DB53∕T 909-2019 高山杜鹃组培苗生产技术规程(云南省).pdf

DB53/T 9092019 高山杜鹃组培苗生产技术规程 2019 - 03 - 01 发布 2019 - 06 - 01 实施ICS 65.020 B 62 云南省地方标准 云南省市场监督管理局 发 布 DB53/T 9092019 I 前 言 本标准按照 GB/T 1.12009 标准化工作导则 第1部分： 标准的结构和编写 给出的规则编写。 本标准由云南省农业科学院花卉研究所提出。 本标准由云南省花卉标准化技术委员会（YNTC08）归口。 本标准起草单位：云南省农业科学院花卉研究所，国家观赏园艺工程技术研究中心，农业农村部花卉产品质量监督检验测试中心（昆明），云南春禾园林科技有限公司，云南云科花卉有限公司，云南省花卉育种重点实验室，云南省花卉工程技术研究中心，昆明市花卉遗传改良重点实验室，昆明市特色植物组培快繁工程技术研究中心。 本标准主要起草人：彭绿春、李世峰、瞿素萍、王继华、李树发、宋杰、解玮佳、蔡艳飞、张露、陆琳、张艺萍、杨少杰、王家德。 DB53/T 9092019 1 高山杜鹃组培苗生产技术规程 1 范围 本标准规定了高山杜鹃（Rhododendron hybrids）组培苗生产中的术语和定义，缩略语，技术要求，包装、标识与运输要求。 本标准适用于高山杜鹃组培苗的生产。 2 规范性引用文件 下列文件对于本文件的应用是必不可少的。 凡是注日期的引用文件， 仅所注日期的版本适用于本文件。凡是不注日期的引用文件，其最新版本（包括所有的修改单）适用于本文件。 LY/T 1770-2008 桉树无性系组培快繁技术规程 NY/T 2306-2013 花卉种苗组培快繁技术规程 3 术语和定义 LY/T 1770-2008、NY/T 2306-2013界定的以及下列术语和定义适用于本文件。为了便于使用，以下重复列出了LY/T 1770-2008与NY/T 2306-2013中的部分术语和定义。 3.1 高山杜鹃 杜鹃属（Rhododendron L.）中的常绿杜鹃亚属（Subgen.Hymenanthes ）、杜鹃亚属 （Subgen.Rhododendron）、马银花亚属（Subgen.Azaleastrum）中的常绿杜鹃经过杂交所培育的栽培品种（Rhododendron hybrids）的总称。 3.2 组培苗 利用植物组织、器官或细胞等作为起始材料，通过植物组织培养方式生产获得的植株。 NY/T 2306-2013，定义3.12 3.3 外植体 从自然生长的活体植物上获取的用于建立植物组培快繁体系的起始材料。 NY/T 2306-2013，定义3.8 3.4 诱导培养 DB53/T 9092019 2 又称初代培养， 是将消毒后的外植体接种到特定培养基中， 经一段时间的培养， 使之长出愈伤组织、顶芽、侧芽、不定芽等的过程。 3.5 增殖培养 又称继代培养，离体芽苗、愈伤组织或悬浮培养细胞不断倍增的培养过程。 LY/T 1770-2008，定义3.6 3.6 生根培养 诱导无根离体芽苗产生根的培养过程。 LY/T 1770-2008，定义3.7 3.7 瓶苗炼苗 将组培苗连培养容器一起移至室外近自然环境中培养， 提高苗木的木质化程度， 增强苗木对自然光照和温差变化适应能力的过程。 LY/T 1770-2008，定义3.10 3.8 移栽 将培养容器内长到适宜高度、具备合适根数与根长的生根苗，取出种植到基质中，使苗木逐渐适应自然条件的过程。 3.9 容器苗 在培养容器中生长且已达移栽标准的根、茎、叶俱全的完整植株。 NY/T 2306-2013，定义3.7 3.10 无琼脂苗 从培养容器中取出并去除(不宜水洗)基部培养基的组培生根苗。 NY/T 2306-2013，定义3.9 3.11 穴盘苗 移栽到穴盘中培育的组培苗。 NY/T 2306-2013，定义3.13 DB53/T 9092019 3 4 缩略语 下列缩略语适用于本文件。 WPM：Woody Plant Medium，木本植物培养基。 6-BA：6-Benzyl aminopurine，6-苄基腺嘌呤。 ZT：Zeatin，玉米素。 NAA：1-Naphthylacetic acid，-萘乙酸。 IBA：Indole-3-Butytric acid，吲哚丁酸。 5 技术要求 5.1 基本要求 高山杜鹃组培苗生产中，培养基制作和消毒、接种操作、接种器械的清洗和消毒、接种室及培养室管理等的方法和要求按NY/T 2306-2013执行,其中外植体的消毒及诱导、增殖、生根等环节中所涉及的转接、切分均在超净工作台上进行。 5.2 生产流程 生产流程见附录A。 5.3 外植体采集 5.3.1 母株的选择 选择生长旺盛，无病虫害的植株作为采集外植体的母株。 5.3.2 采集时间 每年5月6月和9月10月。 5.3.3 采集方法 采集侧芽开始萌动的半木质化枝条作为外植体，并对每个母株的外植体加标签，标明母株编号、品种名、采集时间、采集地点等。 5.3.4 保存与运输 采集的外植体应当天消毒，否则需瓶插保鲜；若需长途运输 2 d3 d，应用干净的毛巾或吸水纸包扎。 5.4 外植体消毒 5.4.1 消毒步骤 外植体消毒按以下步骤进行： a 先剪去外植体上叶片，但保留约 1 cm 长的叶柄，之后将外植体剪成带 1 个2 个侧芽或一个顶芽的茎段，用 0.5%洗衣粉水清洗，之后清水漂洗干净，确保洗去表面的绒毛和粘液。 b 在超净工作台上，根据外植体清洁程度，用 2%次氯酸钠溶液（附加 0.5% tween-20）浸泡消毒 8 min10 min，灭菌水漂洗两遍后置于接种盘。 DB53/T 9092019 4 c 切去侧芽旁的叶柄，只保留其基部，确保不伤到侧芽。 d 0.1%氯化汞溶液（附加 0.5% tween-20）浸泡消毒 12 min18 min，之后灭菌水漂洗三遍，置于接种盘，晾干备用。 5.4.2 消毒液废液的处理 使用过的氯化汞溶液应按照国家有关剧毒化学药品使用的法规进行回收处理。 5.4 诱导培养 5.4.1 培养基 适宜的诱导培养基为：WPM + 6-BA 1 mg/L + NAA 0.1 mg/L，pH5.4，蔗糖30 g/L，琼脂6 g/L。WPM基本培养基与6-BA、NAA等常用植物生长调节剂的配制参见附录B和附录C。 5.4.2 操作要求 在超净工作台上，将已消毒外植体的两端各切去2 mm3 mm，竖直接入诱导培养基，诱导侧芽和顶芽，当侧芽和顶芽萌发长到3 cm4 cm时切下，进行增殖培养。 5.5 增殖培养 5.5.1 培养基 适宜的增殖培养基为：WPM + ZT 1 mg/L2 mg/L + NAA 0.01 mg/L，pH5.4，蔗糖30 g/L，琼脂6 g/L。WPM基本培养基与ZT、NAA等常用植物生长调节剂的配制参见附录B和附录C。 5.5.2 操作要求 增殖培养按下列要求操作： a 对于外植体上萌发的顶芽和侧芽，将其切下，整段或切成两段，竖直接入增殖培养基。 b 对于增殖苗，将无菌芽苗切成小段，每段带2个4个叶片，竖直接入增殖培养基；转接周期为50 d60 d，培养代次不宜超过30代。 5.6 生根培养 5.6.1 培养基 适宜的生根培养基为：WPM + IBA 0.5 mg/L0.75 mg/L + NAA 1 mg/L1.5 mg/L，pH 5.4，蔗糖30 g/L，琼脂6 g/L。WPM基本培养基与IBA、NAA等常用植物生长调节剂的配制参见附录B和附录C。 5.6.2 操作要求 切取生长健壮、形态正常、长1.5 cm2 cm的带茎尖增殖苗，竖直接入生根培养基。 5.6.3 生根瓶苗质量要求 可以移栽的合格生根瓶苗应达到以下要求： a 植株生长健壮，叶形、叶色正常，具 4 片7 片展开的叶片。 b 株高 2.5 cm4.5 cm。 c 根系多于 5 条。 5.7 培养条件 DB53/T 9092019 5 诱导培养、增殖培养和生根培养的培养温度为22 26 ，光照强度为2500 lux3000 lux，光照时间为12 h/d。 5.8 炼苗与移栽 5.8.1 炼苗 将合格的生根无菌苗移至遮光率60%70%的大棚内炼苗一周，避免阳光直射。 5.8.2 移栽 按下列要求进行移栽： a 栽培基质为草炭（颗粒尺寸小于 5 mm）、珍珠岩（颗粒尺寸小于 5 mm）按 6:1 的体积比混合，基质 pH 值范围为 45，栽培容器为 128 目穴盘。 b 将经锻炼的无菌苗从容器中小心取出，在清水中洗去根部培养基，整株速蘸 75%百菌清可湿性粉剂 800 倍液后，栽入浇透水的穴盘。 5.8.3 移栽后管理 按下列要求进行移栽后管理： a 刚移栽至 2 周，光照强度 5000 lux6000 lux，湿度 60%80%，温度 23 28 ，视基质中水分蒸发情况浇水，并根据苗萎蔫情况向苗上喷洒水，保持植株新鲜。 b 第 3 周开始，逐步增加光照强度，最大光强不高于 40000 lux，湿度 60%80%，温度 23 28 ，视基质中水分蒸发情况浇水。 c 第 4 周开始，每周喷施 70%甲基托布津可湿性粉剂 800 倍液一次和全营养素叶肥 500 倍液一次。 5.8.4 穴盘苗质量要求 合格的穴盘苗应达到以下要求： a 植株生长健壮，叶形、叶色正常，正常展开的叶片数大于 6 片。 b 株高 5.0 cm7.0 cm。 c 根系色白有活力，将植株从穴盘脱出，基质不散， d 无病虫危害症状。 5.9 测量方法 5.9.1 无菌生根苗株高 直尺测量最上部生根处至植株顶部的高度，精确到0.1 cm。 5.9.2 穴盘苗株高 直尺测量基质表面至植株顶部的高度，精确到0.1 cm。 5.9.3 叶形、叶色、污染物、危害症状 目测评定。 5.9.4 叶片数、根数 目测计数正常叶片数和根数。 DB53/T 9092019 6 5.10 建档 应建立生产技术档案，如外植体采集与增殖代数、繁殖材料更新与母株编号、种苗产量质量、科学实验设计与实验结果、田间病虫害调查等。外植体采集与繁殖材料更新格式可参见附录D。 6 包装、标识与运输 6.1 包装 6.1.1 组培瓶苗的包装 将组培瓶苗放在泡沫箱内，瓶与瓶之间，层与层之间相互挤紧，不留空隙，泡沫箱外再用适宜尺寸的硬纸箱包装。 6.1.2 无琼脂苗的包装 生根组培苗去除培养基后（不宜水洗），装入小塑料盒或打孔的塑料袋内，再放入泡沫箱，泡沫箱外再用适宜尺寸的硬纸箱包装。 6.1.3 穴盘苗包装 穴盘苗包装纸箱规格、设计及装箱示列可参见附录E。将穴盘苗放在隔层纸板上，之后依次放入专用包装纸箱。 6.2 标识 外包装箱上，需贴标签，注明品种、规格、等级、数量、生产者、发货日期等信息。 6.3 运输 装车和搬运时切勿倒置，用有蓬车辆运输以免日晒、雨淋，高温和严寒季节宜选用空调车运输，带琼脂苗应5d内到达目的地，不带琼脂苗应2d内到达目的地，穴盘苗应3d内到达目的地。 DB53/T 9092019 7 A A 附 录 A （资料性附录） 高山杜鹃组培苗生产流程图 高山杜鹃组培苗生产流程见图A.1。 图A.1 高山杜鹃组培苗生产流程图 DB53/T 9092019 8 B B 附 录 B （资料性附录） WPM 基本培养基母液配制 WPM基本培养基母液的配制方法见表B.1。 表B.1 WPM 基本培养基母液组分及配制方法 母液种类 药品名称 标准含量，mg/L扩大倍数称取重量，g配制的方法及保存方式 NH4NO3 400 40 K2SO4 990 99 MgSO47H2O 370 37 大量元素 KH2PO4 170 100 17 称取左栏相应量的药品， 用蒸馏水分别溶解后混合，定容至 1L。 冷藏（4）或室温保存。 H3BO4 6.2 0.62 MnSO4H2O/4H2O 16.9/22.3 1.69/2.23 ZnSO47H2O 8.6 0.86 Na2MoO42H2O 0.25 0.025 微量元素 CuSO45H2O 0.025 100 0.0025 称取左栏相应量的药品， 用蒸馏水分别溶解后混合，定容至 1L。 冷藏（4）或室温保存。 FeSO47H2O 27.8 2.78 铁盐 Na2EDTA2H2O 37.3 100 3.73 称取左栏相应量的药品， 用蒸馏水分别溶解后混合，定容至 1L。 冷藏（4）避光保存。 肌醇 100 10 烟酸 0.5 0.05 烟酸吡哆醇 （VB6） 0.5 0.05 烟酸硫胺素 （VB1） 0.1 0.01 有机物 甘氨酸 2 100 0.2 称取左栏相应量的药品， 用蒸馏水分别溶解后混合，定容至 1L。 冷藏（4）避光保存。 Ca（NO3）24H2O 556 55.6 钙盐 CaCL22H2O 96 100 9.6 称取左栏相应量的药品， 用蒸馏水分别溶解后混合，定容至 1L。 冷藏（4）或室温保存。 DB53/T 9092019 9 C C 附 录 C （资料性附录） 常用植物生长调节剂的配制 常用植物生长调节剂的配制方法见表C.1。 表C.1 常用植物生长调节剂的配制方法 类别 名称 配制浓度 mg/ml 配制方法 保存方式 6-BA 1 称取 200mg 药品，先用少量 0.1mol/L 盐酸溶解后，加入蒸馏水定容至 200ml。 细胞分裂素 ZT 1 称取 200mg 药品，先用少量 0.1mol/L 盐酸溶解后，加入蒸馏水定容至 200ml。 NAA 1 称取 200mg 药品，先用少量 95%酒精或无水乙醇溶解后，加入蒸馏水定容至 200ml。 生长素 IBA 0.5 称取 100mg 药品，先用少量 95%酒精或无水乙醇溶解后，加入蒸馏水定容至 200ml。 冷藏（4），密封避光保存。 DB53/T 9092019 10 D D 附 录 D （资料性附录） 外植体采集与繁殖材料更新表 外植体采集与繁殖材料更新表的设计见表D.1。 表D.1 外植体采集与繁殖材料更新表 编号 采集时间 采集地点 母株状况 外植体类型 采集数量 消毒成功率 （%）芽诱导率（%）预计产苗时间 预计更新时间 采集人 DB53/T 9092019 11 E E 附 录 E （资料性附录） 穴盘苗包装用纸箱规格与示例 穴盘苗包装用纸箱规格与示例见图E.1-图E.4。 图E.1 穴盘苗包装用纸箱尺寸与示例 图E.2 穴盘苗包装用纸箱隔板尺寸 DB53/T 9092019 12 图E.3 穴盘苗包装用纸箱隔板折叠示例 图E.4 穴盘苗包装示例 _ DB53/T 9092019 版权专有 不得翻印 侵权必究 举报电话：[phone] （0871）63215572