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光控残余效应对马铃薯组培苗生长的影响.pdf

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资源描述

1、 光控残余效应对马铃薯组培苗生长的影响张彤,秦新苗,武园园,等Effects of Light Regulation Residues on Growth of Potato in vitro PlantletsZHANG Tong1,QIN Xinmiao2,WU Yuanyuan3,ZHANG Zhifang4,SHANG Chunming2,ZHANG Su1*(1.State Key Laboratory of Rare Earth Resource Utilization,Changchun Institute of Applied Chemistry,Chinese Academy

2、 of Sciences,Changchun,Jilin 130022,China;2.Baotou ZKRF Technology Co.,Ltd.,Baotou,Inner Mongolia 014030,China;3.School of LifeSciences and Technology,Inner Mongolia University of Science and Technology,Baotou,Inner Mongolia 014010,China;4.Inner Mongolia Potato Breeding Center,Hohhot,Inner Mongolia

3、010031,China)A Abstract:bstract:Light environments can change the morphological characteristics of potato in vitro plantlets,and similarly,changes in light environments can also impact on the growth of potato in vitro plantlets.In order to investigate the impact光控残余效应对马铃薯组培苗生长的影响张彤1,秦新苗2,武园园3,张智芳4,尚

4、春明2,张粟1*(1.中国科学院长春应用化学研究所稀土资源利用国家重点实验室,吉林长春130022;2.包头中科瑞丰科技有限公司,内蒙古包头014030;3.内蒙古科技大学生命科学与技术学院,内蒙古包头014010;4.内蒙古自治区马铃薯繁育中心,内蒙古呼和浩特010031)收稿日期:2023-08-23基金项目:国家自然科学基金(22103078)。作者简介:张彤(1989-),女,博士,助理研究员,主要研究方向为植物光环境调控。*通信作者(Corresponding author):张粟,博士,研究员,主要从事新型稀土发光功能材料的合成和器件研发,E-mail:。摘要:光环境可以改变马铃薯

5、组培苗的形态特征,同样,光环境变化也会对马铃薯组培苗的生长产生影响。为了探究原始光环境调控残余效应对马铃薯组培苗产生的影响,试验收集了非连续性LED光源(T0)下培养的 克新1号 马铃薯组培苗,重新接种后分别置于荧光灯(Fluorescent light,FL)和全光谱LED(Whole spectrum LED light,W-LED)光源下连续培养五代,并持续监测新光环境下第一、二、三、五代马铃薯组培苗的生长情况。调整光环境后,新光环境下的第一代马铃薯组培苗受到外植体内原始光环境调控残余效应的影响,其生长情况显著异于该光环境下其他代数的马铃薯组培苗。第一代28 d苗龄组培苗的株高、增殖系数

6、显著低于第二、三、五代,随着新光环境调控的持续影响,荧光灯下第二、三、五代的株高、增殖系数和壮苗指数的平均增长率分别为16.31%、16.35%和23.36%,全光谱LED光源下分别为8.80%、11.28%和36.08%。两种新光环境下相同苗龄的第一代组培苗的脱落酸(Abscisic acid,ABA)、吲哚乙酸(Indoleacetic acid,IAA)和赤霉素(Gibberellins 3,GA3)含量均低于其他代数。不同代数茎叶部分内源激素变化表明,原始光环境控制效应会在马铃薯组培苗外植体中保留。然而,随着新光环境的持续影响,原始光控残余效应逐渐消退,马铃薯组培苗开始适应新的光环境,

7、并逐步表现出与其相匹配的生理特点。全光谱LED光环境下第三代组培苗的壮苗指数和增殖系数分别较荧光灯光环境高36.67%和25.15%,第五代分别比荧光灯光环境高45.26%和12.81%。因此,全光谱LED光环境更适用于以培养壮苗、快速扩繁为目的的马铃薯组培苗生产中。关键词:光环境;马铃薯组培苗;LED光源;连续继代;残余效应中图分类号:S532文献标识码:A文章编号:16723635(2023)05-0397-12DOI:10.19918/ki.1672-3635.2023.05.002397中国马铃薯,第37卷,第5期,2023 马铃薯(Solanum tuberosum L.)是中国五大

8、主食之一,是全球第三大粮食作物。2021年中国马铃薯种植面积约为460.6万hm2,居世界第一,但中国马铃薯单产水平低于世界平均水平,主要原因是优质脱毒种薯推广使用率较低。马铃薯植物组培脱毒和离体培养技术是保存和培育优质健壮脱毒马铃薯种苗的关键技术1-3。马铃薯组培苗生长受多种因素调控,可概括为基因型、环境因子和生物化学因子。环境因子中,光照、温度和矿质营养是重要因子4,也是影响种质资源能否引进成功的重要因子5。光环境是相对复杂的环境因子。在组织培养中,光照对培养材料的增殖和器官分化有重要影响,会直接影响培养材料的增殖、分化、生长6,7和品质8。马铃薯组培苗在不适宜的光环境下连续多代培养,易出

9、现组培苗分化能力降低、组织畸形、玻璃化、幼苗徒长、光合能力和移栽成活率低等问题9。随着光源制备技术的发展,高光效、体积小的发光二极管(Light-emitting diode,LED)光源逐步在可控设施环境中大显身手10,11,其低发热、窄光谱、易调节的特点,让 LED 光源在植物组织培养、工厂化育苗与设施园艺等方面得到广泛应用12,13。除了光照强度、光照时间会对植物生长发育产生影响外,光质是影响植物生长发育的重要因子之一14。研究表明,光质对外植体细胞的最初分裂有明显的影响9。光质不仅影响植物的形态建成15和光合作用16,17,也可以调控植物的矿质元素累积18、物质代谢19、内源激素水平2

10、0以及基因的表达21。因此,根据培养需求,定制与植物光形态建成光谱相吻合的纯正单色光或复合光谱LED光源,已经成为植物培养生产必然趋势22-24。of residual effects of previous light environment regulation on potato in vitro plantlets,potato in vitro plantlets of Kexin 1cultured under discontinuous light-emitting diode(LED)light source(T0)were collected in the experimen

11、t.After re-inoculated,they were continuously grown under fluorescent light(FL)and whole spectrum LED light(W-LED)sources forfive subcultures,and the growth of potato in vitro plantlets of the first,second,third,and fifth cycles was continuouslymonitored.After adjusting the light environment,the firs

12、t subculture of potato in vitro plantlets under the new lightenvironments were affected by the residual effects of the previous light environment regulation in the explants,and theirgrowth was significantly different from other subcultures of potato in vitro plantlets under this light environments.T

13、heplant height and multiplication coefficient of the first subculture on the 28th day after culture of potato in vitro plantletswere significantly lower than those of the second,third,and fifth cultures.With the continuous influence of new lightenvironment regulation,the average growth rates of plan

14、t height,multiplication coefficient and seedling healthy index forthe second,third,and fifth subcultures under fluorescent light(FL)were 16.31%,16.35%,and 23.36%,respectively.Underwhole spectrum LED light source(W-LED),they were 8.80%,11.28%,and 36.08%,respectively.The abscisic acid(ABA),indoleaceti

15、c acid(IAA)and gibberellins 3(GA3)contents of the first subculture of potato in vitro plantlets with thesame age under the two new light environments were consistently significantly lower than those of other subcultures.Thechanges in endogenous hormones in the stem and leaf of each subculture indica

16、ted that the control effect of the previouslight environments would be preserved in the explants of potato in vitro plantlets.However,with the continuous impact ofthe new light environment,the residual effect of previous light control gradually subsided,and potato in vitro plantletsbegan to adapt to

17、 the new light environments,and gradually showed the physiological characteristics that match it.Theseedling healthy index and multiplication coefficient of the third subcultured potato in vitro plantlets under W-LED lightenvironments were 36.67%and 25.15%higher than those under FL light environment

18、,respectively,while the fifthsubcultured ones were 45.26%and 12.81%,respectively.Therefore,the W-LED light environments are more suitable forthe production of potato in vitro plantlets for the purpose of cultivating strong potato in vitro plantlets and rapid propagation.Key Words:Key Words:light env

19、ironment;potato in vitro plantlets;LED light source;continuous subculture;residual effect398 光控残余效应对马铃薯组培苗生长的影响张彤,秦新苗,武园园,等光控残余效应分析是将刚完成继代接种后的马铃薯组培苗在新光环境下培养,其外植体中残留的原始光环境生理效应会影响组培苗在新光环境下的生长,从而影响新光环境下马铃薯组培苗的生理反馈。众多调控组培苗生长的研究中,添加外源激素对组培苗生长及后续继代的影响研究较多,但针对光控残余效应的相关研究却较少。而随着光环境调控对马铃薯组培苗生长发育和物质代谢影响的研究逐步成

20、为热点25,光控残余效应对马铃薯组培苗后续继代的影响也不可忽视。本研究通过连续监测光环境变化后马铃薯组培苗生长和生理指标及内源激素的变化,确定光环境变化后马铃薯组培苗表现出稳定新光环境生理特征的周期,同时筛选出较优光源,为大规模计划性调整马铃薯组培苗生产提供理论依据。1材料与方法1.1仪器与试剂1.1.1仪器设备电子分析天平FA2004E、电子天平MTS5000D0、汉顿(Harden)电子数显游标卡尺、直尺(20 cm)、纯水器(ZYJDI-20/H)、-80超低温冰箱。1.1.2试剂植物激素脱落酸(Abscisic acid,ABA)ELISA检测试剂盒、植物吲哚乙酸(Indoleacet

21、ic acid,IAA)ELISA检测试剂盒、植物赤霉素3(Gibberellins 3,GA3)ELISA检测试剂盒,购自呼和浩特市泽浩生物科技有限责任公司,其余常规试剂由本实验室提供。1.2试验设计克新1号 马铃薯组培苗为试验材料,由内蒙古自治区马铃薯工程技术研究中心提供。试验在中国科学院包头稀土硫化物及稀土光源院士工作站组培室内进行。1.2.1原始光环境克新1号 马铃薯组培苗原始光环境由非连续性LED光源(T0)提供,该光源由包头中科瑞丰科技有限公司生产,其光谱特征如图1A所示,光照时长为16 h/d,组培室内温度为(23 2),湿度为(30 5)%,组培瓶顶部接收到总光合有效辐射强度为

22、(165 5)mol/m2s,由Li-CO250A光照计测定(美国LI-COR公司)。经测算,组培瓶盖的遮挡会削弱约21%的光强,因此,组培苗顶端接收到总光合有效辐射强度为(130 8)mol/m2s。1.2.2新光环境新光环境分别由上海组培生物科技有限公司生产的全光谱节能荧光灯(Fluorescent lamps,FL)和包头中科瑞丰科技有限公司生产的全光谱LED植物灯(Whole spectrum LED lamps,W-LED)提供。荧光灯单盏功率28 W,LED灯单盏功率18 W,两种光源的光谱特征如图1B、1C所示。每层马铃薯组织培养架安装两支光源,通过调节层板高度,使各层组培瓶顶部

23、接收到总光合有效辐射强度为(165 5)mol/m2s。组培苗光照时长,培养室内温度、湿度均与T0原始光环境相同。图1非连续性LED光源(T0)、荧光灯(FL)和全光谱LED灯(W-LED)光谱特征Figure 1Spectral characteristics of discontinuous LED light(T0),fluorescent lamp(FL)andwhole spectrum LED lamp(W-LED)波长(nm)Wavelength相对强度(Lux)Relative illuminance非连续性LED光源(T0)Discontinuous LED light荧光灯

24、(FL)Fluorescent lamp全光谱LED灯(W-LED)Whole spectrum LED lamp40 00035 00030 00025 00020 00015 00010 0005 000040 00035 00030 00025 00020 00015 00010 0005 000040 00035 00030 00025 00020 00015 00010 0005 0000400500600700800A波长(nm)Wavelength400500600700800波长(nm)Wavelength400500600700800BC相对强度(Lux)Relative i

25、lluminance相对强度(Lux)Relative illuminance399中国马铃薯,第37卷,第5期,2023 1.2.3试验过程试验采用无任何激素添加的MS 培养基,pH5.8,每组培瓶(350 mL)分装 50 mL 培养基,在121下于高压锅内灭菌15 min,灭菌结束后置于超净工作台内冷却。在超净工作台内,选取原始光环境(T0)下连续培养两代的马铃薯组培苗进行第一次继代接种,剪取具有一叶的马铃薯组培苗单节茎段(长10 mm)作为外植体,垂直接种至组培瓶内,每瓶均匀接种20个外植体,在新光环境FL和W-LED下各培养30余瓶。待新光环境下第一代组培苗苗龄达到2830 d时,留

26、下需要继续培养并取样的组培瓶苗,其余瓶苗继续继代接种,维持光环境不变,持续培养至第五代。进行生长和生理指标检测时,在一代、二代、三代、五代,苗龄为22,25,28,31,34 d 的组培瓶苗中分别随机选择5 瓶,随机选取长势一致的10株苗,记录其表型性状,随后采集茎叶、根样本,置于液氮中速冻,并存于-80冰箱中,待测各内源激素含量和叶绿素含量。1.3指标测定表型性状测定:随机选取不同处理目标苗龄马铃薯组培苗5瓶,每瓶随机选取长势一致的2株苗(共计10株苗),测定株高(茎基部至植株顶端的长度)、茎粗(茎基部直径)、节间长度、叶片数。通过爱普生(Epson)V39扫描仪扫描马铃薯组培苗茎叶部分,用

27、 Leaf Analysis 软件对茎叶图片进行分析,获得单株组培苗所有叶片叶面积。将5瓶内长势一致的马铃薯组培苗样品分成3份,分别测量植株鲜重、植株干重、茎叶鲜重、茎叶干重、根鲜重、根干重、茎叶激素赤霉素(GA3)、吲哚乙酸(IAA)和脱落酸(ABA)含量、光合色素等生理生化指标。植株干鲜重测定:纯水清洗组培苗,吸去表面水分,称量鲜重;随后将组培苗放入烘干过的牛皮纸袋中,105烘烤2 h,称量干重。壮苗指数:壮苗指数=(茎粗/株高+根干重/茎叶干重)全株干重增殖系数:增殖系数=瓶苗一个周期内形成的有效苗数/接种苗数激素含量测定:酶联免疫法(ELISA)测定内源赤霉素(GA3)、吲哚乙酸(IA

28、A)和脱落酸(ABA)含量。光合色素测定:测量方法为分光光度计法17。1.4数据分析利用Microsoft Excel 2010软件对试验所得数据进行整理,利用SPSS 23.0统计软件对不同光质处理间的生长和生理数据,以及内源激素含量数据进行单因素方差分析,处理平均值多重比较采用最小显著差数法(Least significant difference,LSD),使用Origin 2021软件作图。图表中数据均为平均值 标准差。2结果与分析2.1光控残余效应对连续继代马铃薯组培苗生长过程的影响当光源改为FL光源后,各连续继代的 克新1号 组培苗均在接种第25 d后进入到株高快速增长期。第一代组

29、培苗的株高增长速率明显低于第二、三、五代组培苗(图2A1)。在组培苗增重方面,4代组培苗均表现出前28 d茎叶部分增重明显,随后增重速率逐渐下降的趋势。接种后随着组培苗的生长,第一代组培苗的单株茎叶鲜重与同期其他代数组培苗单株茎叶鲜重差逐步减小,这表明组培苗已逐步适应新的光环境条件(图2A2)。接种25 d后,组培苗的增殖系数迅速上升。与二、三、五代相比,第一代组培苗在接种28 d后,增殖系数明显低于其他代数(图2A3)。当光源改为W-LED光源后,连续继代的马铃薯组培苗生长变化差异显著。除第一代组培苗是在接种25 d后,其余代数均在接种22 d后进入到株高快速增长期。接种25 d后,第一代与

30、其他代数的组培苗株高差异越来越大(图2B1)。与FL光环境相似,接种22 d后,4代组培苗茎叶部分均处于快速增重状态。增重速率方面,第一代在接种后28 d开始下降,第五代在接种31 d后略有下降,第二、三代则未出现明显下降(图2B2)。同样,组培苗的增殖系数在接种25 d后迅速上升,且相同苗龄的增殖系数随着继代代数的增加呈现先上升后稳定波动的趋势(图2B3)。400 光控残余效应对马铃薯组培苗生长的影响张彤,秦新苗,武园园,等注:误差线代表标准差。A 为 FL 光源,B 为 W-LED 光源。不同字母表示在 0.05 水平上存在显著差异,采用最小显著差数(Leastsignificant di

31、fference,LSD)法。下同。Note:The error bar represents the standard deviation.A is the FL light source,and B is the W-LED light source.Treatment means followed by differentlowcase letter at the same plantlet age indicate significant difference at 0.05 level as tested using least significant difference(LSD)

32、method.The same below.图2FL和W-LED光环境下连续培养马铃薯组培苗生长变化情况Figure 2Growth changes of potato in vitro plantlets under continuous cultivation under fluorescent and W-LED light sources株高(mm)Plant height120100806040203128253422A1dcdddbbbbbbccccaaaaa12010080604020B1dccdbbbbbbcaaaaacabb茎叶鲜重(mg/株)Stem and leaf fr

33、esh weight(mg/plant)18016014012010080604020A2dccccbacbaaaaaababbbab18016014012010080604020B2dccbabaaaaaaccbddbbc增殖系数Multiplication coefficient五代Fifthsubculture一代Firstsubculture二代Secondsubculture三代Thirdsubculture繁殖代数 Subculture cycleA3dcccaabcaaacabab654321五代Fifthsubculture一代Firstsubculture二代Secondsu

34、bculture三代Thirdsubculture五代Fifthsubculture一代Firstsubculture二代Secondsubculture三代ThirdsubcultureB3dccccbcbaaaba654321繁殖代数 Subculture cycle繁殖代数 Subculture cycle五代Fifthsubculture一代Firstsubculture二代Secondsubculture三代Thirdsubculture繁殖代数 Subculture cyclebbcbaabbcccddddb bbcab五代Fifthsubculture一代Firstsubcult

35、ure二代Secondsubculture三代Thirdsubculture繁殖代数 Subculture cycle五代Fifthsubculture一代Firstsubculture二代Secondsubculture三代Thirdsubculture繁殖代数 Subculture cycle株高(mm)Plant height茎叶鲜重(mg/株)Stem and leaf fresh weight(mg/plant)增殖系数Multiplication coefficientb31282534223128253422312825342231282534223128253422401中国马

36、铃薯,第37卷,第5期,2023 与FL相比,W-LED光环境下培养的第一代马铃薯组培苗更早进入到快速增长期,但随着增长速率的下降,两组光环境下苗龄为34 d的组培苗高度差异不大。第二代马铃薯组培苗在接种后25 d,FL和W-LED两种光环境下,株高差异逐步明显;同样的表现出现在第三、五代接种后的22 d。虽然 W-LED 光环境下第一代茎叶鲜重显著低于第二、三、五代,但相同代数苗龄的马铃薯组培苗茎叶鲜重均显著高于 FL 光条件下的马铃薯组培苗。W-LED光环境下培养的第一、二代马铃薯组培苗增殖系数,在接种25 d后开始显著高于FL光环境下组培苗,而同样的现象则提前出现在第三、五代接种后的22

37、 d。分析各代28 d苗龄组培苗发现,随着组培的持续进行,在FL光环境下第二、三、五代组培苗较第一代组培苗株高分别提高了17.18%、7.70%和24.06%,单株茎叶鲜重分别提高了12.17%、10.96%和7.85%,增殖系数分别提高了15.39%、7.74%和25.92%;在W-LED光环境下第二、三、五代组培苗较第一代组培苗株高分别提高了6.92%、6.94%和 12.53%,单株茎叶鲜重分别提高了 25.60%、37.30%和 19.38%,增殖系数分别提高了 9.74%、9.13%和14.96%。FL光环境第二、三、五代的株高、增殖系数的平均增长率(16.31%、16.35%)远高

38、于W-LED光环境(8.80%、11.28%)。随着在新光环境下的逐步适应,外植体内残余的原始光环境调控效应逐渐消失,组培苗生长情况趋于稳定,新光环境下组培苗的生长特征逐步凸显。2.2光控残余效应对各代马铃薯组培苗茎叶内源激素含量的影响植物组织的分化和发育受茎叶内源激素影响,而光环境对植物内源激素水平具有调控作用。FL 光照条件下每一代马铃薯组培苗茎叶内ABA 含量在接种22 d后出现稳步上升的趋势(图3A1)。马铃薯组培苗整个生长周期内,第一代组培苗的ABA含量始终显著低于其他代数,第二、三、五代之间组培苗茎叶ABA含量并无显著(P0.05)差异。各代马铃薯组培苗茎叶内IAA含量波动趋势差异

39、较大。第一代马铃薯组培苗在接种22 d后,其茎叶内 IAA 含量呈现稳定上升的趋势(图3A2),28 d前的IAA增长率为24.29%,28 d后的增长率为22.47%;而第二、三、五代马铃薯组培苗茎叶内IAA含量先出现小幅下降,随后在接种28 d后稳步上升的趋势,前28 d的IAA增长率分别为1.48%、-7.04%和-3.19%,28 d后的增长率分别为13.85%、19.06%和31.25%。同样,第一代组培苗的 IAA 含量始终显著低于其他代数,而第二、三、五代之间并无显著(P0.05)差异。各代马铃薯组培苗茎叶内GA3含量与ABA含量变化相似,在接种22 d后快速上升,接种28 d后

40、GA3含量逐渐趋于稳定并保持在一定范围内波动(图3A3)。第一代组培苗的GA3含量始终显著低于其他代数,第二、三、五代之间并无显著(P0.05)差异。W-LED光照条件下,每一代马铃薯组培苗茎叶内ABA含量接种后2228 d快速上升,随后逐步稳定(图3B1)。在整个光处理期间,第二、三、五代的组培苗茎叶 ABA 含量始终高于第一代组培苗。接种25 d后,第五代马铃薯组培苗茎叶ABA含量持续维持在较高的水平,同期第二、三代马铃薯组培苗间则没有显著性差异。各代马铃薯组培苗茎叶内IAA含量则呈现先上升随后略微下降的趋势(图3B2)。各代数接种后2228 d的IAA平均增长率分别为43.54%、18.

41、65%、18.84%和24.65%,接种28 d后IAA平均增长率分别是-5.06%、-1.33%、-8.32%和-1.48%。同样,各时期的第二、三、五代组培苗茎叶IAA含量显著(P0.05)高于第一代组培苗茎叶 IAA 含量。与 FL 光照条件下略有不同,W-LED光照条件下各代马铃薯组培苗茎叶内GA3含量在接种25 d后快速上升,直到接种后34 d时依旧保持较高的GA3增长率(图3B3)。相同生长时期第二代组培苗茎叶GA3含量显著(P0.05)高于其他代数,而第三、五代之间茎叶GA3含量并无显著(P0.05)差异。分析各代28 d苗龄组培苗发现,随着组培的持续进行,在FL光环境下第二、三

42、、五代组培苗较第一代组培苗 ABA 浓度分别升高了 6.57%、17.62%和 10.39%,IAA 浓 度 升 高 了 62.37%、58.68%和73.64%,GA3浓度升高了8.23%、16.27%402 光控残余效应对马铃薯组培苗生长的影响张彤,秦新苗,武园园,等一代First subculture二代Second subculture三代Third subculture五代Fifth subculture和19.21%;在W-LED光环境下第二、三、五代组培 苗 较 第 一 代 组 培 苗 ABA 浓 度 分 别 升 高 了15.05%、13.55%和 27.01%,IAA 浓 度

43、升 高 了17.61%、29.02%和 35.39%,GA3浓 度 升 高 了23.30%、14.44%和9.70%。光环境变化引起马铃薯组培苗茎叶中ABA、IAA和GA3的含量变化,但当光环境稳定后,光环境调控效应引起的茎叶中内源激素含量变化趋势会随着组培苗代数的增加而逐步统一。2.3光控残余效应对马铃薯组培苗生长和生理的影响FL和W-LED两种光源下苗龄为28 d的第一、二、三、五代马铃薯组培苗相关生长和生理表现见表1。图3FL和W-LED光环境下各继代代数内源激素变化Figure 3Changes in endogenous hormones in successive subcultu

44、res of fluorescent and W-LED light sources苗龄(d)Plantlet age苗龄(d)Plantlet age苗龄(d)Plantlet age22242628303234赤霉素(GA3)浓度(pmol/g)GA3concentration脱落酸(ABA)浓度(ng/g)ABA concentrationA170060050040030020022242628303234脱落酸(ABA)浓度(ng/g)ABA concentrationB1700600500400300200吲哚乙酸(IAA)浓度(nmol/g)IAA concentration1.8

45、1.61.41.21.00.80.60.422242628303234A2B2苗龄(d)Plantlet age吲哚乙酸(IAA)浓度(nmol/g)IAA concentration1.81.61.41.21.00.80.60.422242628303234苗龄(d)Plantlet age22242628303234A3900800700600500400赤霉素(GA3)浓度(pmol/g)GA3concentration苗龄(d)Plantlet age22242628303234B3900800700600500400403中国马铃薯,第37卷,第5期,2023 生长和生理参数Grow

46、th and physiology parameter叶绿素a含量(mg/g)Chlorophyll a content叶绿素b含量(mg/g)Chlorophyll b content类胡萝卜素含量(mg/g)Carotenoid content株高(mm)Plant height茎粗(mm)Stem diameter节间长度(cm)Internode length叶片数(No.)Leaf number叶面积(cm2)Leaf area增殖系数Multiplication coefficient壮苗指数Seedling healthy index茎叶鲜重(mg/株)Stem and leaf

47、 fresh weight(mg/plant)茎叶干重(mg/株)Stem and leaf dry weight(mg/plant)全株鲜重(mg/株)Whole plant fresh weight(mg/plant)全株干重(mg/株)Whole plant dry weight(mg/plant)荧光灯(FL)Fluorescent lamp第一代First subculture0.40 0.009 b0.13 0.002 b0.13 0.002 b60.84 1.105 d0.93 0.027 b1.42 0.038 a6.07 0.099 c1.18 0.035 d2.77 0.0

48、47 d17.23 0.477 c86.49 2.509 c18.33 0.541 b120.36 1.692 b28.95 0.417 b第二代Second subculture0.45 0.009 a0.13 0.002 b0.12 0.002 c71.29 1.064 b0.96 0.028 ab1.19 0.034 c6.56 0.229 b2.13 0.048 b3.19 0.098 b20.58 0.882 b97.01 1.416 a20.08 0.388 a136.39 1.685 a32.51 0.575 a第三代Third subculture0.45 0.015 a0.1

49、3 0.002 b0.14 0.002 a65.53 1.59 c0.98 0.025 a1.14 0.022 c6.64 0.105 ab2.02 0.038 c2.98 0.071 c21.73 0.365 a95.97 1.977 ab20.30 0.557 a136.25 0.947 a33.26 0.788 a第五代Fifth subculture0.43 0.007 a0.14 0.004 a0.13 0.003 bc75.48 1.124 a0.97 0.029 ab1.35 0.047 b6.88 0.188 a2.23 0.026 a3.48 0.048 a21.47 0.8

50、75 ab93.28 2.324 b20.01 0.629 a134.08 2.735 a32.83 0.766 a全光谱LED光源(W-LED)Whole spectrum LED lamp第一代First subculture0.44 0.014 b0.14 0.004 b0.12 0.002 b67.93 2.404 c1.00 0.013 a1.49 0.026 a6.29 0.152 b1.41 0.041 d3.42 0.070 c22.13 0.731 c88.25 1.065 d19.30 0.399 c128.07 1.214 c32.26 0.745 c第二代Second

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