算、
蝾螈表皮细胞核直径测量及计算
6
基本技能训练
细胞的增殖
1.5
实验理论:细胞增殖的主要方式和细胞增殖周期各期的医学形态学特点
草履虫无丝分裂、动、植物细胞有丝分裂观察,肝癌细胞收缩环观察
洋葱根尖压片,苯品酚染色观察,细胞有丝分裂
7
综合分析实验
染色质与染色体
1.5
实验理论:X染色质标本制备原理;人染色体的基本形态特征
Giemsa染色观察分析人口腔粘膜上皮细胞X染色质
人染色体的基本形态观察
8
综合分析实验
细胞工程
1.5
实验理论:细胞工程概念及其用途、细胞培养、细胞融合及PCC原理、
培养细胞观察
鸡血细胞、培养细胞的融合观察
Hela细胞PCC观察
9
基本技能训练
细胞的超微结构
1.5
实验理论:细胞的超微结构与功能
多媒体讲解
综合设计创新性实验占总实验学时67%
实验更新率37%
科研成果转化为学生实验的内容
细胞骨架、收缩环、PAS反应、酸性、碱性蛋白显示、Feulgen反应、甲基绿-派洛咛染色、Gomori法显示酸性磷酸酶、吖啶橙荧光染色、死活细胞鉴别、细胞显微测量、培养细胞观察、细胞融合、X染色质等
授课平台
医学遗传学与细胞生物学实验室
7.分子医学综合实验课 (60 学时)
以遗传学-分子生物学-免疫学等现代生物医学技术为指导,从分子层面揭示疾病发生的机制,是解决危害我国人民健康重要疾病的诊断,治疗和预防关键策略,即分子医学是未来医学的发展方向,是培养新世纪高水平医学生的必经之路。据此,本中心临床医学专业七年制学生在第五年,即进入临床实习前,用5个月的时间回归基础医学,学习分子医学综合实验,然后,在校院两级大学生创新基金和带教老师科研基金的支持下,进入医学院所属研究所参与以分子医学技术为支撑的疾病机制研究。
实验教学模块和教学内容:
顺序
实验类型
实验名称
学时
实验内容
1
导论
2
现代分子生物学实验技术导论
2
基本训练实验
操作技能
2
微量移液器的使用
核酸、蛋白的提取与测定
分光光度法测定核酸、蛋白含量
3
综合分析实验
PCR技术调取目的基因及其检测
2
模板制备
PCR反应体系建立
PCR产物电泳鉴定
4
综合分析实验
质粒提取与检测
2
工程细菌(含有目的质粒)的培养
碱变性法提取质粒
质粒定量与电泳检测
5
综合分析实验
目的基因与载体质粒的连接
2
目的基因及载体质粒的酶切反应
酶切基因片段的纯化回收
连接体系的建立
6
综合分析实验
重组质粒的转化
2
大肠杆菌感受态细胞的制备
连接质粒的转化
重组子的兰白斑筛选
8
研究型实验
蛋白质组学核心技术(一)
3
蛋白质组学技术概论
总蛋白质提取
总蛋白质定量
等电聚焦蛋白分离—一维电泳
9
研究型实验
蛋白质组学核心技术(二)
3
胶条平衡、包埋
SDS-PAGE凝胶电泳分离蛋白质—二维电泳
固定染色
图象分析
综合设计创新性实验占总实验学时68%
实验更新率50%
科研成果转化为学生实验的内容
真核细胞及人体液的蛋白质双向电泳实验
授课平台
大学生开放创新实验室(医学分子实验中心)
四.临床基础实验教学平台
该平台包括诊断学专业实验室、手术学专业实验室和临床技能培训中心,主要开展临床基础实验教学,临床技能培训中心实验室任务为(1)完成医学类本专科和留学生的临床诊断技能培训,全面提高我校医学生临床基本素质;(2)承担临床青年教师、研究生的临床技能进阶培训,搞好临床教学改革;(3)开展先进的临床诊断技能培训理念与技术的推广应用,参与各级临床医师技能培训和考核。
1.诊断学实验课程(84 学时)
诊断学是研究诊断疾病的基本理论、基本技能和临床思维方法的学科。其内容主要包括:病史采集、体格检查、实验
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